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北京百泰派克生物科技有限公司
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免疫共沉淀input组有条带
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免疫共沉淀input组有条带解析
在免疫共沉淀(Co-IP)实验中,input组作为关键对照之一,其条带的质量直接影响实验结果的可靠性和后续分析的准确性。免疫共沉淀input组有条带通常是指在进行Western blot检测时,input样品在目标蛋白对应的分子量位置出现清晰可见的条带。这一现象表明,input样品中目标蛋白表达量充足,且样品制备过程未出现明显降解或操作失误。input组的设计初衷是验证实验体系中目标蛋白的存在,并为后续免疫沉淀效率的评估提供基准。若免疫共沉淀input组有条带但实验组未出现相应条带,则可能提示抗体结合效率低、蛋白互作不稳定或实验条件需优化。反之,若input组无条带,则需排查样品制备、抗体特异性或电泳转膜等问题。
免疫共沉淀input组有条带的出现依赖于多个关键步骤的优化。首先,细胞或组织裂解液的制备需使用适当的缓冲液(如RIPA或NP-40),并添加蛋白酶抑制剂以防止蛋白降解。其次,input样品的上样量需根据目标蛋白丰度调整,通常占总裂解液的1-10%。此外,抗体的选择至关重要,需通过文献检索或预实验验证其特异性。Western blot过程中,转膜效率、封闭条件和二抗稀释比等因素也会影响免疫共沉淀input组有条带的清晰度。若条带信号弱,可尝试增加上样量、延长曝光时间或优化抗体孵育条件。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定,但核心在于技术细节的jīngzhǔn把控。
在数据分析阶段,免疫共沉淀input组有条带的强度可用于半定量分析。通过ImageJ等软件测量条带灰度值,可计算免疫沉淀组与input组的信号比值,从而评估结合效率。需注意,input组条带应避免过饱和,否则会影响定量准确性。若出现非特异性条带,需排查抗体交叉反应或样品污染。对于低丰度蛋白,可采用信号放大系统(如ECL Plus)增强检测灵敏度。免疫共沉淀input组有条带的稳定性也是实验重复性的重要指标,建议至少重复三次以确认结果可靠性。
常见问题:
Q1. 免疫共沉淀input组有条带但实验组无信号,可能原因是什么?
A:可能原因包括抗体与目标蛋白结合效率低(如抗原表位被遮蔽)、蛋白互作条件不稳定(如缓冲液pH或盐浓度不适)、或目标蛋白在免疫沉淀过程中降解。建议优化裂解缓冲液配方、更换抗体或添加交联剂稳定互作复合物。
Q2. input组条带出现拖尾或弥散现象,如何解决?
A:拖尾通常提示样品降解或SDS-PAGE分离不充分。可检查蛋白酶抑制剂是否失效、样品是否反复冻融,或调整凝胶浓度和电泳条件。弥散条带可能与蛋白翻译后修饰(如磷酸化)有关,需通过特异性抗体或酶处理进一步验证。
Q3. 如何确定input组的上样量是否合适?
A:可通过预实验进行梯度上样(如5μg、10μg、20μg),选择目标条带信号线性范围内的上样量。同时,用内参蛋白(如GAPDH或β-actin)验证上样一致性。
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文献和实验染色体免疫共沉淀法(ChIP)分析细胞和组织中未固定染色体中组
., methylation and acetylation) on histones. In summary, nuclei are purified from fresh/frozen tissues or from cells, and the chromatin, after fractionation with micrococcal nuclease (MNase), is purified from the nuclei. This "input chromatin
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了一线技术支持常被问到的问题,希望这篇纯干货能帮助大家顺利升级打怪,早日驾驭 IP、co-IP。 IP、co-IP、pull-down 简介 IP(Immunoprecipitation),免疫沉淀:是利用固定在磁珠或琼脂糖树脂等基质上的特异性抗体对抗原进行小型亲和纯化的一种方法 Co-IP(co-Immunoprecipitation),免疫共沉淀: co-IP 是一种常用的鉴定蛋白-蛋白相互作用的方法,其基本实验流程和IP类似,通过使用诱饵蛋白(IP 中的抗原,bait protein)特异
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