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蛋白质检测技术服务
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上海达为科生物科技有限公司
一、技术原理与核心机制
CO-IP通过抗体与目标蛋白(诱饵蛋白)的特异性结合,在非变性条件下捕获其天然状态下相互作用的蛋白质(猎物蛋白),从而揭示生理或病理条件下的蛋白复合体组成。
- 分子基础:
- 抗原-抗体结合:抗体(如单抗、多抗)通过Fab段识别诱饵蛋白表位。
- 亲和力富集:Protein A/G磁珠结合抗体Fc段,通过离心或磁力分离复合物。
- 保留天然状态:使用非离子型裂解液(如NP-40)保持蛋白质互作结构,避免强变性剂破坏复合体。
- 检测方法:Western Blot(WB)验证已知互作蛋白,质谱(MS)鉴定未知互作成员。
二、标准化实验流程与关键参数
1. 实验步骤(以经典流程为例):
- 样本制备:
- 细胞处理:对数生长期细胞(如HCT116结肠癌细胞)以5×10⁵ cells/皿密度铺板,药物处理(如阿伏苯宗)16-24小时。
- 裂解:使用含蛋白酶抑制剂的NP-40缓冲液裂解细胞,离心(12,000×g,15分钟)取上清。
- 抗体孵育:
- 500 μg总蛋白与1:10稀释的抗体(如抗-HER2)4℃旋转孵育过夜。
- 阴性对照:平行使用同型IgG排除非特异性结合。
- 磁珠捕获:加入Protein A/G磁珠(如Dynabeads),4℃孵育1小时,磁力架分离复合物。
- 洗涤与洗脱:
- 用PBST洗涤3次(每次5分钟),去除未结合蛋白。
- 洗脱:95℃加热5分钟(含SDS上样缓冲液)释放蛋白。
- 检测分析:
- WB验证:SDS-PAGE分离后,转膜孵育二抗(如HRP标记),ECL显影。
- 质谱分析:洗脱蛋白经酶解后,LC-MS/MS鉴定互作蛋白。

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文献和实验某个实验间隙… 萌新:开题报告已提交,转眼 1 个月过去了,实验还是一头雾水,为啥我的 co-IP 拉不下来蛋白? 奋斗中的师兄:我当初正好相反,拉下来的蛋白被抗体条带覆盖住了,换个抗体忒不好找,无奈换了个蛋白,还好挺顺利。 大师兄:蛋白吧,不但种类多,理化性质差异较大,关键它们又喜欢组队在细胞里干活,IP、co-IP 又是常用的手段,掌握好这个工具还是很重要的,总不能随随便便就换个蛋白。 那要怎么快速掌握这项实验,轻松搞定各种疑难杂症呢? 我们依据三十多年的 IP/co-IP 实验经验,总结
紫叶竹韵 做IP,之后Western 分析,看到有两条带,在25和50KD左右,应该是抗体的两条带,但是我的目的蛋白也是52KD的,这该怎么区分呢。 woxingwosu 最好是选择与做IP不同来源的抗体来做(比如说IP用鼠的抗体,WB就用兔的抗体),这样就不会检测到抗体的两条带。 如果没有不同来源的抗体的话,就要做IP的时候尽量少放点抗体,跑胶跑得远一点,使得目的蛋白能够被看到,不过由于你的蛋白是在是太接近重链
一、原理: 免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,Co-IP)技术是检测蛋白质间相互作用的经典方法,基本原理是以细胞内源性靶蛋白为诱饵,将靶蛋白抗体与细胞总蛋白进行共孵育,促进免疫复合物的形成;随后加入能够与抗体Fc段结合的proreinA/G(预先结合固化在琼脂糖小珠上),形成“结合蛋白-靶蛋白-靶蛋白抗体-proteinA/G小珠”复合物,纯化该复合物后凝胶电泳分离蛋白,应用Westernblot或者质谱技术鉴定靶蛋白的结合蛋白。 与其它研究方法相比,免疫










