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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名:
Human Bronchial Epithelioid Cells
- 库存:
999
- 供应商:
武汉赛奥斯生物科技有限公司
- 物种来源:
人
- 细胞形态:
上皮细胞样
- 运输方式:
常温/干冰
- 生长状态:
贴壁生长
- 规格:
1×10⁶cells
一.细胞介绍
从一位非癌个体的正常人支气管上皮病理切片分离出上皮细胞。这些细胞用腺病毒12-SV40病毒杂交病毒感染并克隆。 BEAS-2B细胞保留了对血清反应进行鳞关分化的能力,并有用于筛选诱导或影响分化及致癌的化学或生物制剂。细胞角蛋白及SV40抗原染色阳性。
二.细胞特性
(1)来源:人支气管
(2)形态:上皮细胞样 贴壁生长
(3)含量:>1x10⁶cells
(4)规格:T25瓶或者1mL冻存管包装
(5)用途:仅供科研使用。
三.培养基及培养冻存条件准备
(1)准备DMEM培养基;优质胎牛血清,10%;双抗1%。
(2)培养条件:气相:空气,95%;二氧化碳,5%。温度:37℃,培养箱湿度为70%-80%。
(3)冻存液:90%血清,10%DMSO,现用现配。
四.运输和保存
(1)冻存细胞:1mL冻存管包装干冰运输,收到后-80度冰箱保存过夜后转入液氮或直接复苏,若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染,请立即与我们联系。
(2)复苏好的活细胞:T25瓶复苏的存活细胞常温发货,收到后按照细胞接收后的处理方法操作。
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细胞接收后的处理:
(1)收到细胞后,75%酒精消毒瓶壁将T25瓶置于37℃培养箱放置约2-3h,若发现培养瓶破损、有液溢出及细胞有污染,请拍照后及时联系我们。
(2)请在4或5x显微镜下确认细胞状态,同时给刚收到的细胞拍照(10×,20×)各2-3张以及培养瓶外观照片一张留存,作为售后时收到时细胞状态的依据。
(3)贴壁细胞:细胞在37℃培养箱中放置2-3h,显微镜下观察细胞的生长和贴壁情况,有些贴壁细胞在快递运送过程中会因振动脱落和脱落后成团的情况。若镜下观察细胞的生长密度若在60%以下,可去除培养瓶中灌液培养基(若有未贴壁的细胞需要离心回收,重悬打入到原培养瓶中),加入新配制的完全培养基6-8mL,放到细胞培养箱中继续培养。若细胞生长密度达70%-80%以上,可以对细胞进行传代处理。传代过程中,若因运输振动脱落的细胞需要离心回收。
(4)注意:运输用的培养基(灌液培养基)不能再用来培养细胞,请换用按照说明书细胞培养条件新配制的完全培养基来培养细胞。收到细胞后第一次传代建议T25培养瓶1:2传代。
细胞处理:
(1)冻存细胞的复苏:将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻,加入到含4-6mL完全培养基的离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心3-5min,弃去上清液,完全培养基重悬细胞。然后将细胞悬液加入含6-8mL完全培养基的培养瓶(或皿)中37℃培养过夜。第二天显微镜下观察细胞生长情况和细胞密度。
(2)细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。
对于贴壁细胞传代可以参考以下方法:
1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。
2.加入0.25%(w/v)胰蛋白酶-0.53mM EDTA于培养瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置于37℃培养箱中消化1-2分钟(难消化的细胞可以适当延长消化时间),然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加入3-4mL含10%FBS的培养基来终止消化。
3.轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心3-5min,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。将细胞悬液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8mL按照说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力,后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。
(3)细胞冻存:收到细胞后建议在培养前3代时冻存一批细胞种子以备后续实验使用。
下面以T25瓶为例:
(1)细胞冻存时按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中,可使用血球计数板计数,来决定细胞的冻存密度。一般细胞的推荐冻存密度为1×10⁶~1×10⁷个活细胞/mL。
(2)1000rpm离心3-5min,去掉上清。用配制好的细胞冻存液重悬细胞,按每1mL冻存液含1×10⁶~1×10⁷个活细胞/mL分配到一个冻存管中将细胞分配到冻存管中,标注好名称、代数、日期等信息。
(3)将要冻存的细胞置于程序降温盒中,-80℃冰箱中过夜,之后转入液氮容器中储存,同时记录好冻存管在液氮容器中的位置以便后续查阅和使用。
| CL-020m | NCTC clone929 小鼠成纤维细胞 |
| CL-021m | B16 小鼠黑色素瘤细胞 |
| CL-022m | B16-F10/B16F10 小鼠黑色素瘤细胞 |
| CL-023m | PT-67/PT67 小鼠逆转录病毒包装株 |
| CL-024m | RGC-5 小鼠视网膜神经节细胞 |
| CL-027m | P388 小鼠白血病细胞 |
| CL-028m | J774A.1 小鼠单核巨噬细胞 |
| CL-029m | RAW264.7 小鼠单核巨噬细胞白血病细胞 |
| CL-030m | OP9 小鼠骨髓基质细胞 |
| CL-031m | Sp2/O 小鼠骨髓瘤细胞 |
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文献和实验Reddel R.R., Ke Y., Gerwin B.I., McMenamin M.G., Lechner J.F., Su R.T., Brash D.E., Park J.-B., Rhim J.S., Harris C.C.
Transformation of human bronchial epithelial cells by infection with SV40 or adenovirus-12 SV40 hybrid virus, or transfection via strontium phosphate coprecipitation with a plasmid containing SV40 early region genes.
Cancer Res. 48:1904-1909(1988)
实验材料: 1. 手术切除的含支气管的正常肺组织 2. 胰蛋白酶/EDTA液:0.05%胰蛋白酶,0.5mmol/L EDTA 3. 6孔培养板:用多聚赖氨酸包被 4. 不含Ca2+ 和Mg2+的1×PBS(pH=7.2),添加200000IU/L青霉素、200mg/L链霉素和200000U/L庆大霉素,pH7.4 5. 手术刀、解剖剪、解剖镊、眼科剪,眼科镊 6. 离心管(15ml、50ml) 实验方法: 1. 将分离的两片肺叶组织用含双抗的1×PBS
冲洗,以除去血液和粘液。 2. 将气管或支气管的一端结扎,另一端插套管并固定。用注射器经套管注入1%中性蛋白酶,至气管充盈为止。将气管浸泡于PBS中,在37℃条件下消化20min。 3. 用注射器抽取培养液,将注射器插入套管,反复冲洗,以分离气管上皮细胞。然后,将气管或支气管游离端的结扎线剪断,回收管腔内的细胞悬液。 4. 用200目不锈钢网筛过滤,将滤液离心(1000r/min,10min)。弃上清液后,再用培养液洗涤离心1次。 5. 用培养液悬浮沉淀细胞,调整细胞
利用 Millicell 培养小室培养皮肤及肺类器官的实验方案
http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-2013-6_7 5.Wilson J. 1992. Epithelial-specific gene expression during differentiation of stratified primary human keratinocyte cultures. Cell Growth Differ. 3(8):471-483. 2.气液界面 (ALI) 3D 培养人支气管上皮细胞 气液界面 (ALI)3D








