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北京百泰派克生物科技有限公司
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蛋白含量检测的经典方法
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蛋白含量检测的经典方法及其应用
蛋白含量检测是生物化学、分子生物学及临床诊断等领域的基础实验技术,其准确性直接影响下游实验结果的可靠性。目前,蛋白含量检测的经典方法主要包括Bradford法、Lowry法、BCA法(二kuílín甲酸法)以及紫外吸收法(A280法)。这些方法各具特点,适用于不同实验场景,研究者需根据样品特性、灵敏度需求及干扰因素选择合适的检测手段。
Bradford法基于考马斯亮蓝G-250染料与dànbáizhì结合后的吸光度变化,在酸性条件下,染料的zuì大吸收峰从465 nm红移至595 nm,吸光值与蛋白浓度呈正相关。该方法操作简便、快速(约5-10分钟),且对去垢剂(如SDS)耐受性较强,但易受高浓度变性剂(如尿素)或碱性缓冲液干扰。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。Lowry法则通过铜离子还原(双缩脲反应)与Folin-酚试剂的协同作用检测蛋白,灵敏度高于Bradford法(检测下限约1-5 μg/mL),但步骤繁琐且受还原剂(如DTT)、糖类或Tris缓冲液的影响显著。
BCA法结合了Lowry法的铜还原原理与BCA螯合剂,形成紫色复合物,在562 nm处检测吸光度。其优势在于对去垢剂和还原剂的耐受性优于Lowry法,且线性范围更宽(0.2-50 μg/mL),但高温孵育(37-60℃)可能影响热不稳定蛋白的测定。紫外吸收法(A280)则直接利用dànbáizhì中sèānsuān和làoānsuān的紫外吸收特性,适用于纯化后的蛋白溶液,无需额外试剂,但核酸污染(A260吸收)或高浓度缓冲液可能干扰结果。
此外,凯氏定氮法作为传统方法,通过测定样品总氮量推算蛋白含量,虽准确性高,但耗时较长且需zhuānyè设备,多用于食品工业而非实验室常规检测。近年来,荧光染料法(如NanoOrange)因超高灵敏度(ng级)逐渐应用于微量蛋白检测,但成本较高。
常见问题:
Q1. 如何选择适合复杂样品(如细胞裂解液)的蛋白含量检测方法?
A:细胞裂解液常含去垢剂、还原剂及核酸,推荐BCA法或改良型Bradford法(如添加SDS兼容试剂)。BCA法对还原剂耐受性较好,而Bradford法的快速性适合高通量筛选。若存在严重核酸污染,可结合A280/A260比值校正或采用核酸酶预处理。
Q2. 高浓度尿素或盐酸胍是否会影响蛋白含量检测结果?
A:尿素和盐酸胍会干扰Bradford法(导致染料沉淀)和Lowry法(抑制铜还原反应)。此时建议使用BCA法(适当延长孵育时间)或紫外吸收法(需注意变性剂在280 nm处的本底吸收)。亦可稀释样品至变性剂浓度低于1 M以降低干扰。
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文献和实验最近 WB 的结果趋势不是很理想,因为给了蛋白 B 的抑制剂蛋白 B 却没有明显变化。于是大伙儿一合计,可能需要再看看蛋白质之间的相互作用,会不会是抑制剂影响了蛋白 B 和蛋白 C 之间的结合,而不是直接导致蛋白 B 的降解。 大家都知道研究蛋白质相互作用的三大经典方法是:酵母双杂交(Y2 H),免疫共沉淀(CoIP)和 GST pulldown。结合我们课题组的这个实验,因为只需看看蛋白 B 和 C 之间的结合,而且已知蛋白 B 和 C 是会结合的,所以可能用 CoIP 最简便
一、原理: 免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,Co-IP)技术是检测蛋白质间相互作用的经典方法,基本原理是以细胞内源性靶蛋白为诱饵,将靶蛋白抗体与细胞总蛋白进行共孵育,促进免疫复合物的形成;随后加入能够与抗体Fc段结合的proreinA/G(预先结合固化在琼脂糖小珠上),形成“结合蛋白-靶蛋白-靶蛋白抗体-proteinA/G小珠”复合物,纯化该复合物后凝胶电泳分离蛋白,应用Westernblot或者质谱技术鉴定靶蛋白的结合蛋白。 与其它研究方法相比,免疫
免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的用于研究蛋白质相互作用的经典方法。它可以: 测定两种目标蛋白质是否在体内结合; 确定一种特定蛋白质的新的作用搭档; 分离得到天然状态的相互作用蛋白复合物。 一、实验原理 当细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留了下来。如果用蛋白质 X 的抗体免疫沉淀 X,那么与 X 在体内结合的蛋白质 Y 也能沉淀下来。 目前多用精制的 prorein A 预先结合固化
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