甲基柠檬酸合酶（metheyl-citrate syntha

甲基柠檬酸合酶（metheyl-citrate synthase，MCS）试剂盒

                                  分光光度法 50管/48样

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：                           

MCS广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中，与柠檬酸合酶（CS）共同参与三羧酸循环的调节。

测定原理：

MCS催化丙酰CoA和草酰乙酸产生甲基柠檬酰辅酶A，进一步水解产生甲基柠檬酸；该反应促使无色的DTNB转变成黄色的TNB，在 412nm处有特征吸光值。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰、无水乙醇和蒸馏水

试剂组成和配制：

试剂一：液体50mL×1瓶，-20℃保存；

试剂二：液体10mL×1瓶，-20℃保存；

试剂三：液体1mL×1支，-20℃保存；

试剂四：液体50mL×1瓶，4℃保存；

试剂五：粉剂×2支，4℃保存，临用前加入800μL无水乙醇；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

试剂六：粉剂×4支，-20℃保存，临用前加入400μL蒸馏水；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

试剂七：粉剂×2支，-20℃保存，临用前加入800μL蒸馏水；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。

生化试剂盒的通用测定步骤可分为 前期准备、试剂配制、参数设置、校准与质控、样本检测、结果计算 六大核心环节，具体细节如下：

一、前期准备

1. 试剂准备：检查试剂盒各组分（R1、R2、校准品、质控品等）是否齐全、无异常（如浑浊、沉淀、变色），按要求从储存环境取出，平衡至室温（通常 20~25℃，平衡时间 5~30 分钟，具体以试剂盒说明为准），轻轻摇匀备用。

2. 样本准备：确认待检测样本类型符合要求，已按规范完成采集与处理（如血清 / 血浆样本离心分离、组织匀浆制备、尿液离心去沉淀等）；若样本需稀释或预处理（如去除干扰物），提前完成相关操作。

3. 仪器准备：确认使用的生化分析仪 / 酶标仪等仪器符合试剂盒适用要求，提前开机预热，进行仪器清洁（避免残留污染），准备好所需耗材（如反应杯、移液枪头）。

 

二、试剂配制（如适用）

1. 即用型试剂：无需额外配制，平衡至室温后直接使用。

2. 需混合试剂：按试剂盒规定比例（如 R1:R2=4:1、3:1 等）准确混合试剂组分，现配现用，避免提前配制导致试剂失效。

3. 校准品配制：用指定稀释液（如试剂盒配套稀释液、生理盐水）将校准品稀释至所需浓度梯度（通常 3~5 个梯度，如 0、20、40、80、160 nmol/L），稀释后充分摇匀备用。

 

三、仪器参数设置

根据试剂盒要求及所用仪器型号，设置核心检测参数：

1. 基础参数：检测方法（终点法、速率法、两点法等）、孵育温度（通常 37℃）、反应时间（含孵育时间和检测时间）。

2. 波长参数：主检测波长（如 450 nm、540 nm，根据反应产物特征吸收峰确定），若存在背景干扰，需设置副波长进行校正。

3. 液量参数：明确试剂与样本的比例（如 R1 200 μL + 样本 20 μL，孵育后加 R2 50 μL），确保移液体积准确。

 

 

四、校准与质量控制（保障结果准确性）

1. 校准程序：将配制好的各浓度梯度校准品依次加入反应杯，按设置的参数进行检测，记录各校准品的吸光度值 / 吸光度变化率；以校准品浓度为横坐标（X 轴）、对应吸光度相关值为纵坐标（Y 轴），采用指定拟合方式（如线性回归、Spline 拟合）绘制标准曲线，要求相关系数 R²≥0.990（具体以试剂盒性能指标为准）。

2. 质控程序：同步测定高、中、低三个水平的质控品，检测完成后查看质控结果是否在规定靶值范围内；若超出范围，需排查试剂、仪器、操作等环节问题，解决后重新进行校准与质控。

