- ￥450
- Genesand/金沙
- DE712-50
- 北京
- 2025年07月16日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存：
充足
- 英文名：
FlaPure Animal Tissue/Cell /Blood DNA Extraction Kit
- 保质期：
12个月
- 供应商：
北京金沙生物科技有限公司
- 保存条件：
常温
- 规格：
50 次
FlaPure Animal Tissue/Cell /Blood DNA Extraction Kit
高效动物组织/细胞/血液基因组 DNA 提取试剂盒
目录号
DE712-50
产品组成
| 组分 | 规格（50 次） |
| Buffer GA1 | 15 mL |
| Buffer GA2 | 15 mL |
| Buffer GW1 | 13 mL |
| Buffer GW2 | 15 mL |
| Buffer TE | 15 mL |
| Proteinase K（20 mg/mL） | 1.0 mL |
| FlaPure DNA Columns | 50 个 |
| Collection Tubes（2.0 mL） | 50 个 |
保存条件
常温（10~25℃）保存 12 个月，其中 Proteinase K 保存条件 -20℃。
产品简介
本试剂盒可从≤25 mg 新鲜或冷冻的动物组织（比如鼠尾、鼠趾、肝脏等）、血液、细胞中快速提取基因组 DNA。 试剂盒采用优化的缓冲体系，使裂解液中的DNA高效特异地结合到硅基质吸附柱上。提取过程无需使用苯酚或氯仿等有毒溶剂，得到的 DNA 浓度和纯度高，可直接用于酶切、PCR、文库构建、Southern Blot、分子标记等下游实验。
产品特点
⚫ DNA质量高：提取的DNA浓度和纯度较高，适用于对浓度、纯度和完整性要求较高的下游实验；
⚫ 安全低毒：无需酚、氯仿等有毒试剂。
适用范围
本品适用于冷冻或新鲜动物组织样本、新鲜血液、细胞样本的基因组DNA提取。
注意事项
- 第一次使用前，按瓶上标签要求在Buffer GW1和Buffer GW2 中加入相应体积的无水乙醇；
- 使用前请检查Buffer GA1和Buffer GA2 是否出现沉淀，如有请于37˚C水浴溶解后使用；
- 若下游实验受RNA影响较大，可在步骤 2 结束后按照要求加入 RNase A（目录号：GP708）；
- 为保证基因组DNA得率及完整性，样品请勿反复冻融；
- 所有离心操作均在室温下进行。
使用方法
- 样本处理
- 血液及细胞样本：
- 哺乳动物抗凝血液（无核红细胞）：直接向 50~200 μL 新鲜或冷冻的抗凝血液样品中加入 Buffer GA1 补足至 200 μL；
- 禽类，鸟类，两栖类或更低级生物的抗凝血液：其红细胞为有核细胞，取 5~20 μL 新鲜或冷冻的抗凝血液样品，加入 Buffer GA1 补足至 200 μL；
- 贴壁培养的细胞：应先处理为细胞悬液（最大提取量为 5×106 个细胞），10,000 rpm（~11,200×g）离心 1 min，弃尽上清，加 200 μL Buffer GA1，振荡至样品彻底悬浮；
- 加入 20 μL Proteinase K 溶液，混匀后加入 200 μL Buffer GA2，涡旋振荡充分混匀，70˚C 水浴 10 min；
- 短暂离心以去除管盖内壁的水珠。加入 200 μL 无水乙醇，涡旋振荡充分混匀，短暂离心，进入步骤 4 过柱纯化；
- 动物组织样本：
- 样本处理：正确的组织取样量是获得理想产量和纯度的关键。初次使用时，推荐动物组织量为10~15 mg， 根据实验过程及结果再调整用量。样品可用液氮研磨，或机械/玻璃匀浆器等工具进行匀浆。
| 组织类型 | 推荐用量 |
| 普通动物组织 | ≤25 mg |
| 肝、脾、肾等内脏组织 | ≤10 mg |
| 鼠尾 | 一段 0.4~0.6 cm 大鼠鼠尾/ 两段 0.4~0.6 cm 小鼠鼠尾 |
- 针对普通动物组织、内脏组织等易于研磨的样本：
匀浆器匀浆：匀浆前向样本中加入≤80 μL Buffer GA1 进行匀浆，匀浆后再加入120 μL Buffer GA1；
- 针对鼠尾等含较硬组织的样本（过夜消化 6~8 h）：将组织样品直接置于 1.5 mL 离心管中，加入 200 μL Buffer GA1；
- 加入 20 μL Proteinase K (20 mg/mL)，涡旋振荡彻底混匀。普通动物组织 56˚C 水浴充分裂解 1~3 h（鼠尾等较硬样本需过夜消化 6~8 h），期间可数次颠倒或振荡使样品分散。如需去除 RNA，可在此步骤完成后，加 入 4 μL 浓度为 100 mg/mL 的 RNase A 溶液（目录号：GP708），涡旋振荡 15 s，室温放置 5~10 min；
- 加入 200 μL Buffer GA2，涡旋振荡充分混匀，70˚C 水浴 10 min。短暂离心后加入 200 μL 无水乙醇， 立即涡旋振荡充分混匀（此步骤可能会产生白色沉淀，不影响后续实验，某些组织如脾、肺，可能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈振荡或涡旋处理），进入步骤 4 过柱纯化；
- 短暂离心，将步骤 3 所得溶液和絮状沉淀全部加入吸附柱中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中，若一次不能加完溶液，可分多次转入；
- 向吸附柱中加入500 μL Buffer GW1（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中；
- 向吸附柱中加入600 μL Buffer GW2（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 30 s，倒掉收集管中废液，将吸附柱重新放回收集管中；
- 重复步骤 6 ；
- 12,000 rpm（~13,400×g）离心 2 min，开盖室温晾干数分钟；
- 将吸附柱置于新的离心管（自备）中， 向吸附膜中间部位悬空滴加 50~200 μL Buffer TE 或ddH2O，室温放置 2~5 min，12,000 rpm（~13,400 ×g）离心 2 min，收集 DNA 溶液，-20℃ 保存 DNA。
- 若需增加产量，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置 2~5 min ， 12,000 rpm（~13,400×g）离心 2 min；
- 如果下游实验对 pH 值或 EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的 pH 值对洗脱效率有较大影响， 若用水作洗脱液应保证其 pH 值在 7.0~8.5（可以用 NaOH 将水的 pH 值调到此范围），如需长期保存，推荐用 Buffer TE 洗脱并于 -20°C 保存。
常见问题与解决办法
Q1：柱子堵塞？
A1：
1) 样品用量过多。建议按照说明书推荐量进行提取，尤其是富含 DNA 的组织需注意减少用量；
2) 样品未充分裂解或研磨。充分裂解或研磨样品，鼠尾组织建议过夜消化；
3) 离心温度过低。本产品使用操作均在室温下进行。
Q2：DNA 得率低？
A2：
- 样品裂解不充分。若样品过量则适当减少样品量，延长56˚C孵育时间，或在步骤 2 中再加入 20 μL Proteinase K（20 mg/mL）消化；
- 样品用量过少。建议按照说明书推荐量进行提取；
- 样品材料质量不好。尽量选用新鲜组织样品，样品采集后应液氮速冻，然后置于-80℃保存，建议尽快提取，避免反复冻融。
Q3：后期实验受 RNA 影响？
A3：
- 未加入 RNase A 消化。若后续实验需要去除 RNA 影响， 可按照说明书步骤加入 RNase A 消化；
- 样品中RNA含量过多。可适当增加 RNase A 用量或延长消化时间。
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