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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名:
/
- 库存:
现货库存
- 供应商:
南京万木春
- 肿瘤类型:
/
- 细胞类型:
原代细胞
- 品系:
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- 组织来源:
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- 相关疾病:
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- 物种来源:
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- 免疫类型:
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- 细胞形态:
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- 是否是肿瘤细胞:
否
- 器官来源:
/
- 运输方式:
常温/干冰
- 年限:
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- 生长状态:
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- 规格:
5×10^5/T25方瓶
| 种属 | 大鼠 |
| 组织来源 | 正常脑组织 |
| 传代比例 | 1:2传代 |
| 完全培养基配置 | 基础培养基500ml ;生长添加剂5ml ;胎牛血清2.5ml ;双抗5ml |
| 简介 | 少突胶质细胞是中枢神经系统中胶质细胞的重要组成部分 ,其主要功能是包绕神经元的轴突形成髓鞘 ,协助神经电型 号的跳跃式高效传递 ,维持和保护神经元的正常功能。此外 ,少突胶质细胞还具有合成和分泌多种细胞因子来促进神 经元、神经胶质细胞的发育和存活等功能。 |
| 形态 | 圆形或椭圆形细胞样 |
| 生长特征 | 贴壁生长 |
| 细胞检测 | MBP免疫荧光染色为阳性免疫荧光鉴定 ,细胞纯度可达90%以上 ,不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵 母和真菌等。 |
| 倍增时间 | 每周 2 至 3 次 |
| 换液频率 | 2-3天换液一次 |
| 培养条件 | 气相 :空气 ,95% ;二氧化碳 ,5%。 温度 :37摄氏度 ,培养箱湿度为70%-80%。 |
| 冻存条件 | 冻存液 :90%FBS ,DMSO 10%, 或使用非程序冻存液 :官网货号JY-H040 |
| 产品使用 | 仅限于科学研究 ,不可作为动物或人类疾病的治疗产品使用。 |
Galectin-3, CXCL- 16, NIHSS score and low density lipoprotein cholesterol (LDL-C) in the poor prognosis group increased, and the middle carotid thickness≥1.2 mm increased (P<0.05). Serum CXCL- 16, Galectin-3, NIHSS score, elevated LDL-C level and carotid middle layer thickness≥1.2 mm were risk fac⁃ tors for poor prognosis in patients with ACI (P<0.05).The area under the curve (AUC) of serum CXCL-16 and Galectin- 3 levels in predicting the poor
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文献和实验Galectin-3, CXCL- 16, NIHSS score and low density lipoprotein cholesterol (LDL-C) in the poor prognosis group increased, and the middle carotid thickness≥1.2 mm increased (P<0.05). Serum CXCL- 16, Galectin-3, NIHSS score, elevated LDL-C level and carotid middle layer thickness≥1.2 mm were risk fac⁃ tors for poor prognosis in patients with ACI (P<0.05).The area under the curve (AUC) of serum CXCL-16 and Galectin- 3 levels in predicting the poor
少突胶质细胞来源于1-2 天的大鼠。断头后大鼠大脑收集到Ham’s F-12培养液中,移除脑膜和血管。皮质用机械匀浆进行匀浆然后将细胞悬液依次通过230μm和104μm尼龙网进行过滤。细胞通过1000rpm 7分钟离心进行收集,用添加12.5%胎牛血清的DMEM进行重悬细胞。最后以2.0×105 cells/cm2浓度将细胞接种于培养皿中,将培养皿维持在37°C,5%CO2潮湿环境中。3天后更换培养基,以后每两天更换一次。9-11天后细胞能够铺满培养皿。少突胶质细胞祖代生长在星形
所示即为大鼠原代足细胞。按顺序:图1,2是培养7天传代前的图片,小球周围爬出很多细胞。图3,4是传代第二天细胞情况,过筛后仍有小的组织滤过。图5是传代7天足细胞完全分化图片。 由于本人实验刚有进展,好多图片制作不理想,后续的细胞免疫荧光坚持在做,失败过两次,出结果后再发,不过导师说了就是足细胞! 图1 图2 图3 图4 图5
的[5],但细胞得率均较低,而近些年来国外大多数方法采用以大脑皮质为材料、酶消化及梯度离心分离脑微血管段并进行原代培养[6~9,11,12]。由于原代培养中无法避免地混杂成纤维细胞、周细胞、平滑肌细胞、星型胶质细胞等其他细胞的生长,而且工作量大、过程繁琐且费用高[1],进行较纯的大鼠脑微血管内皮细胞原代培养一直是国内外的一个难点。 本人参照文献[6]、[7]、[8]的方法,成功地摸索出大鼠脑微血管内皮细胞分离和原代培养的方法,并获得纯度较高的脑微血管内皮细胞。 1.材料与方法 1.1 实验动物 每次
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