 

五、样本检测

1. 按仪器参数设定的试剂 / 样本比例，依次向反应杯加入对应试剂和待检测样本，确保加样顺序正确（如先加 R1 和样本，孵育后再加 R2）。

2. 按规定的孵育温度和时间完成反应，避免反应不充分或过度反应。

3. 反应结束后，仪器自动读取各样本的吸光度值 / 吸光度变化率，记录原始数据。

 

六、结果计算与记录

1. 依据绘制好的标准曲线，结合样本的吸光度相关值，自动或手动计算样本中被测物的浓度 / 活性（如公式：被测物浓度 =（样本吸光度值 - 空白吸光度值）× 校准品浓度 /（校准品吸光度值 - 空白吸光度值））。

2. 记录检测结果，同时标注校准曲线相关系数、质控结果等关键信息，便于后续结果追溯与验证。

 

注意事项：

 

避免样本处理中污染与降解的核心措施

一、 防止样本污染的关键操作

耗材与环境管控全程使用无菌、无酶、一次性耗材（离心管、移液器吸头），避免交叉污染；耗材开封后密封保存，防止灰尘、微生物污染。 

实验台面用 75% 乙醇或专用核酸 / 蛋白去污剂擦拭消毒；样本处理区与试剂配制区分开，杜绝气溶胶污染。 

样本分装与操作规范

原始样本（血清、血浆、组织匀浆等）采集后立即分装为单次用量，避免反复冻融导致的污染和降解；分装时做好标记（样本名称、日期）。 

加样时遵循 “一人一管一吸头” 原则，吸头避免接触样本管外壁或其他容器；操作中防止样本溅洒，若发生污染立即更换耗材并消毒台面。 

去除样本杂质血液样本避免溶血、脂血：采血后温和颠倒混匀，按说明书时间离心（一般 3000~5000 rpm，10~15 min），取上清时避免吸到红细胞层；脂血样本可通过超速离心或专用去脂试剂盒处理。 

组织 / 细胞样本裂解后，12000 rpm 离心 10~15 min，取上清液检测，去除细胞碎片、沉淀等杂质；粘稠样本可适当过滤或稀释后离心。 

二、 防止样本降解的核心策略

优化样本储存条件

短期储存：新鲜样本采集后 4℃保存不超过 24 h，避免室温放置过久；酶类、抗体等生物活性样本，室温放置不超过 2 h。 

长期储存：分装后于 - 20℃（短期，1~3 个月）或 - 80℃（长期，6~12 个月）冻存；RNA、酶等易降解样本建议添加稳定剂（如 RNase 抑制剂、蛋白酶抑制剂），或液氮速冻后转移至低温冰箱。 

严禁反复冻融：设定冻融次数≤3 次的阈值，超过则废弃样本。 

控制样本处理温度对温度敏感的样本（如酶、蛋白、RNA），全程在冰浴或 4℃低温环境下操作，减少降解；离心时选择低温离心机（4℃）。 

避免样本在高温环境（如夏季室温、孵育箱旁）长时间暴露。 

及时终止降解反应蛋白样本：加入蛋白酶抑制剂（如 PMSF），抑制蛋白酶对目标蛋白的水解；避免剧烈震荡，防止蛋白变性。 

核酸样本：加入 RNase/DNase 抑制剂，使用无酶水配制溶液，防止核酸酶降解。 

代谢物样本：采集后立即用液氮速冻，或加入固定剂 / 抑制剂，终止代谢反应。 

三、 通用质量控制措施

设立空白对照（仅加缓冲液 / 基质）和质控品（已知浓度的标准样本），同步检测，验证样本是否存在污染或降解。 

制定标准化操作流程（SOP），明确样本采集、处理、储存的每一步时间节点和条件，确保操作一致性。 

定期核查低温储存设备（冰箱、液氮罐）的温度，确保温度稳定；记录样本冻融次数，建立样本管理台账。

 

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