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花生过敏原ELISA试剂盒 96 Tests-上海甄准

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  • 2025年07月08日
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    花生过敏原ELISA试剂盒 96 Tests-上海甄准

    花生属于豆科植物。花生含25%蛋白质。许多这些蛋白质是已知的过敏原。因此,花生是最重要的食物过敏原之一。食物中隐藏花生过敏原对花生过敏的人而言是一个关键问题。非常低量的花生可引起过敏反应,严重可能会导致过敏性休克。因此,花生过敏的人必须严格避免花生或含有花生的食物。在生产过程中经常存在交叉污染。巧克力生产过程是一个有代表性的例子。因此,不能排除在食品中残留花生。为此在食品中残留花生敏感的检测系统是必需的。

    检测样品:

    上海甄准生物提供花生ELISA试剂盒具有高敏感的检测系统,特别适用于定量检测饼干,麦片,冰淇淋和巧克力残留的花生。

    产品特点:

    灵敏度(花生):0.1ppm

    回收率:90 - 110%

    培育时间:60min

    订购信息:

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    规格

    ZZKPEA-E01

    花生过敏原ELISA试剂盒

    Peanut Allergens ELISA Kit

    96 Tests

    检测原理:

    上海甄准生物提供的花生过敏原ELISA试剂盒是酶联免疫检测方法。检测花生蛋白的抗体包被在微孔板的表面。花生含有样品或标准品加到微孔板的孔中。在室温下培养20分钟后,稀溶液洗涤将微孔板除去未结合的物质。将过氧化物酶偶联的第二抗体加入孔中,培育20分钟后,再次清洗微孔板。加入底物溶液并培育20分钟,直到变蓝色。加入终止液抑制显色反应,颜色变为黄色。在450nm处检测黄色吸光度。花生的浓度与测试样品的颜色强度直接成比例。

    盒子包含试剂:

    试剂盒使用96次。储存在2-8°C

    112*8微孔板,包被抗花生的抗体

    2花生标准品(0; 1; 4; 10; 40 ppm)5 vials ,每瓶1.0m,红色,即用型。

    3、抗花生过氧物酶共轭物:15ml,红色,即用型。

    4、底物溶液(TMB)15ml即用型。

    5、终止液(0.5 M H2SO4): 15 mL即用型。

    6、样品提取和稀释缓冲液(Tris): 2 x 120 mL 10x浓缩液,红色。稀释1+4蒸馏水。稀释液保存在4°C,至少可保存1周。如果冷藏结晶过程中沉淀,浓缩物应加热至3715分钟。

    7、洗涤液(PBS + Tween 20): 60 mL 10x浓缩液。稀释1+9蒸馏水。稀释液保存在4°C,至少可保存1周。如果冷藏结晶过程中沉淀,浓缩物应加热至3715分钟。

    8、塑料袋储存未使用微孔板。

    9、操作手册。

    示例标准值:

    下表是示例的典型的标准曲线。计算值是40ppm标准品的吸光度。这些值仅是示例。

    花生 (ppm)

    % binding of 40ppm

    40

    100

    10

    42

    4

    20

    1

    8

    0

    4

    性能参数:

    1、灵敏度

    检测限 (LOD)0.1ppm

    最低定量限 (LOQ) 1ppm

    由于样品基质多样性和空白影响,结果低于LODLOQ,认为阴性的

    2、精确度

    内部分析精确度

    7-10%

    互分析精确度

    2-11%

    3、线性度

    样品稀释线性度85% - 115%

    References

    1. Sen M, et al. (2002) – Protein structure plays a critical role in peanut allergen stability and may determine immunodominant IgE-binding epitopes. J Immunol, 169:882-87

    2. Turcanu V, et al. (2003) – Characterization of lymphocyte respones to peanuts in normal chil-dren, peanut allergic children, and allergic chil-dren who acquired tolerance to peanuts. J Clin Invest, 111(7):065-72

    3. Koppelmann SJ, et al. (2001) – Quantification of major peanut allergens Ara h 1 and Ara h 2 in the peanut varieties. Allergy 56(2):132

    4. Pomés A, et al. (2003) – Peanut allergen (Ara h 1) detection in foods containing chocolate. J Food Prot, 67(4):793-98

    5. Poms RE, et al. (2004) – Effect of roasting histo-ry and buffer composition on peanut protein ex-traction efficiency. Mol Nutr Food Res, 48(6):459-64

    6. Pomés A, et al. (2006) – Quantification of Ara h 1 in peanuts: why roasting makes a difference. Clin Exp Allergy, 36(6):824-30

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    8. Stephan O, et al. (2004) – Development of a real-time PCR and a sandwich ELISA for detection of potentially allergenic trace amounts of peanut (Arachis hypogeae) in processed foods. Agric Food Chem, 52(12):3754-60

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    10. Kiening M, et al. (2005) – Sandwich immunoassays for the determination of peanut and hazelnut traces in foods. J Agric Food Chem, 53(9):3321-7

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