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具体来说,单个细胞悬液中加入一个或多个荧光标记的抗体,抗体通过抗原抗体反应与细胞上的抗原结合。在流式细胞仪中,细胞在鞘液中单个流动,就像红细胞单个通过毛细血管一样通过检测口,仪器发出一个或多个激光束激发标记在细胞上的荧光物质。从荧光物质发出的光被收集、分离、检测,其数据被传输到控制流式细胞仪的计算机供分析。
在临床上,流式细胞术被用于精确检测异常细胞群,如对血液系统肿瘤进行诊断和分型,或在HIV感染时检测CD4+T淋巴细胞。流式细胞术也可用于检测生理过程,例如移植前干细胞计数(CD34阳性细胞计数)或组织相容性测试。
流式为什么能够检测疾病?
在正常细胞分化成熟过程中,不同的抗原会在其表面或内部出现或消失,通过检测这些抗原的存在或缺失,我们能够确定细胞的种类和发育阶段。这些在白细胞表面的抗原,又称为白细胞分化抗原或簇分化抗原 (cluster of differentiation, CD)。疾病情况下,例如白血病时,本来数量很少或本不应该出现的原始细胞,大量出现在骨髓或外周血中,通过检测这些细胞CD分子表达情况,可以准确知道这些细胞的类型,以便进行诊断和治疗。
流式最大的优点就是特异性和敏感性都很好,并且检测起来速度很快。
WHO血液系统肿瘤的分类基于:
形态学(morphology)、
免疫表型(immunophenotype)、
遗传学异常(genetic abnormalities)和
临床特征(clinical features)的。
一些造血系统肿瘤具有特异性的免疫表型,在缺乏免疫表型检测的情况下诊断非常困难。因此怀疑血液系统恶性肿瘤的标本应该通过流式细胞术或免疫组织化学检测免疫表型。与免疫组化检测相比,流式具有更高的灵敏度,主观性更低,也更快速,在几个小时内就能够对白血病进行分型。在评估血液系统疾病是否能够使用单克隆抗体治疗或其治疗效果时,流式也具有明显的优势,因为单抗的靶抗原必须在细胞表面表达,才能治疗有效。
流式的标本要求
液体标本是流式细胞仪的理想标本类型,外周血和骨髓标本是最常见的,使用枸橼酸钠和EDTA抗凝均可,即使用绿头或紫头抗凝管采集流式标本。胸水、腹水、脑脊液也是很常见的标本类型,因为这些标本中细胞数量可能比较少,送检标本量要尽可能的多一些。当然,能够获得单细胞悬液的固体组织也是可以进行检测的。流式检测的是细胞表面的抗原,标本新鲜很重要,最好在24h内送检,室温保存即可。
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文献和实验1. 常用荧光染料的种类特性及检测滤片 面对种类繁多的荧光染料,如何知道这些染料是否适合您所拥有的流式细胞仪,以及这些染料间该如何补偿呢?这需要我们对所用的染料和用于检测的流式细胞仪有清晰的认识。对于多色标记,我们通常需要关注染料的激发波长和发射波长以及探测器前的虑光片参数。其中激发波长决定了目的染料能否在特定配制的流式细胞仪上被激发,发射波长和滤光片参数决定染料的荧光能否在该流式细胞仪上被检测到。一般来说,激发波长在激光器波长附近的染料一般都可以被激发;染料的发射波长落在滤光
色,或核呈分叶状,边集的Hoechst着色的为调亡细胞。我最近在作的试验就是用的这种方法,附上一张我染的PC12细胞的图片,请大家指教。更精确的定量可以通过流式细胞仪来检测。用PI和Hoechst33342双标鉴别调亡、坏死,这种方法简便易行,结果比较可靠。 2、PI和Calcein-Am双标: Calcein-AM 是一种绿色荧光标记物,可显示胞浆,为膜通透性的荧光染料。Calcein-AM 一旦进入胞内,便可被内源性酯酶水解成绿色荧光物质calcein, 并保留在胞浆中。细胞
为1ug/ml,37度水浴10分钟,置冰上冷却,离心弃染液,用PBS重悬,加入PI染液,使其终浓度为5ug/ml,置冰上冷却染色30分钟离心去染液,用PBS洗一次,即可以上流式了. 由于Hoechst很容易穿透胞膜,没有死亡的细胞也能够穿入,因此固定对它穿膜没有影响; 但PI通常只能通过凋亡晚期和死亡的细胞膜,我也不知道固定对PI染色有无影响,反正我做的Hoechst和PI双标我没固定. zdwyzhy:我用的是Hoechst33342,本来我单位的流式是三通道,但只有红、绿和橙色滤光片,双标
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