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- 2026年02月04日
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伊莱博生物科技（上海）有限公司
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大鼠痴呆模型
大鼠痴呆模型的制备方法及实验流程
1. 血管性痴呆（Vascular Dementia, VaD）模型
1.1 双侧颈总动脉闭塞法（2-VO）
双侧颈总动脉闭塞法是制备血管性痴呆模型的常用方法，通过结扎双侧颈总动脉，模拟脑缺血，诱导认知功能障碍。
动物选择：成年Sprague-Dawley大鼠，体重200±20g。
麻醉：异氟烷麻醉。
手术步骤：
大鼠固定在立体定位仪上，头皮正中切口，暴露颅骨。
结扎双侧颈总动脉。
术后护理：保持体温，术后监测动物状态。
模型验证与评估：通过新物体识别（NOR）任务、Morris水迷宫（MWM）测试和苏mu精-伊红（H&E）染色评估模型。
2. 阿尔茨海默病（Alzheimer's Disease, AD）模型
2.1 Aβ注射模型
Aβ注射模型通过向大鼠脑内注射Aβ肽，诱导认知功能障碍，模拟AD的病理特征。
动物选择：成年SD大鼠，体重200-300g。
手术步骤：
麻醉实验鼠，将Aβ直接注入脑室。
模型特点：脑内急性注射Aβ可使动物产生与AD相似的行为障碍和记忆缺损症状。
2.2 病毒介导的基因过表达模型
病毒介导的基因过表达模型通过病毒载体介导的基因过表达，诱导AD的病理特征。
动物选择：成年Sprague-Dawley大鼠。
手术步骤：
使用病毒载体（如AAV）介导的APP基因过表达，构建AD模型。
模型特点：该模型能够模拟AD的病理特征，如Aβ沉积和记忆障碍。
3. 实验流程
3.1 术前准备
动物选择：成年Sprague-Dawley大鼠，体重200±20g。
适应性饲养：适应性饲养1周，自由进食饮水。
3.2 手术操作
麻醉：异氟烷麻醉。
手术步骤：按照上述方法进行手术操作。
3.3 术后护理
保温：术后将动物置于37℃电热毯上直至苏醒。
补液：皮下注射生理盐水。
疼痛管理：术后给予布洛芬缓解疼痛。
3.4 模型验证与评估
神经功能评分：采用新物体识别（NOR）任务、Morris水迷宫（MWM）测试评估认知功能。
组织学检查：通过苏mu精-伊红（H&E）染色和免疫组化染色评估病理变化。
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文献和实验一、SD大鼠的麻醉 1、SD大鼠腹腔麻醉 把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。 乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。 乳化异氟烷，大鼠
快速老化痴呆模型小白鼠SAMP8, SAMP10老化特征研究进展
快速老化模型小白鼠（Senescence Accelerated Mouse，SAM）由日本京都大学竹田俊男教授经20年近代延交培育而成，具备均一的遗传背景和稳定老化病态特征。SAM品系中，P8和P10除具有P品系的一般老化症状外，伴快速老化自然出现学习记忆力障碍和低恐怖低紧张状态，为脑老化痴呆模型小白鼠；其共同点是均具有认知障碍，且在渡过生长期后（4～6月），伴快速老化自然发生，与临床痴呆的渐进性发生极为相似。另外两者还各具特点，病理变化具有一定的差异。P8脑中主要出现明显的β-淀粉
大鼠麻醉后，背部脱毛，于 T9-T11 胸椎区域消毒，划约 2-3cm 纵行切口，咬除椎板，暴露硬脊膜，将大鼠固定于多功能鼠固定台，应用脊髓打击器撞击骨髓（打击高度 12mm，重量 10g）大鼠出现尾部痉挛性摆动，表明造模成功。造模后，对各组大鼠进行脊髓损伤的行为学评分，利用斜板实验评测动物脊髓损伤后神经功能恢复情况，分析在脊髓损伤不同时期的变化规律。
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