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动物造模丨哮喘动物模型

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  • 在新药研发的过程中,前期细胞实验和动物实验是不可或缺的环节。因此,构建与人类哮喘病理生理及临床变化高度拟合的哮喘实验动物模型,一直是哮喘实验研究的基础和核心所在。这样的模型不仅有助于我们更深入地理解哮喘的发病机制,还能为新药研发提供有力的实验支持。
  • 天津
  • 2026年04月28日
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    • 提供商

      天津国晟中源科技有限责任公司

    • 服务名称

      哮喘动物模型

    • 规格

    哮喘动物模型

    一、模型简介

    支气管哮喘,简称哮喘,是一种由多种细胞组分和复杂的细胞因子网络共同参与,对过敏性与非过敏性因素产生特异性反应的慢性气道炎症性疾病。哮喘作为临床上最常见的慢性病之一,给医疗卫生系统带来了沉重的负担。

    在新药研发的过程中,前期细胞实验和动物实验是不可或缺的环节。因此,构建与人类哮喘病理生理及临床变化高度拟合的哮喘实验动物模型,一直是哮喘实验研究的基础和核心所在。这样的模型不仅有助于我们更深入地理解哮喘的发病机制,还能为新药研发提供有力的实验支持。

    二、动物选择

    1、小鼠:

    小鼠作为模型动物,在人类多个系统疾病研究中占据重要地位。其基因组背景纯净,品系丰富,生物学试剂及抗体完备且性价比高,能够成功复制哮喘经典的气道高反应、气道慢性炎症以及黏液增多等症状。

    尽管有文献报道小鼠存在体积小、操作及取材较为困难、造模需要多次致敏和激发等缺点,但由于其高度可复制性和模拟人类哮喘病理生理过程的准确性,小鼠目前仍是支气管哮喘研究最为常用的动物模型。

    其中,BALB/c和C57BL/6品系的小鼠因其稳定的遗传背景和良好的实验效果,成为最常用的品系。

    图片

    2、豚鼠:

    豚鼠哮喘模型作为最早且最经典的动物哮喘模型之一,自1976年就有应用卵清蛋白(OVA)建立豚鼠哮喘模型的报道,此后相关文献报道层出不穷。Ressmever等也认为豚鼠在气道药理模型上相较于大鼠和小鼠更为合适。

    然而,豚鼠模型也存在一些显著的缺点。由于豚鼠的生物学抗体较少,敏感性强,个体反应差异大,导致造模过程中可能出现不致敏或过度反应死亡的情况,从而影响造模成功率。

    图片

    此外,豚鼠的价格相较于小鼠更为昂贵,增加了研究成本。因此,近年来豚鼠在支气管哮喘建模中的应用有逐步减少的趋势。在豚鼠哮喘模型的研究中,多数研究者选择雄性豚鼠,鼠龄在25-35天,体重150-250克之间。

    三、哮喘模型造模

    (一)过敏性哮喘模型

    特点:与人类哮喘病理生理机制最接近的哮喘模型类型。过敏原为卵清蛋白、花粉、有机粉尘等。

    造模步骤(以卵清蛋白为例):

    1、腹腔注射致敏剂(如卵清蛋白加氢氧化铝凝胶)。

    2、第7、14天再次注射,加强致敏。

    3、在第24天开始用致敏剂滴鼻激发,每日1次,连续五次激发。

    (二)感染性哮喘模型

    特点:应用呼吸道合胞病毒(RSV)、内毒素、脂多糖等致敏。

    造模步骤(以RSV为例):

    1、使用RSV感染小鼠。

    2、在RSV感染的基础上,使用OVA等致敏剂进行致敏和激发。

    (三)职业性哮喘模型

    特点:由工作场所特定的环境因素所诱发的哮喘病症。

    造模步骤(以甲醛为例):

    1、使用气态甲醛预处理小鼠(每天6小时,持续10天)。

    2、监测血清中特异性IGE水平的变化。

    (四)肥胖哮喘模型

    特点:研究肥胖对哮喘的影响。

    造模步骤(以高脂饲料为例):

    1、使用不含致敏原的自制高脂饲料喂养小鼠。

    2、同时使用卵清蛋白等致敏剂进行致敏和激发。

    四、注意事项

    1、根据具体模型类型(如过敏性、感染性、职业性或肥胖性哮喘),选择合适的造模剂和激发方式。

    2、严格控制实验条件,如温度、湿度、光照等,以减少外界因素对实验结果的影响。

    3、密切观察动物的行为、呼吸、体重等指标,以及气道炎症、气道高反应性等病理变化。

    参考文献:

    1. 支气管哮喘病证结合动物模型建立方法的研究进展 [J] . 蓝凰齐 ,唐汉庆 ,黄岑汉 . 云南中医学院学报 . 2017,第006期

    2. 支气管哮喘动物模型建立及研究现状 [J] . 陈一平 . 医学综述 . 2014,第005期

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      健康 Wistar 大鼠 雌雄不限 30 日龄 体重 60-80 克 ,随机分组 每组 10 只 依据分组不同分笼饲养 可以自由进食去卵白蛋白 不含鸡蛋 的特殊纯种饲料和水 动物房温度 19-25oC 湿度 55-65% 光照 10-12 小时/天 鼠笼每周清洗消毒两次1 致敏模型组 分别于第 1 天 第 8 天用新鲜配制的 OVA GradeV 1mg+ AI OH3 200mg+生理盐水 1ml 混悬液在大鼠两腹股沟 腹 前足跖 共 4 点作皮下注射每点 0.2ml 同时一点腹腔

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