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灌流细胞培养系统

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  • 2026年01月16日
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    • 技术资料
    一)功能应用及设备优点
     
    提高细胞活力
     
    严密控制多个变量
     
    易于使用且灵活
     
    节省成本和时间
     
    能够长期培养
     
    (二)产品应用案例及发表文献
     
    1)Mäki-Mikola, E., Lauren, P., Uema, N. et al. Establishing a simple perfusion cell culture system for light-activated liposomes. Sci Rep 13, 2050 (2023).
     
    虽然多种脂质体和其他纳米颗粒药物载体在临床前研究中表现出了很大的优势,但它们在临床研究中未能复制相同的优势。在体外研究中,例如,免疫系统的缺乏和纳米颗粒的沉积已经被认为是可能的因素。沉降导致粒子躺在细胞的顶部,增加了纳米颗粒和细胞之间相互作用的可能性。
     
    在本文研究中,作者采用Quasi Vivo流动细胞培养系统进行了表征和优化,多个腔室可以连接在同一个系统中,创造了在同一系统中包含在不同区域培养的多个细胞系的可能性。建立一种研究光活化脂质体的新型细胞培养工具。
     
     
    2)Spencer, C.E.; Rumbelow, S.; Mellor, S.; Duckett, C.J.; Clench, M.R. Adaptation of the Kirkstall QV600 LLI Microfluidics System for the Study of Gastrointestinal Absorption by Mass Spectrometry Imaging and LC-MS/MS. Pharmaceutics 2022, 14,
    364.

     
    由于口服药物复制胃肠道复杂结构和环境的挑战,口服药物的吸收研究可能是困难的。这些研究通常涉及Caco-2细胞的使用。本文作者用pH调节的阿托伐他汀溶液流过胃肠道组织的顶端层,用营养液流过组织的基底层以维持组织活力。组织样本被快速冷冻、冷冻切片,并使用MALDI质谱成像(MSI)成像。对辅料对吸收的影响进行了概念验证研究。在Quasi Vivo流动细胞培养系统中加入不同浓度的溶解剂。测定受体回路中阿托伐他汀的量,以研究赋形剂对渗透到组织中的药物量的影响。
    产品细节图片1 
     
     
     
    3)Kupper, N.; Pritz, E.; Siwetz, M.; Guettler, J.; Huppertz, B. Placental Villous Explant Culture 2.0: Flow Culture Allows Studies Closer to the In Vivo Situation. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7464.

     
     
    胎盘作为胎儿的一个器官,在妊娠期间暂时存在,并作为胎儿的肺、肝、肾和肠道。使母体和胎儿之间能够交换的绒毛膜绒毛被组织成绒毛树,并自由漂浮在母体血浆和血液中的体内。在本文里,作者认为绒毛外植体的体外培养应该以最具功能和最自然的方式进行,以获得代表子宫内环境的稳健结果。因此,本研究旨在建立正常胎盘氧条件下胎盘绒毛外植体的流动培养系统,采用Quasi Vivo流动细胞培养系统模拟从母亲到胎盘的血流,并回到迄今为止最原生的体外系统。
     (三)产品用户概况
    全球使用Kirkstall Quasi Vivo®器官芯片微生理系统的学术及研究机构已超过100+个,遍布美国、英国、法国、瑞典、奥地利、意大利、荷兰、瑞士、日本等。
     
    (四)品牌制造商简介
    Kirkstall Ltd.成立于 2006 年,是 Braveheart Investment Group plc 的子公司,总部位于英国约克。Kirkstall开发了一种创新的微生理系统的器官芯片模型Quasi Vivo®。作为器官芯片技术的lingdaozhe,Kirkstall已经建立了牛津大学生物医学工程研究所等著名的大学实验室的庞大用户群,产品在全球范围内享有盛誉。
     
     
     
    北京基尔比生物科技有限公司是Kirkstall ltd.授权在中国的唯一和独家总代理商,全面负责Kirkstall公司旗下所有产品在中国的销售,市场推广和技术支持等事宜。
     

     

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    图标文献和实验
    该产品被引用文献
    approaches have been applied to ensure proper medium supply, namely orbital shaking,11 spinning flasks6 and mini-bioreactors.10 However, applying fluidic systems (micro- or millifluidic) have not been considered, so far. In case of the hMOs, we hypothesize that keeping organoids under continuous orbital shaking as per published protocols5 might not be sufficient to ensure a proper supply of nutrients and oxygen. Therefore, to improve the quality of hMOs we investigated the effects of applying a continuous medium flow during culture. In this study we used the “Quasi Vivo” (QV, Kirkstall, UK) millifluidic system rather than a microfluidic device14 for a number of reasons. First, following the concept of allometry, the size of an organoid should range between approximately 0.5 to 2 mm in order to exhibit physiologically scaled metabolism (oxygen consumption).15,16 In addition, millifluidic systems such as the QV allow the application of relatively high flow rates ensuring proper nutrient and oxygen supply without exposing the organoid to a high shear force due to the flow itself. This is due to a well-like design in which the medium inlet and outlet are located in the chamber lid whereas the organoid is placed a variable distance from the medium inlet.17,18 Finally, given their high volume to surface ratio, millifluidic systems do not require frequent media changes, thus organoid manipulation is reduced to a minimum during culture. Besides various applications in 2D cultures, the QV millifluidic system has been successfully used to culture liver organoids13,19 and 3D cardiac constructs20 derived from human (adult) stem cells. In this study, we established a stable midbrain organoid culture under millifluidic conditions and compared it to the state-of-the-art procedure of continuous orbital shaking using both a computational fluid dynamics (CFD) and an experimental approach. The CFD analysis was performed to determine if differences in calculated oxygen profiles in the two experimental set-ups could be used to expla
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