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血液基因组柱式中量提取试剂盒 (1-5 mL),阿拉丁

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  • ¥897.90
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  • 上海
  • B669892
  • 2025年07月11日
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    • 英文名

      Blood Genomic DNA Midi Kit (1-5 mL)

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    • 供应商

      上海阿拉丁生化科技股份有限公司

    • 规格

      B669892-50T

    产品内容

    B669892Component50 TStorage
    B669892ABuffer RCL3×260 mL2-8℃
    B669892BBuffer GR25 mLRT
    B669892CBuffer GL25 mLRT
    B669892DBuffer GW1 (concentrate)13 mLRT
    B669892EBuffer GW2 (concentrate)15 mLRT
    B669892FBuffer GE15 mLRT
    B669892GProteinase K50 mgRT
    B669892HProteinase K Storage Buffer5 mLRT
    B669892ISpin Columns DL with Collection Tubes50 setsRT

    产品简介

    本试剂盒适用于从新鲜或冷冻全血(用柠檬酸盐、EDTA或肝素等抗凝剂处理过的血液样品)、血浆、血清、血沉棕黄层、骨髓、无细胞体液等样本中提取总DNA,包括基因组DNA,线粒体DNA及病毒DNA。本品可以处理1-5    ml的全血,可纯化获得大小为100 bp到50 kb的DNA,纯化的DNA产量高、质量好,最大限度去除蛋白、色素、脂类及其他抑制性杂质,可直接用于PCR、荧光定量PCR、酶切和Southern Blot等实验。

    自备试剂:无水乙醇。

    实验前准备及重要注意事项

    1. 向Proteinase K中加入5ml Proteinase K Storage Buffer使其溶解,-20℃保存。配制好的Proteinase K勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。

    2. 样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。

    3. 本试剂盒最多可以提取1-5ml全血样品,如需提取大量血液样本请选用血液基因组非柱式提取试剂盒。

    4. 第一次使用前应按试剂瓶标签说明先在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。

    5. 使用前请检查Buffer GL是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请置于56℃水浴重新溶解。

    6. 如下游实验对RNA污染较敏感,可加入4μl DNase Free的RNase A(100 mg/ml), RNase A本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购。

    7. 试剂盒中的Buffer RCL浑浊后不能继续使用。

    操作步骤

    1.向离心管(自备)中加入1-5  ml血液样品,加入3倍体积的Buffer  RCL轻轻涡旋或颠倒混匀。

    2.3000 rpm(~900 x g)离心10分钟,小心吸弃上清。

    3.向沉淀中加入400 μl Buffer GR,重悬沉淀。

    注意:如果下游试验对RNA敏感,可加入4 μl RNase A(100 mg/ml)溶液,震荡15秒,室温放置5分钟。

    4.1-2 ml血液样本提取时,向以上溶液中加入40 μl Proteinase K,混匀;2-5ml血液样本提取时,向以上溶液中加入100 μl Proteinase K,混匀。

    5.加入400 μl Buffer GL,颠倒混匀15次,剧烈涡旋震荡至少1分钟。

    注意:不要直接将Proteinase K直接加入到Buffer GL

    6.70℃孵育10分钟,其间颠倒混匀数次。

    注意:1)如溶液未彻底清亮,补加适量Proteinase K,孵育。延长孵育时间至溶液完全清亮为止。

    2)孵育10分钟DNA的产量已经达到最大,继续延长孵育时间对DNA产量和纯度没有影响。

    7. 加入400 μl无水乙醇,颠倒混匀10次。短暂离心,使管壁和管盖上液体集中到管底。

    8. 将上步所得到的溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DL)中, 若一次不能加完溶液,可分多次转入。12,000    rpm(~13,400×g)离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

    9. 向吸附柱中加入500 μl Buffer GW1(使用前检查是否加入无水乙醇),12,000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

    注意:如果提取样品是小鼠或猴子等血红素难以除去的种属的血液基因组,建议重复步骤9。

    10. 向吸附柱中加入500 μl Buffer GW2(使用前检查是否加入无水乙醇),12,000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

    注意:如需进一步提高DNA纯度,可重复步骤10。

    11.12,000 rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。

    注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)

    12.将吸附柱置于一个新的离心管中,向吸附柱中间部位悬空加入50-200 μl Buffer GE 或灭菌水,室温下放置2-5分钟,12,000 rpm离心1分钟,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。

    注意:1)如果下游实验对pH值或EDTA敏感,可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响,若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围),pH值低于7.0时洗脱效率不高。

    2) 离心之前室温孵育5分钟可以增加产量。

    3) 用另外的50-200 μl Buffer GE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。

    4) 如果要提高DNA的终浓度,可以将步骤12所得的DNA洗脱液重新加至吸附膜上,12,000 rpm离心

    1min;若洗脱体积小于200 μl,可以增加DNA的终浓度,但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1 μg,推荐用50 μl Buffer GE或灭菌水洗脱。

    5) 因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响,如需长期保存,推荐用Buffer GE洗脱并于-20℃保存。

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