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- CELLiGENT
- CG0301-10
- 新西兰
- 2026年04月22日
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CELLIGENT
- 细胞形态：
正常
- 年限：
5年
- 生长状态：
正常
CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶套装
Catalog No. CG0301-2、CG0301-4、CG0301-10
Specification 2ml-kit 、 4ml-kit 、 10ml-kit
一、产品描述
CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶套装包含整套基质胶、胶体固定液、胶体溶解液，可应用到 3D 细胞培养与微环境应用等；本试剂盒操作便利且可调控基质胶硬度进行多种细胞培养测试；植物胶体可快速形成水凝胶， 请操作前详细阅读此使用指南。
（CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶材料为植物来源，无动物成分）
二、应用
- 3D 类器官培养。
- 3D 细胞球体培养试验
- 细胞侵袭
- 细胞迁移
- 小鼠皮下成瘤
- 适合用于 3D 细胞药物筛检平台
- 细胞生长和分化
- 代谢/毒理学研究
- 体外和体内血管生成分析
- 原代细胞 • 干细胞
| CG0301-2、CG0301-4、CG0301-10 （对应数量和内容） |
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| 货号. | Components | Amount | Content | Storage |
| CG0301-A | A 基质胶 (2X) | 4、8、20 | 0.5mL / tube | Store at-20℃ |
| CG0301-C | C 缓冲溶液 (10X) | 1、2、1 | 1*10ml、2*10ml、1*50 mL / BT | Store at 4℃ |
| CG0301-D | D 缓冲溶液 (10X) | 1、2、1 | 1*10ml、2*10ml、1*50 mL / BT | Store at 4℃ |
A、试剂制备
A 基质胶：将A 基质胶溶于 37℃水浴槽回温 10 分钟， 确认完全融解.
C 缓冲溶液(1X)制备：使用前将 10X C 缓冲溶液用冰的无细胞培养液(例如： 无血清 DMEM、opt-MEM) 制备成 1X C 缓冲溶液。(不要用 PBS 稀释 C 缓冲液) .
D 缓冲溶液(1X)制备: 使用前用冷的 1x PBS 稀释 10X D 缓冲溶液至 1X D 缓冲溶液.
B、CELLiGENT® 3D 类器官培养基质胶的制备
全部步骤需要在无菌环境内操作，操作步骤如下：
1.将 24 孔培养板放置于冰上预冷。
2.细胞计数后取 2×105~2×107 细胞与 0.5 毫升 37℃ 培养基均匀混合，并与 0.5 毫升 37℃ A 胶按照
1:1 等比例均匀混合，最终细胞密度 1*105~1*107cells/mL。
注：请选择适当的培养溶液与条件进行试验。
3.取 20-40 微升步骤 2 含细胞的混合 A 胶溶液滴于 步骤 1 预冷的培养板上，胶体将于 5 分钟内成胶。注: 测试胶体是否成胶，可用微量吸管尖温和的触碰胶体表面进行确认。
4.待胶体成胶后，添加 1 毫升冰的 1X C 缓冲溶液，并盖过步骤 3 的胶溶液，固定 15 分钟。
5.待 15 分钟固定后，小心的吸取 C 缓冲溶液并置换为适合此细胞生长之培养基溶液。
6.将含有细胞的胶于 37°C 二氧化碳培养箱内进行 7~14 天的培养，并观察细胞球体的形成，按正常培养基更换频率进行更换操作。
C、溶胶与收集细胞球体准备程序
小心的将培养基吸取移除，并用 1X PBS 进行清洗。
小心的将 1X PBS 吸取移除，并添加 1 毫升冰的 D 缓冲溶液，盖过胶滴于室温反应 5 分钟。温和的用 1 毫升移液管吸取，直到胶滴完全溶解。
将含有细胞球体的溶液吸入 1.5 毫升离心管，用 1000 rpm 的转速离心 10 分钟，移除上清液体并收集细胞球体做分析。
D、收集单颗细胞准备程序
在分离单细胞前，先按上述溶胶与收集细胞球体准备程序进行操作
1.添加 trypsin-EDTA 并与收集的细胞球体于 37°C 混合反应。
