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- 详细信息
- 技术资料
- 提供商:
上海达为科生物科技有限公司
- 服务名称:
大鼠神经元原代培养
一、实验设计框架
1. 动物与取材选择
- 动物品系:优先选用SD或Wistar大鼠,新生鼠(出生24小时内)或胚胎鼠(E17-18天)。
- 取材区域:根据研究目标选择特定脑区:
- 海马神经元:适用于学习记忆研究,需精细分离海马组织。
- 皮层神经元:适合突触可塑性研究,建议取大脑表层2-3 mm皮质以提高纯度。
- 小脑颗粒神经元:推荐使用新生SD大鼠,需彻底去除脑膜。
2. 培养基与试剂优化
| 成分 | 推荐配方 | 功能说明 |
|---|---|---|
| 基础培养基 | Neurobasal-A(Gibco)或DMEM-F12 | 无血清配方,减少胶质细胞增殖 |
| 添加剂 | B27 Supplement(2%)、L-谷氨酰胺(2 mM)、bing酮酸钠(1 mM) | 支持神经元存活与分化 |
| 抗增殖剂 | 阿糖胞苷(Ara-C,10 μM) | 抑制胶质细胞污染,需在DIV3处理24小时 |
| 包被基质 | 多聚赖氨酸(0.1 mg/mL,PBS溶解) | 增强神经元贴壁,包被1小时后冲洗 |
3. 酶消化策略对比
| 方法 | 优点 | 缺点 | 适用场景 |
|---|---|---|---|
| 木瓜酶+DNA酶 | 温和消化,细胞损伤小,纯度>90% | 消化时间较长(30-45分钟) | 海马/皮层神经元 |
| 胰蛋白酶 | 快速(10-15分钟) | 易导致DNA缠结,需严格控制时间 | 需高通量处理时 |
| 机械吹打结合酶消化 | 提高细胞产量,减少杂质 | 操作技术要求高 | 高纯度需求实验 |
二、标准化操作流程
1. 组织处理与消化
- 解剖取材:
- 75%乙醇消毒动物头部,断头取脑,置于预冷Hanks液中。
- 精细分离目标脑区(如海马或皮层),去除血管和脑膜。
- 组织消化:
- 将组织剪碎至1 mm³碎片,加入含木瓜酶(2 mg/mL)和DNA酶(100 μg/mL)的消化液,37℃水浴30分钟。
- 每10分钟轻柔吹打一次,避免产生气泡。
2. 细胞悬液制备
- 终止消化:加入含10% FBS的DMEM-F12终止反应,200×g离心5分钟。
- 梯度纯化(可选):
- 使用Nycoprep™ 1.077密度梯度液,800×g离心15分钟,收集界面层神经元。
- 细胞计数:锥虫蓝染色评估活率(需>90%),调整密度至1-5×10⁵ cells/mL。
3. 接种与培养
- 包被处理:培养皿/玻片用0.1 mg/mL多聚赖氨酸包被1小时,PBS冲洗3次。
- 接种密度:
- 常规实验:1×10⁵ cells/cm²(如24孔板每孔2×10⁵ cells)。
- 单细胞成像:5×10⁴ cells/cm²以减少重叠。
- 换液策略:
- 接种后4-6小时更换为无血清Neurobasal-A+B27培养基,去除未贴壁细胞。
- 此后每2-3天半量换液,维持营养稳定。
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