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野百合碱诱导的肺动脉高压模型

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  • 野百合碱诱导的肺动脉高压模型
  • 上海
  • 2026年01月08日
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      上海达为科生物科技有限公司

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      野百合碱诱导的肺动脉高压模型

    一、模型机制与病理特征

    1. 毒性作用机制

    • 代谢激活
      MCT在肝脏经 细胞色素P450 3A4(CYP3A4) 代谢为活性bi咯衍生物(MCTP),经血液循环靶向富集于肺血管内皮细胞 。
    • 内皮损伤
      MCTP通过烷基化DNA和蛋白质,诱导内皮细胞凋亡、线粒体功能障碍及氧化应激(ROS↑),触发炎症级联反应(TNF-α/IL-6↑) 。
    • 血管重塑核心通路
      • 炎症驱动:NF-κB通路激活→巨噬细胞浸润→释放TGF-β 。
      • 增殖失控:BMPR2/p38 MAPKα信号抑制→平滑肌细胞(SMC)异常增殖;PI3K/Akt/mTOR通路激活→SMC迁移 。
      • EMT转化:内皮-间充质转化(EndMT)促进肌成纤维细胞积累 。

    2. 病理进程与人类PAH一致性

    病理改变模型表现临床关联性
    早期(1-2周)内皮肿胀、炎性浸润(巨噬细胞/中性粒细胞)类似特发性PAH急性炎症期 
    中期(3-4周)肺小动脉中膜肥厚(α-SMA↑)、内膜纤维化模拟慢性血管重构 
    晚期(>4周)丛状病变、血管闭塞、右心室肥厚(RVH)逼近终末期PAH 

     


    二、标准化造模流程

    1. 实验动物选择

    物种敏感性适用场景证据
    SD/Wistar大鼠机制研究、药物筛选(成本低、技术成熟) 
    C57BL/6小鼠中(需优化剂量)基因修饰研究(如TWIST1敲除) 
    西藏小型猪大型动物转化研究(肺动脉压变化显著,病理贴近人) 

    关键参数

    • 年龄/性别:成年雄性(避免雌激素干扰) 。
    • 体重:大鼠200±20g(小鼠20-25g) 。

    2. 药物配制与给药方案

    • MCT溶液制备

      • 溶解于0.5 mmol/L盐酸→调pH至7.4→生理盐水稀释至12.5-25 mg/mL 。
      • 或溶于55%乙醇(小型猪用) 。
    • 给药方式与剂量

      物种途径剂量成模时间成功率
      大鼠腹腔注射60 mg/kg(单次)3-4周>90%
      大鼠皮下注射60-80 mg/kg4周85%
      小鼠腹腔注射600 mg/kg4周70%
      小型猪腹腔注射9 mg/kg5-6周

    操作警示

    • 注射后需监测急性肝毒性(死亡率<10%) 。
    • 小鼠模型需验证品系敏感性(C57BL/6效果弱于BALB/c) 。

    3. 复合模型优化(提升临床贴合度)

    • MCT+慢性低氧
      • 大鼠注射MCT(60 mg/kg)后置低氧舱(FiO₂=10%,4周)→加重血管重塑 。
    • MCT+手术分流
      • 建立左肺切除+ MCT注射模型→模拟先天性心脏病相关PAH 。

    三、模型评估体系

    1. 血流动力学与心功能指标

    检测项目方法阳性标准机制关联
    右心室收缩压(RVSP)导管法(金标准)大鼠≥40 mmHg(对照25±5 mmHg) 直接反映肺动脉压升高
    平均肺动脉压(mPAP)导管法小型猪≥30 mmHg(对照15±3 mmHg) 血管阻力增加
    右心肥厚指数(RVHI)[RV/(LV+S)]×100%大鼠≥30%(对照20±5%) 右心室代偿性肥厚
    右心室dp/dt max导管法绝对值显著升高(提示收缩功能亢进) 心肌代偿期表现

    2. 组织病理学量化

    • 染色技术
      • H&E:炎性浸润、血管壁增厚(图9示肺泡充血/间隔增宽) 。
      • α-SMA免疫组化:中膜肥厚程度(血管肌化率>50%) 。
      • Masson/Sirius Red:胶原沉积面积(纤维化评分≥2级) 。
    • 超微结构:电镜观察内皮细胞凋亡、基底膜断裂 。

    3. 分子标志物检测

    靶点类型核心指标检测方法意义
    炎症因子TNF-α, IL-6, IL-1βELISA(BALF)炎症级联激活 
    纤维化标志TGF-β, Collagen-I, HydroxyprolineWB/比色法血管重塑驱动 
    通路蛋白p-p38 MAPK, BMPR2, TWIST1WB/IHC调控SMC增殖 
    氧化应激MDA, SOD生化试剂盒内皮损伤辅助指标 

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