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文献和实验操作顺序:1.先打开真空泵,预热约20~30分钟;关闭泵。2.打开主机电源开关,观察控制器上的冷凝室温度显示,当冷凝室内的温度降至-40℃以下时,将预冻好的样品和搁板从超低温冰箱中取出,放在干燥室内。3.检查所有的外挂瓶阀,确认其处于关闭状态(大头向上)。4.检查仪器右侧的放水阀,确认其处于关闭状态。5.打开真空泵,使系统开始抽真空。观察控制器上的真空值显示,当真空值降至0.1mbar以下时,主干燥开始。外挂瓶操作的注意事项:1.只有当真空值降至0.1mbar以下时,才可挂外挂瓶。2.将预冻好样
是: 1.在大规模的装置中培养病毒;2.去除富含病毒培养液;3.通过沉淀将病毒浓缩;4.通过密度梯度离心最终纯化病毒。现在我们讲解每个步骤的一些细节。 1.在大型装置中培养细菌: 为获得足够的用于化学研究的病毒,必须制备大量病毒。每种病毒的培养都有不同的步骤。脊髓灰质炎病毒是在人或灵长类动物细胞系中培养的,可以培养在一大瓶中沿壁生长的单层细胞上,也可以在一个轻轻搅拌的细胞悬液中。在有利病毒生长的条件下,每个宿主细胞能生产10~1000的感染单位的病毒,即每毫升一个感染单位的滴度(或称效价
心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可。人经验者直接用左手小指钩起鼠尾,迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时,则需将小鼠作一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位(必要时先行麻醉),再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固定,先根据动物大小选择好合适的固定架,并打开鼠筒盖,手提鼠尾巴,让动物头对准鼠筒口并送入筒
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