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- 服务名称:
肝门静脉插管(PVC)
- 提供商:
维通利华
- 规格:
大鼠
导管插管模型
| 服务项目 | 动物 | 价格 | 模型简介 |
| JVC(颈静脉插管) | 大鼠 | 352 | 用于常规较短时间的给药和采血等实验 |
| JVC(颈静脉插管) | 小鼠 | 435 | |
| CAC(颈动脉插管) | 大鼠 | 368 | |
| JVC+CAC(颈静脉+颈动脉联合插管模型) | 大鼠 | 605 | |
| FVC(股静脉插管) | 大鼠 | 380 | 用于常规较长时间的给药和采血等实验 |
| FAC(股动脉插管) | 大鼠 | 484 | |
| CAC+FVC(颈动脉+股静脉联合插管) | 大鼠 | 605 | |
| FVC+FAC(股静脉+股动脉联合插管) | 大鼠 | 693 | |
| PVC(肝门静脉插管) | 大鼠 | 649 | 用于测量药物的首过消除效应等实验 |
| JVC合并十二指肠插管 | 大鼠 | 693 | 用于颈静脉采血及十二指肠给药操作 |
| 脑池插管模型 | 大鼠 | 918 | 用于连续采集脑脊液 |
| 第三脑室插管 | 大鼠 | 918 | 用于多次向侧脑室及第三脑室注射药物 |
| BDC(胆管插管) | 大鼠 | 693 | 用于收集胆汁等实验,需额外配备采集装置 |
| SDC(胃及各肠道部位部位插管) | 大鼠 | 560 | 用于消化系统不同部分精准给药操作 |
| UBC(膀胱插管) | 大鼠 | 602 | 用于尿液采集或者膀胱内压测定 |
备注:
1.体重根据客户需求定制。
2.报价仅为手术模型制作费,不含动物费(具体品系根据客户需求确定)、包装费及运输费。
3.饲养周期不开腹腔的术后恢复48-72h,开腹腔的手术模型恢复72-120h。
4.其他联合插管模型请详询。
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文献和实验以下是我最近在分离枯否细胞时得出的一点个人经验,仅供大家交流: 1,严格的无菌原则 2,充分的麻醉效果 3,开腹前腹腔注射肝素形成全身肝素化 4,插管前先将前灌流液及IV型胶原酶预热37度 5,先分离门静脉,肝动脉及下腔V,结扎肝A,在门静脉下穿两根线 6,门静脉插管双重结扎,以防分离肝脏时硅胶管脱落 7,插管成功后,剪断下腔静脉放血,肝脏在体灌注前灌流液20ML/MIN,20MIN 8,肝脏变白后,小心将肝脏游离出腹腔,置无菌瓶皿中,改用IV
一、 实验材料: 6-8周龄大小鼠;剪刀,镊子,灌流用针头,连接管,玻璃平皿,细胞筛,冰盒 二、实验方法: 1. 培养用液 洗涤培养基:DMEM 基础培养基:DMEM/F12 2. 消化用液 前灌流液T1 ;后灌流液T2 3. 培养基本操作方法 a. 将小/大鼠进行麻醉,待其进入深度麻醉状态后迅速将其固定于解剖板上,于超净台中解剖,暴露肝脏; b. 沿肝门静脉插管固定,灌流前灌流液T1(37℃下预热),流速5ml
1 大鼠肝细胞的分离和培养 大鼠4%戊巴比妥麻醉,门静脉插管,先以无钙灌流液灌流,继以37℃通入O2的Ⅳ型胶原酶灌流液继续循环灌流15 min。将肝脏移至一平皿内,轻轻撕去肝包膜后,加入含5%小牛血清的清洗液,用吸管吹打成单个肝细胞悬液,200目尼龙网过滤,低速离心(500 r・min-1,1 min,4℃)弃上清,同法用清洗液反复洗3次。然后用完全1640培养液(内含10%小牛血清,105 U・L-1青霉素,100 mg・L-1链霉素和10 mg・L-1胰岛素)制成1×109个・L-
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