- ￥1500
- YLKBIO
- YLK-XB682
- 进口传代
- 2025年12月23日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 品系：
犬肾细胞 MDCK-II
- 细胞类型：
犬肾细胞 MDCK-II
- 肿瘤类型：
/
- 供应商：
优利科（上海）生命科学有限公司
- 库存：
100
- 英文名：
MDCK-II
- 生长状态：
贴壁生长
- 年限：
永久
- 运输方式：
快递形式
- 器官来源：
犬肾细胞 MDCK-II
- 是否是肿瘤细胞：
否
- 细胞形态：
正常
- 免疫类型：
/
- 物种来源：
犬肾细胞 MDCK-II
- 相关疾病：
/
- 组织来源：
犬肾细胞 MDCK-II
- 规格：
T25培养瓶
| 细胞英文名称 | MDCK-II | 细胞中文名称 | 犬肾细胞 |
| 形态特性 | 成纤维细胞样 | 生长特性 | 贴壁生长 |
| 培养体系 | DMEM(高糖）+10%FBS | ||
| 传代方法 | 1:3传代，3-4天传1次 | 传代情况 | |
| 冻存条件 | 无血清细胞冻存液 | ||
| 备注 | 悬浮细胞离心收集 | ||
STR：
1、 细胞传代：
1）细胞生长至覆盖培养瓶的 80%面积时，弃 25cm2 培养瓶中的培养液，用 PBS 清洗细胞一次；
2）添加 0.25%胰蛋白酶消化液约 1ml 至培养瓶中，倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后加入 5ml 完全培养
液终止消化，再轻轻吹打细胞使之脱落，然后将悬液转移至 15ml 离心管中， 1000rpm 离心 5min；
3）弃上清，沉淀细胞用 1-2ml 完全培养基重悬，然后按 1:2 比例进行分瓶传代，最后放入 37℃， 5%CO2 细胞
培养箱中培养；
2、 细胞冻存：
1）细胞生长至覆盖培养瓶的 80%面积时，弃 25cm2 培养瓶中的培养液，用 PBS 清洗细胞一次；
2）添加 0.25%胰蛋白酶消化液约 1ml 至培养瓶中，倒置显微镜下观察，待细胞回缩变圆后加入完全培养液终
止消化，轻轻吹打细胞使之脱落，然后将悬液转移至 15ml 离心管中， 1000rpm 离心 5min；
3）用适量的冻存液（FBS： DMSO=9 ： 1）重悬细胞，并放置于冻存管中；
4）先将细胞冻存管放置于-20℃ 1.5h，然后将其移入-80℃过夜， 24h 后转入液氮中进行长期保存。使用程序
降温盒可直接放入-80℃。
3、细胞复苏：
1）从液氮中取出细胞冻存管（注意：佩戴防爆管面具），快速将其置入 37℃水浴中解冻，直至冻存管中无结
晶，然后用 75%的酒精擦拭冻存管外壁；
2）将冻存管中的细胞移至含 6ml 完全培养基的 15ml 离心管中， 1000rpm 离心 5min；
3）弃上清，沉淀用 6ml 完全培养基重悬，接种 25cm2 培养瓶，于 37℃， 5%CO2 细胞培养箱中培养
犬肾细胞 MDCK-II收到后处理
细胞在培养瓶中培养至良好状态后灌满完全培养液并封好瓶口是细胞运输的最好办法。收到细胞回到自己的实验室后，先打开外包装，用75%酒精喷洒整个瓶消毒后放到超净台内，严格无菌操作。镜下观察：未超过80%汇合度时，可将瓶装的完全培养液移入废液缸中，悬浮细胞需离心处理，加入6ml新鲜完全培养基，放入37℃、5%CO2孵箱培养；超过80%汇合度时，根据情况传代或者冻存，具体操作见细胞培养步骤说明书。
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文献和实验一、目的MDCK细胞培养是分离流感病毒及相关研究实验的基本技术。疾控中心的所有技术人员，必须按照本文件相关的操作规程进行操作。二、适用范围适用于疾控中心所有技术人员 。三、程序（一）生物安全要求实验室生物安全级别：BSL-1所有操作必须在BSL-1实验室的生物安全柜里进行。（二）材料1. 生长成片的MDCK细胞2. 无菌的T25细胞培养瓶3. D-MEM培养液（含有L-谷氨酰胺）4. 青、链霉素母液（10000 U/mL青霉素G；10000µg/mL硫酸链霉素），分装后保存于-20
【求助】MDCK转染与免疫荧光问题，解决问题追加丁当，谢谢！
wen-wen 实验组：将带有c-myc和UT-B的pcDNA3.0质粒转染到MDCK细胞当中 对照组：1、将带有c-Myc和AQP1的pcDNA3.0质粒转染到MDCK细胞； 2、将GFP的质粒（就是一个只有GFP的质粒，没有UT-B,AQP1）转染MDCK细胞中，主要目的是想看我的操作技术怎么样； 3、过表达AQP1-MDCK的稳转细胞系。 然后通过免疫荧光来证实转染结果。（因为质粒若带有GFP会影响
of claudin–claudin interactions provides insights into the mechanism of regulation of the paracellular permeability. This study introduced coculture systems using TJ-bearing MDCK II cells and TJ-free HEK293 cells to examine claudin–claudin interactions.
