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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
2-8°C
- 保质期:
根据瓶身LOT号查询
- 英文名:
Collagenase from Clostridium histolyticum
- 库存:
有现货
- 供应商:
浙江羽翔生物科技有限公司
- CAS号:
9001-12-1
- 规格:
100mg
属性
质量水平
200
表单
lyophilized powder
比活
≥125 CDU/mg solid
分子量
68,000 to 125,000
最佳pH
6.3-8.8
溶解性
TESCA buffer (50 mM TES, 0.36 mM Calcium chloride, pH 7.4): soluble 1-2 mg/mL at 37 °C
储存温度
2-8°C
一般描述
应用
生化/生理作用
制备说明
其他说明
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文献和实验Medusozoan genomes inform the evolution of the jellyfish body plan.
Cnidarians are astonishingly diverse in body form and lifestyle, including the presence of a jellyfish stage in medusozoans and its absence in anthozoans. Here, we sequence the genomes of Aurelia aurita (a scyphozoan) and Morbakka virulenta (a cubozoan) to understand the molecular mechanisms responsible for the origin of the jellyfish body plan. We show that the magnitude of genetic differences between the two jellyfish types is equivalent, on average, to the level of genetic differences between humans and sea urchins in the bilaterian lineage. About one-third of Aurelia genes with jellyfish-specific expression have no matches in the genomes of the coral and sea anemone, indicating that the polyp-to-jellyfish transition requires a combination of conserved and novel, medusozoa-specific genes. While no genomic region is specifically associated with the ability to produce a jellyfish stage, the arrangement of genes involved in the development of a nematocyte-a phylum-specific cell type-is highly structured and conserved in cnidarian genomes; thus, it represents a phylotypic gene cluster.
消化PC12是个错误观点,其一针对悬浮PC12,胰酶消化的效果不好证实,其二,我养的PC12,性质贴壁,用100%胰酶消化1小时,愣是没动静,细胞甚至不变圆。最后用力拍打才可以,但代价是细胞损伤非常大,不好恢复。其三,ATCC上明确建议用细胞刮勺刮取PC12,目前我改用刮勺,细胞传代后状态要比用胰酶消化的好很多。 4.再者关于1640和DMEM的问题,我个人观点,二者的主要区别在于DMEM含糖量高,神经细胞都喜欢这,另外1640含一些离子,是防止培养的细胞贴壁。1640一开始主要应用于单克
PBS洗两遍以彻底去除H2O2及血清的影响,只是这样一来细胞会丢失很多,该如何解决?丁香园midas的观点: 1.增加PLL的浓度,50-100ug/mg 2.没有必要把培养液去掉,并用PBS洗!H2O2及血清对MTT的影响好像 还没有见到相关报道。 丁香园liandchu的问题: 我培养的细胞是pc12细胞,这种细胞不好贴壁,我用多聚赖氨酸包被,但我不知道多大分子量多聚赖氨酸及浓度去包被效果好?, 丁香园luopeng的观点: 用赖氨酸包被培养板和培养瓶时,应该选用多聚左旋赖氨酸
固定钢网一端,用几毫升100 U/ml胶原酶洗涤碎块,然后用无菌的5ml注射器活塞碾磨碎块。捣烂直到所有的红色物质从组织中去除。再用几毫升100 U/ml胶原酶洗涤钢网。 11. 将钢网从培养皿中拿开,丢弃无色的黏附的被膜碎块。猛烈地吹打培养皿中的液体,将其转移至步骤7的50ml离心管里。用几毫升100 U/ml胶原酶洗涤培养皿后一同加入到离心管中(约有0.5%为树突细胞或者更少)。 12. 如果需要,即可用高密度的BSA离心。 附录
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