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500支
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研卉生物
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支
OD100C33 100K, clear 24/pkg
OD100C34 100K, clear 100/pkg
OD100C35 100K, clear 500/pkg
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文献和实验/孔 实验内容: 1. 外泌体荧光标记并去除游离染料 1.1. 用 PBS 将提取的外泌体浓度调整到约 1×1011Particles /mL 1.2. 配制染色孵育体系 1.3. 去除游离染料 染色完成后,于生物安全柜中加入 600μL PBS 在样品里,使用 100 KDa 超滤管,以 3000 ×g 的离心力离心 5 ~10 min, 进行超滤置换,去除溶液中游离的染料,将上室样品浓缩至原体积 重复置换 2 次 收集超滤管上室的样本, 送检 NTA(50μl)、BCA(50μl
和数量充足,干细胞/原代细胞上清可在提取前采用超滤管(100KD)浓缩 3~5 倍后再提取。 3、使用EPF柱时堵塞如何处理? 答:过滤柱的孔径在 220nm 左右。如果出现堵塞情况,可以将柱子旋转 180 度再次离心。若上室还有残留液体,需要使用新的 EPF 柱,该柱子可以单独购买(货号 UR90102)。 4、沉淀法的具体原理是什么? 答:将高亲水性聚合物(聚乙二醇等)添加到含外泌体的溶液中后,外泌体周围的水分子被聚合物束缚,降低了外泌体的溶解度并诱导其随后的沉淀,使外泌体在低速离心下可以很容易
,如果希望100%截留某个蛋白,一般膜孔径选择为目标蛋白的1/3-1/5。 (八)问题:用10KD,15ml的超滤管超滤含20KD目的蛋白的蛋白溶液,会不会有目的蛋白穿过滤膜呢,我同学用这个超滤管超滤17KD的蛋白液,竟然有目的蛋白透过滤膜 可能会有一定的透过损失,因为截留和分子的形状也有关系。 为了100%截留, 超滤膜的截留分子量最好是目的蛋白的1/3比较保险 (九)问题:我们公司需要的是通过超滤管的那部分液体,将我们的产品分离,我说的超滤液就是指离心
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