巴氏吸管，1ml，独立包装，无菌

小鼠脾脏树突细胞的分离－塑料黏附和EA玫瑰花结富集DC

；如Boehringer Mannheim） 8. Beckman GH-3.7和Sorvall HS-4转子 9. 15ml和50ml聚丙烯锥底管 10. 填充棉花和未充填棉花的高压灭菌的9in（约23cm）巴氏吸管，直径60mm的组织培养皿（如Falcon） 实验方法： 1. 将胶原酶消化的脾脏细胞悬液于4℃，280g离心10min，弃上清。用高密度BSA迅速重悬沉淀物，每个脾脏约1ml。 2. 准备

DNA的限制性内切酶 酶切实验

，都要用新的，用双蒸馏水洗净，灭菌。使用前打开包装，用镊子夹取，不要直接用手去拿，以防手上的杂酶污染。 2.DNA样品和限制性内切酶的用量都极少，必须严格注意吸样量的准确性及全部放入反应体系中。 3.要注意酶切加样的次序，一般次序为双蒸馏无菌水、缓冲液、DNA各项试剂，最后才加酶。 4.取酶时，吸头要从酶液的表面吸取，以防止吸头沾上过多的酶液。待用的酶要放在冰浴内，用后盖紧盖子，立即放回-20℃冰箱中，防止酶失活。 5.当样品在37℃保温时

细胞培养注意事项（入门级）

/管胰酶、抗生素可分装为1mL/管。分装最好先于细胞操作第五，操作之前，培养液先放到37度的细胞培养箱里复温。原因：尽量减少对细胞的刺激。低温对于细胞也是一个刺激因素。第六，操作之前，大脑先过一遍此次操作所需要用到的所有用具。将所有用具先放到无菌台面上。减少拿入拿出的动作，保证无菌。（如果万一发现少拿了什么，也不要紧，再加上就是。如果是枪头盒、移液管等用具，最好先用消毒酒精喷一下）。第七，操作之前，带着的手套先喷消毒酒精。然后再进入工作台。等一分钟，等手套上的酒精挥发之后再进行操作。6、 细胞