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磷酸化蛋白提取注意事项
磷酸化蛋白提取是研究dànbáizhì翻译后修饰的关键步骤,其质量直接影响下游检测的灵敏度和准确性。在实验过程中,磷酸化蛋白提取注意事项涉及多个关键环节,包括样品处理、裂解缓冲液选择、蛋白酶和磷酸酶抑制剂的添加、温度控制以及后续纯化策略。首先,样品的新鲜度至关重要,组织或细胞样本应在采集后立即置于液氮或-80°C保存,避免反复冻融导致磷酸化蛋白降解。对于细胞样本,建议在裂解前用预冷的PBS洗涤,以去除培养基中的干扰成分。裂解缓冲液的配方需根据目标蛋白特性优化,通常包含非离子型去垢剂(如NP-40或Triton X-100)以维持蛋白溶解性,同时避免破坏蛋白相互作用。
磷酸酶抑制剂的合理使用是磷酸化蛋白提取注意事项中的核心环节。钠正交钒酸盐(Na3VO4)和β-甘油磷酸钠是常用的广谱磷酸酶抑制剂,但需注意前者需在缓冲液中预激活(通过调节pH至10后煮沸)。此外,蛋白酶抑制剂混合物(如PMSF、亮抑酶肽)需现配现用以防止蛋白降解。裂解过程应在4°C条件下进行,以减少蛋白水解酶活性。离心速度和时间也需标准化(通常为12,000-16,000×g,15分钟),避免过度离心导致膜蛋白丢失。对于难溶性磷酸化蛋白,可尝试超声破碎或使用强变性缓冲液(如含SDS的RIPA)。
磷酸化蛋白提取注意事项还包括后续纯化步骤的优化。免疫沉淀(IP)前需通过Bradford或BCA法jīngquè量化蛋白浓度,避免抗体过量或不足。若需富集低丰度磷酸化蛋白,可先用固定化金属亲和层析(IMAC)或èryǎnghuàtài(TiO2)柱预处理。具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定。此外,Western Blot检测时建议使用磷酸化特异性抗体,并设置总蛋白对照(如β-actin)以验证上样均一性。
常见问题:
Q1. 如何解决磷酸化蛋白提取过程中出现的蛋白聚集现象?
A:蛋白聚集可能由裂解缓冲液中去垢剂浓度不足或pH值偏离导致。建议优化缓冲液配方(如增加CHAPS浓度至1%-2%),并加入还原剂(如DTT或β-巯基乙醇)防止二硫键形成。对于jíduān难溶蛋白,可尝试尿素/liúniào变性缓冲液结合温和还原条件。
Q2. 磷酸化蛋白提取后Western Blot信号弱,可能的原因有哪些?
A:信号弱可能源于磷酸酶残留活性或表位遮蔽。建议在裂解缓冲液中追加fúhuànà(NaF)和焦磷酸钠(Na4P2O7)双重抑制磷酸酶,并在电泳前通过加热变性(95°C,5分钟)暴露抗原表位。若问题持续,可尝试làoānsuān磷酸化特异性抗体预吸附纯化步骤。
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文献和实验避免蛋白降解 z 总体规则:蛋白酶普遍存在,在提取蛋白质的步骤中,早些抑制,经常抑制z 分装蛋白溶液,储存于不同的温度和不同的缓冲液中,测蛋白活性,找出最适储存条件。z 冷藏,并加入稳定剂。这些稳定剂一般都能充分保持蛋白的 生物 学活性。z 将蛋白溶液储于50%(V/V)的甘油或悬于硫酸铵(3.2M)中,避免冻存z 冰结晶会造成物理剪切及蛋白变性。z 避免酶的反复冻融,如果酶需要冻存,分装成小管
咪咪土拨鼠 各位大侠好, 我是外科学的医学生,现在在实验,提的问题很弱智,大家勿拍。 我做目的蛋白的western, 发现其在处理组有明显的分子量漂移,初步推测其为磷酸化改变---因为再同时加了一种激酶的抑制剂后,这种漂移消失了。 但问题是,怎么证明它确实是磷酸化呢? 我查了查文献,目前常用的是放射性P实验和质谱分析什么的,但这对于我们的条件和经费来说,似乎不太可能。 我的问题: 1. 是否可以在用
相关专题磷酸化蛋白 的 Western Blotting 检测站长注: 磷酸化蛋白 的 Western Blotting 检测是信号通路研究中的经典方法。细节决定成败,在科研中更是如此,本文详细讲述了实际操作过程中应该注意的事项,主创为园子里的 llllcjchina 站友,站长在此进一步整理总结,并对局部进行了修改,以更方便大家学习。 1. 一定要在 lysis buffer 中加入蛋白
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