柱式真菌 RNAOUT
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柱式真菌 RNAOUT

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  • XK-P9551
  • 国产/进口
  • 2025年07月29日
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      20

    • 英文名

      Column Fungal RNAOUT

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      上海晅科生物科技有限公司

    • 保存条件

      2-8℃

    • 规格

      50次

    中文名称:柱式真菌 RNAOUT
    英文名称:Column Fungal RNAOUT 
    产品及特点:本产品是在本公司真菌 RNAout基础上改进的 柱式产品,跟真菌 RNAout 相比,它具有下列特点:
    1. 柱式操作,更加简单快捷,整个过程只需要约 30 分钟。
    2. RNA 纯度高,OD260/280 一般都在 2.0 左右,可直接用于 RT-PCR、 Norther 杂交、microarray hybridization、cDNA 合成等。
    3. RNA 产量高,一般在 20-70 ug/mL 酵母培养物(约 2.0 ×107个细胞)。
    4. 非酶细胞破裂法,适用于各种形态和各个种属的真菌及革兰氏阳性 细菌,包括 Candida albican、Saccharomyces cerevisiaeSchizosaccharomycespombe、Pichiapastoris、Bacillus subtilis、Staphylococcusaureus 等。
    规格及成分:
    成 分 50 次包装
    溶液 A 20 mL
    溶液 B 25 mL
    溶液 C 75 mL
    溶液 D 25 mL
    离心吸附柱 50 套
    通用洗柱液 50 mL
    RNA 洗脱液 10 mL
    使用手册 1 份
    运输及保存:常温运输,4℃保存,有效期一年。
    自备试剂:氯仿。
    使用方法:
    1.将 50 mg 左右的干菌丝(或 100 mg 左右的鲜菌丝、或适当数量的真菌 菌落)转移到 1.5 mL 塑料离心管中。如果是液体真菌培养物,则直接将 1-10 mL 液体真菌在 1.5 mL 塑料离心管中 12000-15000 g 离心 1 分 钟,并弃尽液体培养基(可以分多次离心)。
    2. 加入 0.4 mL 溶液 A 并充分吹打混匀。如果 A 溶液存放时产生沉淀,请 置于 65℃融化,用前充分摇晃均匀。
    3. 加入 0.4 mL 溶液 B,剧烈振荡 30 秒。
    4. 65℃保温 5 分钟。
    5. 室温 12000-15000 g 离心 3-5 分钟,转移上清到一干净的 1.5 mL 塑 料离心管中。
    6. 再加入 0.1 mL 溶液 B 和 0.1 mL 自备氯仿,振荡混匀 30 秒。
    7. 室温12000-15000 g离心3-5分钟,转移上清到一自备的、干净的5 mL 塑料离心管中。
    8.加入相当于上清 3 倍体积的溶液 C(约 1.2-1.5 mL)和 1 倍体积的溶 液 D(约 0.4-0.5 mL),充分混匀。
    9. 将 混合 液(约 2.5mL)分 3-4 次转 移 到 离心 吸 附 柱 中。 每次 13000-15000 g 室温离心半分钟,弃收集管中的穿透液。
    10. 用 0.5 mL 通用洗柱液到离心吸附柱中,室温离心半分钟,弃收集管中 的穿透液。
    11. 一次洗涤一般足够去除杂质。但如果样品 OD260/280 比值不高,可以 再用 0.5 mL 通用洗柱液重复此步一次。
    12. 室温离心半分钟。此步十分重要,否则残留的洗柱液会影响 RNA 的使用。
    13. 将离心吸附柱转移到一自备的 RNase-free 1.5 mL 塑料离心管中,加入 30-100 uL RNA 洗脱液。
    14. 室温离心半分钟,离心管中溶液即为 RNA 样品,可以立即使用或存放于 -80℃待用。
    15. RNA 完整性的电泳检测:如果需要做 Northern 杂交,强烈建议用户使用甲醛变性胶进行 RNA 电 泳,因为非变性胶不能分离所有的 RNA 分子(BioTechniques,28: 414,2000)。如果是简单检测,可以使用 TAE 或 SuperBuffer-2 DNA/RNA 两用快速电泳液,但文献报道必须使用变性 上样液(BioTechniques,9:558,1990)。普通 DNA 上样液不含变性 剂,也没经过去 RNase 处理,所以最好不要使用。 尤其需要注意的是不 要使用 TBE 进行 RNA 电泳,因为 TBE 所含硼酸 是研究多糖的经典方 法----硼酸络合法中的关键成分,硼酸通过与 RNA 核糖中的羟基发生络 合反应,形成 RNA 分子内或 RNA 分子间的络合复 合物,使同样长度的 RNA 具有不同的泳动速度,电泳条带弥散,同时有 大的 RNA 络合复合 物迟留在加样孔中(一般会误以为是基因组 DNA 污 染)。RNA 分子内或 RNA 分子间的络合物的形成的多少和比例又与硼酸 与 RNA 的数量比例 有关,而 RNA 样品中污染的其他多糖也会参与此反 应,使硼酸对 RNA 电泳的影响更复杂,所以 TBE 对 RNA 电泳的影响 没有规律性和重复性。 有的样品可以使用有的又不行,最好是避免使用。
    16. RNA 产量产率测定: 将 5-10 μL RNA 溶于 TE 缓冲液中(pH7.5-8.2 之间)检测其在 OD260 的光吸收。通过光吸收可以得出 RNA 浓度(1 OD260 的 RNA=40μg/mL),进而计算出 RNA 的产量(浓度 X 体积)和产率(RNA 产量/细 菌用量)。注意不要将 RNA 稀释在 DEPC 水中检测 OD260 和 OD280, 否则光吸收比在 TE 中测得的低 10%-15%。
    17. RNA 纯度测定: 无污染的总 RNA 的 OD260/OD280 一般在 1.8-2.1 之间(具体数值与 其碱基组成和溶液成分等多种因素有关),OD260/OD230 一般在 2.0-2.3 之间,如果低于或高于此范围则分别表示样品可能有蛋白质或 多糖的污染,但一般不影响 RT-PCR 等反应。蛋白质污染可以通过酚/ 氯仿抽提一次然后酒精沉淀去除,DNA 和多糖污染可以分别用DNA Erasol 和 PS Erasol 去除。测 OD 时 RNA 不能过度稀释 使 OD 读数低于仪器的有效范围。
     

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