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- 文献和实验
- 技术资料
- CAS号:
/
- 规格:
1mL(for2×10^9cells)/250μL(for5×10^8cells)
| 规格: | 1mL(for2×10^9cells) | 产品价格: | ¥5359.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 250μL(for5×10^8cells) | 产品价格: | ¥1446.0 |
Product Introduction
Bioactivity
| 名称 | Mouse CD3+ Cell Removal Beads |
| 描述 | TargetMol 的小鼠 CD3+ 细胞去除磁珠采用共价偶联技术,将鼠 CD3 抗体固定在磁珠表面,可用于从小鼠脾脏细胞等单细胞悬液中高效去除 CD3+ 细胞。 |
| 存储条件 | Store at 4°C |
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文献和实验了编码 HA-BDCA-2 载体的小鼠 B 前体细胞后,提取的蛋白使用 SDS-PAGE 的方法进行检测。 蛋白免疫共沉淀(co-IP)与染色质免疫共沉淀(ChIP) μMACS Protein A/G MicroBeads 专为蛋白质免疫共沉淀分析而开发,免疫复合物 30 分钟即可形成并得到磁性分离。 在强磁场的分离柱中进行润洗,可保证背景充分去除,即便是弱结合的蛋白复合物依然可得到充分分离。传统免疫共沉淀工作流程需要抗体孵育过夜,相比之下 MACS Techology 可令实验时间缩短
无反应状态或死亡。 在体外联合使用 CD3 和 CD28 的抗体刺激 T 细胞,模拟 T 细胞活化的双信号作用,是进行 T 细胞激活与扩增应用最广泛的方法。除直接使用功能学抗体以外,目前磁珠法(CD3/CD28 抗体偶联磁珠)以及多聚体法(CD3/CD28 抗体偶联 Streptamer 多聚体)也是激活扩增 T 细胞比较常见的两种方法。以上说到的无论是抗体法、磁珠法、亦或者是多聚体法,归根结底都是借助于 CD3 与 CD28 抗体对 T 细胞进行刺激。 下面,我们以小鼠脾脏样本为例,分享
基本方案 用AUTOMACS系统进行总T细胞、CD4+ 细胞或CD8+ T细胞的自动分离 实验材料 1、小鼠 2、HBSS洗涤缓冲液 3、MACS缓冲液 4、磁珠 5、RPMI-10完全培养基 6、AUTOMACS系统和分选柱 7、30μm尼龙网或40μm预分离滤膜 实验方法 1、用5只小鼠的淋巴结或2只小鼠的脾脏制备单细胞悬液并去除红细胞。 2、细胞在10mlHBSS洗涤缓冲液中混悬后用血细胞计数器计数。 3、细胞悬液在4℃,200
技术资料暂无技术资料 索取技术资料









