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北京百泰派克生物科技有限公司
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外泌体浓度测定流程
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外泌体浓度测定流程的技术解析
外泌体浓度测定流程是外泌体研究中的关键步骤,直接影响下游实验的可靠性和重复性。外泌体作为直径30-150 nm的细胞外囊泡,携带dànbáizhì、核酸和脂质等生物活性分子,其浓度测定通常涉及分离、纯化和定量三个主要环节。首先,样本预处理需通过差速离心或超速离心去除细胞碎片和大颗粒杂质,随后采用密度梯度离心或尺寸排阻色谱(SEC)进一步纯化外泌体。在定量阶段,常用的方法包括纳米颗粒追踪分析(NTA)、动态光散射(DLS)、外泌体特异性蛋白标记(如CD63、CD9)的ELISA或流式细胞术,以及新兴的微流控技术。其中,NTA通过激光散射和布朗运动分析粒径分布与颗粒浓度,是目前应用zuì广的外泌体浓度测定流程核心手段,而DLS则更适合均一样本的快速筛查。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。
外泌体浓度测定流程的准确性受样本来源(如血浆、尿液或细胞培养上清)和保存条件的影响。例如,血浆中的脂蛋白可能干扰NTA检测,需通过抗体捕获或超滤预处理降低假阳性。此外,外泌体浓度测定流程中需注意避免反复冻融导致的囊泡破裂,推荐使用新鲜样本或添加蛋白酶抑制剂。对于低浓度样本,可借助外泌体富集技术(如聚合物沉淀或免疫磁珠分选)提高检测灵敏度。近年来,数字PCR(dPCR)和单外泌体表型分析(SEA)等新技术开始应用于外泌体浓度测定流程,能够实现单颗粒水平的juéduì定量和分子分型。
在标准化方面,国际细胞外囊泡学会(ISEV)建议外泌体浓度测定流程需结合多模态验证,例如同时使用NTA和dànbáizhì定量(如BCA法)以交叉确认数据可靠性。此外,不同方法的分辨率差异需纳入考量:NTA可区分外泌体与微泡,但无法识别蛋白聚集体;而透射电镜(TEM)虽能直观观察形态,却难以统计浓度。因此,优化外泌体浓度测定流程需根据研究目标权衡通量、成本和技术限制。
常见问题:
Q1. 高粘度生物体液(如痰液或脑脊液)如何优化外泌体浓度测定流程?
A:此类样本需先经稀释或酶解处理(如透明质酸酶)降低粘度,再通过超速离心或SEC去除残留大分子。推荐结合NTA与电阻脉冲传感(RPS)技术,后者对溶液粘度不敏感,可提高检测准确性。
Q2. 外泌体浓度测定流程中如何区分外泌体与非囊泡性脂蛋白?
A:可采用密度梯度离心(如碘克沙醇梯度)分离不同密度颗粒,或使用抗ApoB/ApoA1抗体去除脂蛋白。此外,外泌体tèyǒu的跨膜蛋白(如CD63)的免疫捕获联合qPCR可特异性定量。
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文献和实验分析报告。 从上图结果可以看出,超离法和试剂盒法得到的外泌体大小差不多,基本在 110-120 nm,颗粒数浓度也相似,在 3*10 的 10 次方 particles/ml 左右。 BCA 蛋白浓度测定结果:将外泌体样本进行 BCA 蛋白浓度测定,结果如下表。 样本名 BCA 浓度(ug/ul) UC-1 0.18 UC-2 0.14 SXX-1 1.60 SXX-2 1.87 UXX-1 2.10 UXX-2 3.10 WB 检测标志物:根据上述的 BCA 定量结果,制备
是通过促进肿瘤微环境中不同细胞间的相互作用,从而影响肿瘤生长、侵袭、转移、血管生成和耐药性。从肿瘤治疗的角度来看,外泌体可以被视为传递 microRNA 的靶向递送载体,其在肿瘤组织中高效、特异地调节靶基因的表达,进而对抗肿瘤治疗产生积极作用。常用的将 microRNA 药物装载到外泌体中的方法包括共孵育、电穿孔、超声、转染等。4.3 外泌体载药在大规模生产和纯化中的现状与问题作为细胞产物的生物制品,外泌体产品的质量与宿主细胞的质量关系密切。药用外泌体制剂必须采用 GMP 级别的生产流程,以确保其生物
Strep-tag®:适用范围广 纯化选择多 由于 His-tag 系统使用 Ni 离子,所以在纯化金属蛋白(多数为酶)时,可能会受到金属间交互作用的干扰,而使用 Strep-tag® 则不会出现此问题,因 Strep-Tactin® XT 与 Strep-tag® 的特异性结合不受金属离子影响。且因其温和的纯化流程,所以还能用于纯化大型蛋白、多亚基的蛋白复合体或是跨膜蛋白,并且保持蛋白功能。以 Strep-tag® 系统纯化出不同的蛋白,下图为例: 图 1 依据研究项目的不同,各实验室使用
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