标准豚鼠血清（无菌未经灭活）

补体C4溶血覆盖技术

电泳是通过电场作用将C4迁移率不同的同种异型分离开，然后依照分型标准定型。在某些情况下，C4A某种同种异型与C4B某种同种异型迁移率相同不易区分开，此时可用溶血覆盖技术加以区别。 1、原理 用肼处理豚鼠血清，可灭活其补体成分C4，使之成为帜缺乏的血清。将C4缺乏的豚鼠血清与致敏的SRBC混合，因缺乏C4，补体的攻膜效应不能发挥，将混合物与一定浓度琼脂糖混合倾注在电泳完毕的凝胶板上，凝胶板上C4区带使混合物中的C4成分得以补偿，溶血反应发生，凝胶板上C4条带区可出现透明溶血带。C4B的溶血

抗补体实验检测与补体结合的CIC

新鲜脱纤维羊血或Alsever液保存的羊血（4℃可保存3周） 用生理盐水洗2次，第三次用缓冲盐水，2500r/min离心lOmin，取压积红细胞用缓冲盐水配成2%悬液。为使SRBC浓度标准化，可将2%悬液用缓冲盐水稀释25倍，于分光光度计（542nm）测定其透光率（以缓冲盐水校正透光率至100%）。每次实验所用SRBC浓度（透光率）必须一致，否则应予调整；（4）致敏SRBC 2%SRBC悬液加等量1：1000溶血素，混匀，37℃水浴10rain；（5）豚鼠血清 取3只成年健康豚鼠血清混合分装

血清使用问题的总结

血清，将两份血清对比，发现高温直接影响到血清所含的抗体蛋白。在56℃下灭活半小时以上，肯定也会对里面的蛋白起到破坏作用。下次有机会我做个延长灭活时间的实验试试，看看到底有多大的影响。热灭活之后，血清放在四度冰箱久了，就会有沉淀产生，这常常会被认为是微生物污染或者是黑胶虫污染。为了验证到底有没有污染，常常又会把血清放置37℃温育，但是血清中的蛋白会进一步析出，最后还是要做镜检，无菌培养试验，和革兰氏染色试验，非常麻烦。我看过一份资料，里面提到70%的实验者认为灭活是理所当然的。常规灭活建议的温度