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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
-20°C
- 保质期:
6个月
- 英文名:
D-lactate Dehydrogenase(D-LDH)Activity Assay Kit
- 库存:
999
- 供应商:
北京索莱宝科技有限公司
- CAS号:
BC5285-100T/48S
- 规格:
100T/48S
D-乳酸脱氢酶(D-LDH)活性检测试剂盒说明书
微量法
货号:BC5285
规格:100T/48S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
| 试剂名称 |
规格 |
保存条件 |
| 提取液 |
液体60 mL×1瓶 |
2-8℃保存 |
| 试剂一 |
液体7 mL×1瓶 |
2-8℃保存 |
| 试剂二 |
粉剂×1支 |
-20℃保存 |
| 试剂三 |
液体7 mL×1瓶 |
2-8℃保存 |
| 试剂四 |
液体20 mL×1瓶 |
2-8℃保存 |
| 标准品 |
液体1 mL×1支 |
2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂二:临用前加入0.8 mL蒸馏水,充分溶解。用不完的试剂分装保存,-20℃可保存4周,避免反复冻融;
2、 标准品:20 μmol/mL 酸钠溶液。
产品说明:
乳酸脱氢酶(Lactate dehydrogenase,LDH)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是糖酵解途径的末端酶,催化丙 酮酸与乳,苯 肼,酸之间的可逆反应,伴随着NAD+/NADH之间互变。根据其催化底物-乳酸构型的不同,可分为D-乳酸脱氢酶(D-LDH,EC 1.1.1.28)与L-乳酸脱氢酶(L-LDH,EC 1.1.1.27)。
D-LDH催化NAD+氧化D-乳酸生成酸,酸进一步与2,4-二硝 基苯 肼作用生成酸二硝基 苯腙,在碱性溶液中显棕红色,颜色深浅与酸浓度成正比。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计/酶标仪、水浴锅/恒温培养箱、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
3. 血清(浆)等其他液体:直接检测。若有沉淀请离心后取上清待测。
二、测定步骤
1、 可见分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至450nm,分光光度计蒸馏水调零。
2、 标准溶液的稀释:将20μmol/mL酸钠标准溶液用蒸馏水进行稀释得到2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125、0.015625、0.0078125μmol/mL标准溶液备用。
3、 标准溶液稀释可参考下表:
| 序号 |
稀释前浓度(μmol/mL) |
标准溶液体积(µL) |
蒸馏水体积(µL) |
稀释后浓度(μmol/mL) |
| 1 |
20 |
100 |
900 |
2 |
| 2 |
2 |
100 |
100 |
1 |
| 3 |
1 |
100 |
100 |
0.5 |
| 4 |
0.5 |
100 |
100 |
0.25 |
| 5 |
0.25 |
100 |
100 |
0.125 |
| 6 |
0.125 |
100 |
100 |
0.0625 |
| 7 |
0.0625 |
100 |
100 |
0.03125 |
| 8 |
0.03125 |
100 |
100 |
0.015625 |
| 9 |
0.015625 |
100 |
100 |
0.0078125 |
备注:实验中每个标准管需10µL标准溶液。
4、 在1.5mLEP管/96孔板按下表步骤加样
| 试剂名称(μL) |
测定管 |
对照管 |
标准管 |
空白管 |
| 待测样本 |
10 |
10 |
- |
- |
| 标准液 |
- |
- |
10 |
- |
| 试剂一 |
50 |
50 |
50 |
50 |
| 试剂二 |
10 |
- |
- |
- |
| 蒸馏水 |
- |
10 |
10 |
20 |
| 充分混匀,37℃水浴15min |
||||
| 试剂三 |
50 |
50 |
50 |
50 |
| 充分混匀,37℃水浴15min |
||||
| 试剂四 |
150 |
150 |
150 |
150 |
充分混匀,室温静置3min,取200μL转移至微量玻璃比色皿或96孔板中,450nm下测定吸光度,计算ΔA测定=A测定-A对照,ΔA标准=A标准-A空白。空白管和标准曲线只需做1-2次,每个测定管需要设一个对照管。
三、D-LDH活性计算
1. 标准曲线的绘制
根据标准管的浓度(x,μmol/mL)和吸光度ΔA标准(y,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA测定(y,ΔA测定)带入公式计算样本浓度(x,μmol/mL)。
2. D-LDH活性计算
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/mg prot)= x×V样÷(Cpr×V样)÷T×103×F=66.67×x÷Cpr×F
(2) 按样本质量计算
单位的定义:每g组织每分钟催化产生1nmol酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/g 质量)= x×V样÷(W÷V样总×V样)÷T×103×F=66.67×x÷W×F
(3) 按细菌/细胞数量计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol酸定义为一个酶活力单位。
(4) D-LDH活性(U/104 cell)= x×V样÷(N÷V样总×V样)÷T×103×F=66.67×x×F÷N
(5) 按血清(浆)等液体体积计算
单位的定义:每mL血清(浆)等液体每分钟催化产生1nmol酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/mL)=x×V样÷V样÷T×103×F=66.67×x×F
V样:反应体系中加入的样本体积,0.01mL;V样总:加入的提取液体积,1mL;T:反应时间,15min;Cpr:蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;N:细胞或细菌数量,以万计;103:单位换算系数,1μmol/mL=103nmol/mL;F:样本稀释倍数。
注意事项:
1. 如果测定管吸光值接近空白或ΔA测定过低,可适当加大样本量后重新测定;如果测定管吸光值超过1.5或ΔA测定超过0.4,建议将样本用提取液适当稀释后进行测定。注意同步修改计算公式。
实验实例:
1、 取0.109g兔肾加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用96孔板测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.425-0.298=0.127,带入标准曲线y=0.5379x+0.0087,计算x=0.220,按样本质量计算酶活得:
D-LDH活性(U/g 质量)=66.67×x÷W×F =134.520 U/g 质量
2、 取0.1018g拟南芥加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用96孔板测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.236-0.196=0.04,带入标准曲线y=0.5379x+0.0087,计算x=0.058,按样本质量计算酶活得:
D-LDH活性(U/g 质量)=66.67×x÷W×F =38.109 U/g 质量
3、 取500万细胞加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用96孔板测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.225-0.174=0.051,带入标准曲线y=0.5379x+0.0087,计算x=0.079,按细菌/细胞数目计算酶活得:
D-LDH活性(U/104 cell)=0.133×x×F =0.010 U/104 cell
4、 取10μL胎牛血清,按照测定步骤操作,用96孔板测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.322-0.201=0.121,带入标准曲线y=0.5379x+0.0087,计算x=0.209,按液体体积计算酶活得:
D-LDH活性(U/mL)=66.67×x×F =13.919 U/mL
参考文献:
[1] Huang P H, Fu L C, Huang C S, et al. The uptake of oligogalacturonide and its effect on growth inhibition, lactate dehydrogenase activity and galactin-3 release of human cancer cells[J]. Food chemistry, 2012, 132(4): 1987-1995.
[2] Huang Y N, Xu G T, You C P. The research progress of the lactate dehydrogenases in lactic acid bacteria[J]. Science and Technology of Food Industry, 2016, (08): 369-373.
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文献和实验|
AuthorSun Pingping, Wang Zhan, Li Sixiao, Yin Jiajing, Gan Yuyang, Liu Shizhao, Lin Zhen, Wang Hailin, Fan Zhexiang, Qu Qian, Hu Zhiqi, Li Kaitao, Miao Yong
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Publish_toCell and Bioscience
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IF7.5000
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PMID38183147
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