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猪化脓隐秘杆菌(Tp)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)

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  • ¥2800
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  • XK-PCR-3388
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  • 2025年11月14日
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    • 英文名

      Porine Trueperella pyogenes Detection Kit

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      上海晅科生物科技有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    猪化脓隐秘杆菌(Tp)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)
    英文名称:Porine Trueperella pyogenes Detection Kit
    化脓隐秘杆菌是一种重要的条件性致病菌,能引起猪,牛,羊等多种动物及人类多组织化脓性感染,给畜牧业发展带来严重影响。本试剂盒适用于检测疑似畜样的脓包,生殖道口或乳房等标本中化脓隐秘杆菌 DNA, 适用于猪化脓隐秘杆菌感染的辅助诊断。

    产品细节图片1

    本试剂盒用对化脓隐秘杆菌基因保守区设计特异性引物和探针,用一步法荧光 RT-PCR 技术对猪化脓隐秘杆菌 DNA 进行体外扩增检测,用于对可疑感染品的病原学检测。

    猪化脓隐秘杆菌(Tp)核酸检测试剂盒(探针法荧光PCR)试剂组成

    包装规格 25T/盒 50T/盒
    Tp 反应液 500μL×1 管 500μL×2 管
    酶液 25μL×1 管 50μL×1 管
    Tp 阳性质控品 50μL ×1 管 50μL ×1 管
    阴性质控品 250μL ×1 管 250μL ×1 管
    注:1)不同批号试剂不能混用;2)试剂盒内各试剂组份足够包装规格所标示的检测次数。

    储存条件及有效期:-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。

    适用仪器:ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

    标本采集:发病畜样品采集:采样前将家畜固定,用毛刷刷去其身体和乳区粘附污物,用温水擦净脓包、生殖道口或乳房,再用消毒液和 75%酒精充分消毒取样部位。 脓汁采集:无菌注射器缓慢抽出脓液,并注入无菌离心管中; 乳汁采集:人工挤乳,弃去头 3 股乳汁,第 4 股乳汁用无菌的离心管收集; 阴道分泌物采集:将套有无菌管套的输精枪插入子宫体,然后将输精枪抽出,用 10mL 无菌注射器对准管套口将子宫粘液吸出。 死亡畜样采集:无菌采集病变的肺脏、脾脏、淋巴结等小块组织迅速放入无菌袋中;胸腔积液、关节液和脓汁等液体样品放入无菌离心管中。

    保存和运输:上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置于-70℃,但不建议超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。

    产品细节图片2

    使用方法:
    1.    样品处理(样本处理区)
    1.1    样本前处理 组织样品剪碎后,加入无菌的终浓度为 50%甘油的生理盐水充分匀浆后立即进行核酸提取或者短期内保存于-20℃,长期保存置于-70℃;液体样品以 1:1 的体积比加入无菌的 50%甘油的生理盐水,充分混匀后,可立即进行核酸提取。短期内可保存于-20℃,长期保存可置于-70℃。
    1.2    核酸提取 推荐采用公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取, 请按照试剂说明书进行操作。
    2.    试剂配制(试剂准备区) 根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;反应管数每满 10 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表: 试剂    Tp 反应液    酶液 用量    19μL    1μL 将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL/管。
    3.    加样(样本处理区)   将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
    4.    PCR 扩增(核酸扩增区)
    4.1    将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
    4.2    设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL; 荧光通道选择:检测通道(ReporterDye)FAM,淬灭通道(QuencherDye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
    4.3    推荐循环参数设置: 步骤    循环数    温度    时间    收集荧光信号 1    1 cycle    95℃    2min    否 2    45 cycles    95℃    15sec    否         60℃    30sec    是
    5.    结果分析判定 5.1    结果分析条件设定 设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
    5.2    结果判断 阳性:检测通道 Ct 值≤40,且有明显的指数扩增曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
    6.    质控标准 阴性质控品:无曲线或无 Ct 值显示; 阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
    7.    检测方法的局限性 1.    样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关; 2.    样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果; 3.    阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果; 4.    病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果; 5.    不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果; 6.    试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果; 7.    本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

    注意事项
    1.    所有操作严格按照说明书进行;
    2.    试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
    3.    反应液应避光保存;
    4.    反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    5.    使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    6.    样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    7.    实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    8.    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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