2.用 1 毫升移液管混合，直到细胞体完全分解。
3.待细胞球体完全分解，加入 3 倍体积的 1X PBS，并用 1000 转的转速进行离心 10 分钟，并移除上清液体收集沉淀的单细胞做分析。
E、细胞迁移实验准备程序
1.准备 Transwell 装置及无血清 DMEM 细胞培养液 (用于稀释A 胶)。
2.A 胶 (2X) (货号:CG0301-A) 置于 37 ℃水浴槽回温 10 分钟，确认完全融解。
3.用无血清 DMEM 细胞培养液将A 胶 (2X)稀释 50 倍。
4.根据 Transwell 上室底部面积加入 100-120 ul/cm2 稀释后的 A 胶稀释液到 Transwell 上室中。
5.将步骤 4 在 4 ℃冰箱孵育 30 分钟。
6.将多余的稀释液吸出，并在 Transwell 上室中加入无血清的癌细胞系细胞悬浮液使细胞浓度约 7.5 x 104 cells/well.。
7.在 Transwell 下室中加入含 10 %血清的细胞培养液做为 chemoattractant，吸引癌细胞系进行迁移。
F、小鼠皮下成瘤实验准备程序
1.将 A 胶 (2X) (货号:CG0301-A) 置于 37 ℃水浴槽回温 10 分钟，确认完全融解。
2.将C 缓冲溶液(10X) 货号:CG0301-C)与冰的无血清细胞培养液 (例如: 无血清DMEM 或内含VEGF、heparin 的无血清 DMEM) 按 1:4 比例均勻混合配置。(例如:1 ml C 缓冲溶液(10X) 與 4 ml 无血清DMEM 混合，不可用 PBS 稀释)
3.将 A 胶 (2X) 与约 2*106 cells/ml 的癌细胞系悬浮液按 1:1 等比例均匀混合配置，癌细胞系悬浮液最终浓度约为 106 cells/ml。
4.选用 21-25 G 的针头 (避免破坏细胞)，抽取 0.2-0.3 ml 预冷稀释后的C 缓冲溶液。(C 缓冲溶液用于 A
胶成胶反应)
5.使用步骤 4 的同一支针管，再抽取 0.1-0.7 ml 含细胞的 A 胶混合液，在冰上孵育五分钟。
6.以皮下注射方式注射 0.3-1.0 ml 至小鼠。(需一次注射完含 C 缓冲溶液的 A 膠混合液)
注 1: 注射体积可依不同实验目的做调整，若为血管生成研究注射体积需至少 0.5 ml。
注 2: 此步骤依实验需求可执行或不执行，若需呈现明显的皮下注射隆起效果，可于注射完毕后，在小鼠
注射部位冰敷 5-10 分钟。
7.培养一至三周后可摘取接种的肿瘤组织。
注 3: 若为血管生成研究，应注射含 VEGF 及 heparin 的 A 胶，以促进血管生成。约三天后，可摘取含有新血管生成的肿瘤组织。
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文献和实验在 37℃，5% 低氧的培养箱中培养 3 天。 10、用 HEs（II）培养基进行换液，放置在 37℃，5% 低氧的培养箱中培养 4 天，之后转移至常氧条件下培养 8 天，达到肝成熟。 类器官培养 11、肝成熟后的 9-12 天，在单层肝细胞上会出现三维结构，此时将漂浮的囊泡状细胞收集起来，加入 Matrigel 并放置在 37℃ 条件下 10min 使 Matrigel 凝固。 12、添加 HM 培养基并完全没过 Matrigel 顶部，每 3 天更换培养基，每 7 天机械传代一次类器官。
3A，促使 hPSCs 衍生的终内胚层 (DE) 向中肠和后肠内胚层分化，并促进肠管样形态发生，进而产生包含吸收性肠细胞以及主要分泌谱系(包括 Paneth 细胞、杯状细胞和肠内分泌细胞)的肠类器官。 本篇文章基于 Nature protocols【2】 整理了 hPSCs 细胞来源的肠类器官培养方案。 细胞来源 hPSCs 培养基配方 第 1 天内胚层分化培养基 第 2 天内胚层分化培养基 第 3 天内胚层分化培养基 中肠和后肠分化培养基 肠生长培养基 近岸
。 由于人脑类器官的结构复杂，本文基于 Nature protocols 的方案，以背侧(hCS)前脑球体为例，简要介绍来源于 PSCs 的脑类器官培养流程【1】。 人脑类器官的培养 材料 细胞：hPSCs 或 iPSCs 细胞 主要培养基 基础培养基（主要成分：20% KSR，1% NEAA，0.5% GlutaMAX，0.1mM 2-Mercaptoethanol，10 ng/ml FGF2）； 神经诱导培养基（主要成分：20% KSR，1% NEAA，0.5% GlutaMAX，0.1mM
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