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北京百泰派克生物科技有限公司
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组蛋白和蛋白质的区别
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组蛋白与dànbáizhì的结构功能差异及生物学意义
组蛋白(histones)是一类特殊的碱性dànbáizhì,与普通dànbáizhì在结构、功能和进化地位上存在显著差异。从分子组成来看,组蛋白富含jīngānsuān和赖氨酸等碱性氨基酸(组蛋白中占比可达25%),使其等电点高达10-11.5,这种特性使其能够通过静电作用与带负电的DNA磷酸骨架紧密结合。相比之下,普通dànbáizhì的氨基酸组成更为多样化,等电点分布范围广泛(pH4-9)。在结构特征上,组蛋白具有高度保守的"组蛋白折叠"结构域,由三个α螺旋通过两个β转角连接形成特定三维构象,这种结构在真核生物中具有惊人的进化保守性,例如H4组蛋白在豌豆和牛之间的序列相似性高达95%。而普通dànbáizhì则表现出极其丰富的结构多样性,包括α螺旋、β折叠、无规卷曲等多种二级结构组合。
从功能定位分析,组蛋白主要参与染色质结构的构建和表观遗传调控。五种核心组蛋白(H2A、H2B、H3、H4)与DNA共同构成核小体这一染色质基本结构单元,而连接组蛋白H1则参与高阶染色质结构的形成。组蛋白的翻译后修饰(如甲基化、乙酰化、磷酸化等)构成"组蛋白密码",调控基因表达状态。普通dànbáizhì则承担着更为广泛的生物学功能,包括酶催化、信号转导、结构支持、物质运输、免疫防御等几乎所有的生命活动过程。在细胞定位方面,组蛋白主要存在于细胞核内,而dànbáizhì则根据其功能分布在细胞的各个区室中。
进化角度而言,组蛋白代表了zuì古老的dànbáizhì家族之一,其保守性暗示其在真核细胞中的基础性作用。研究表明,组蛋白基因在进化过程中经历了特殊的复制和选择压力,形成了jīntiān有限但高度特化的组蛋白变异体系统。相比之下,普通dànbáizhì家族在进化过程中表现出更强的可塑性和多样性,能够适应各种环境变化和功能需求。从表达调控来看,组蛋白的合成与DNA复制周期严格同步,主要在S期大量表达;而普通dànbáizhì的表达则根据细胞类型和生理状态呈现高度动态变化。
在研究方法上,组蛋白研究通常需要特殊的提取条件(如使用酸提取法),并关注其与DNA的相互作用及修饰状态。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。组蛋白研究常用的技术包括染色质免疫沉淀测序(ChIP-seq)、质谱分析修饰组等。普通dànbáizhì研究则涉及更广泛的技术体系,如Western blot、质谱蛋白zhìzǔxué、X射线晶体学等结构解析方法。值得注意的是,虽然所有组蛋白都属于dànbáizhì,但只有极少数dànbáizhì属于组蛋白家族,这种包含与被包含的关系反映了组蛋白在dànbáizhì世界中的特殊地位。
常见问题:
Q1. 组蛋白修饰与普通dànbáizhì翻译后修饰在调控机制上有何本质区别?
A:组蛋白修饰的核心特征是其组合性和可继承性。单个组蛋白尾部可同时存在多种修饰(如H3K4me3与H3K27ac共存),形成特定的修饰组合模式,这些模式能被特定识别蛋白(如bromodomain识别乙酰化)解读并转化为染色质状态。更重要的是,组蛋白修饰可通过DNA复制过程部分保留到子代细胞,构成表观遗传记忆。而普通dànbáizhì的修饰(如磷酸化)通常是独立且瞬时的,主要调节dànbáizhì活性或相互作用,不具备遗传性。
Q2. 为什么组蛋白基因在进化上比大多数dànbáizhì基因更为保守?
A:这种jíduān保守性源于组蛋白与DNA相互作用的物理化学约束。组蛋白必须维持特定的表面电荷分布和结构特征才能正确包裹DNA形成核小体,任何关键位点的突变都可能破坏这种精密相互作用,导致染色质结构不稳定。此外,组蛋白作为染色质基本结构单元,其改变会影响所有基因的表达调控网络,这种系统级效应使得组蛋白基因承受jíqiáng的纯化选择压力。相比之下,普通dànbáizhì的功能位点通常只占其结构的一小部分,其他区域可承受更多中性突变。
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文献和实验【转帖】教你一种简单、高效的提高重组蛋白质的诱导表达量的方法
。 实验步骤: 1.设计目的重组蛋白质的N端10-15个氨基酸的简并序列。 2.引物合成上述简并序列,同时设计合成目的基因反向引物。 3.PCR扩展目的基因,这样在目的基因的5‘端就引入了兼并序列,同时不改变氨基酸序列。 4.双酶切,插入到目标载体。 5.转化。 6.挑选多个克隆(比如100-200个)到1.5ml EP管,直接诱导表达(记得带上为改造克隆菌株的对照)。 7.SDS-PAGE检测。 8.挑选高表达的多个克隆,测序。 怎么样?是不是很简单,不需要做太多的摸索
重组蛋白质的表达、纯化、复性和定量 按Qiagen公司的操作手册进行,具体步骤如下。 一、重组蛋白质的诱导表达 1.挑取转化有质粒的单菌落,接种于3ml 选择性LB液体培养基中,37 o C,250 rpm/min振摇培养过夜。 2.次日将培养过夜的菌液500 μl再接种于10 ml(1: 20)选择性LB液体培养基中,37 o C,250 rpm/min振摇培养至光密度(OD600 =0.6)时,取1 ml样本作为诱导前标本
摘要 基因重组蛋白在大肠杆菌中表达时,由于表达量高,往往形成无生物活性的包涵体。包涵体必须经过变性和复性的过程才能获得有活性的重组蛋白。如何提高基因重组蛋白质的复性率,是生物工程技术的一个研究热点。对近年来的重组蛋白质的复性方法做一评述,为研究蛋白质折叠以及复性技术的进一步应用提供依据。 关键词 重组蛋白 包涵体 复性 二硫键 到目前为止,人们表达的重组蛋白质已有4000多种,其中用E.coli表达的蛋白质要占90%以上,尽管基因重组技术为大规模生产目标蛋白质提供
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