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EcoRI

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  • Thermo scientific -fermentas
  • ER0271
  • 2025年09月27日
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      大量

    • - FastDigest®限制酶
    • - 推荐的缓冲液 : Unique缓冲液
    • - 孵育温度37°C
    • - 连接效率95%
    • - CpG甲基化重叠可能影响DNA切割
    • - 热失活65°C, 20 min
    • - 基因组级别
    • - 重组酶
    • - 蓝/白鉴定
    • - LO合格
    • - HC: 提供高浓度酶
    Catalog# Size, concentration Supplied with: Certificate of Analysis MSDS
    10X Buffer EcoRI 10X Buffer Tango™
    ER0271 5000 u (10 u/µl) 2 x 1.00 ml 1.00 ml ER0271
    ER0272 5 x 5000 u (10 u/µl) 5 x 1.00 ml 1.00 ml ER0272
    ER0273 HC, 25000 u (50 u/µl) 5 x 1.00 ml 1.00 ml ER0273
    Reaction conditions
    Recommended buffer for 100% activity Optimal temperature Enzyme activity in Fermentas buffers, % Tango™ buffer for double digestion
    B (blue)
    1X
    G (green)
    1X
    O (orange)
    1X
    R (red)
    1X
    Tango™ (yellow)
    1X / 2X
    EcoRI 37°C 0-20 NR 100 100* NR 100 2X
    * –星活性比5倍过量酶切(5 units x 1 hour)还强。

    Lambda DNA
    0.7%琼脂糖
    5 切割位点

    100%酶活性的反应条件
    1X 缓冲液EcoRI:
    50 mM Tris-HCl (pH 7.5, 37°C), 10 mM MgCl2 , 100 mM NaCl, 0.02% Triton X-100, 0.1 mg/ml BSA。
    37°C酶切。

    保存缓冲液
    EcoRI保存在:
    10 mM磷酸钾 (pH 7.4, 25°C), 300 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 0.2 mg/ml BSA, 0.15% Triton X-100和50%�v/v)甘油。

    连接和重新酶切
    50倍EcoRI过量酶切后,超过95%的酶切产物可以连接和重新酶切。

    琼脂糖包埋DNA酶切
    至少需要5 unit限制酶才能在16小时内完全切割1 µg琼脂糖包埋的λ DNA。

    备注
    低盐、过量酶切、pH>8.0或用Mn2+ 替代Mg2+ 都会导致星活性。

    商业化同裂酶
    采用REsearch™软件寻找同功酶。

    双酶切
    采用DoubleDigest™软件确定双酶切的最佳条件。

    兼容性末端
    XapI, MunI, TasI。

    甲基化影响
    Dam: 无重叠 – 不影响。
    Dcm: 无重叠 – 不影响。
    CpG: 可能重叠 – 部分影响。
    EcoKI: 无重叠 – 不影响。
    EcoBI: 可能重叠 – 不影响。

    Methylation type Sequence Cleavage effect
    CpG

    5'...m5C G AATTm5C G...3'
    3'... Gm5C TTAA Gm5C...5'

    部分影响
    EcoBI (TGA(N)8 TGCT)

    5'...TGm6AATTC(N)4 TGCT...3'
    3'...AC TTAAG(N)4 m6ACGA...5'

    不阻止酶切
    Cleavage efficiency close to the termini of PCR fragments
    bp from the recognition site to fragment end
    1 2 3 4 5
    50-100
    Number of recognition sites in DNA molecules
    Lambda ΦX174 M13mp18/19 pBR322 puc18/19 pUC57
    5 0 1 1 1 1
    pTZ19R/U pTZ57R pBluescriptIIKS(-/+) pBluescriptIISK(-/+) pACYC177 pACYC184
    1 1 1 1 0 1

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    相关实验
    • 【求助】XbaI和EcoRI双酶切构建时出现空载

      wj1989113 最近在构建一个质粒。 根据我的目的基因序列,筛了两个酶切位点,而且只有这两个酶切位点能用,XbaI和EcoRI, 设计引物时XbaI 加了两个保护碱基,EcoRI 加了三个保护碱基。根据takara公司的说明,选择了共用Buffer1xM,酶切,连接,转化之后挑克隆,抽质粒酶切鉴定,发现都是空载体。网上说XbaI对甲基化敏感,有什么对策?因为我别无他选,只能用这两个酶。 不胜

    • 成功进行双酶切实验之实战手册

      酶的活性也是影响克隆成败的关键因素: 1)如果限制性内切酶因为保管不当,导致酶失活或部分失活,那么依据DDDesigner计算出来的酶量就不能保证完全酶切。 2)如果制备的质粒DNA的质量不好(如细菌培养时间过长,质粒制备时裂解不充分或裂解时间过长等),那么对这种质粒DNA进行酶切时,即使酶活性正常,酶量足够,也不能实现完全酶切,因为其中很多质粒DNA已经变性,不能被切开。 下面是一个简单的实验设计,可以用于分析各种可能的问题。 如:拟用NEB的EcoRI

    • 【求助】基因串联的方法有哪些?

      用于克隆筛选).因为引物上带了EcoRV位点,又可以进一步做成T载体,再把基因克进去,如此反复... 关键是T载体要制备的好,筛选的时候多挑几个克隆,如果需要定向克隆基因的话可利用载体上的引物筛选之,然后利用基因内部合适的酶切位点来验证... 欢迎交流! qianjing930 我做过三段重复片段的串联,用的是pBV220载体. 第一对引物为EcoRI_KpnI_____BamHI;第一段单体插入pBV220载体中的EcoRI

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