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- 2025年07月13日
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文献和实验] 。在上述基础上，我们进一步优化了分离方法，并将其用于本实验室大规模的叶绿体分离和蛋白质组分析工作中 [16] 。这种方法没有进行过叶绿体蛋白质输入活性的测试，但是本方法具有产率高，污染低的优点，尤其适合于叶绿体的蛋白质组分析。关于用于体外蛋白质输入活性试验的叶绿体分离方法，可以参考其他的一些报道 [17] 。2. 材料 ( 1 ) 介质 A ( 匀浆缓冲液，见注释 1)：50 mmol/L HEPES-KOH ( pH 8.0) 、330 mmol/L 山梨醇、2 mmol/L EDTA
性是明显的（图 4）。Scale S 方法改进了传统的配方，增加了山梨醇。山梨醇对脑的透明化更佳，尿素有水合作用，使组织膨胀，但山梨醇有脱水作用，让组织缩小，通过配比可以保留样本的原本体积。优点：操作简单，配置溶液每天更新即可。缺点：脑组织膨胀率 10%-30% 不等，影响组织原本状态，有可能破坏组织内原本结构。孵育时间长，溶液消耗大。图 4：经 ScaleA2 孵育后的组织图 5: 共聚焦成像4. BABBBABB 是使用有机溶剂如苯甲醇/苯甲酸苄酯去除脂质，从而得到透明的组织的方法。有机
基 + 0.004%组氨酸） 在1000ml的MGY培养基中加入10ml的100*H母液混匀，4℃保存，保存期为2个月。2.7 RD Regeneration Dextrose Medium （葡萄糖再生培养基） （含有：1mol/L的山梨醇；2%葡萄糖；1.34%YNB；4*10-5%生物素；0.005%氨基酸） 1. 将186g的山梨醇定容至700ml，高压灭菌； 2. 冷却后于45℃水浴； 3. 将100ml的10*D、100ml的10*YNB；2ml的500*B；10ml的100*AA等母液
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