HBG2远端启动子中的单碱基治疗性插入重新激活γ-珠蛋白表达

A one-base therapeutic insertion in the HBG2 distal promoter reactivates γ-globin expression

作者信息Xiuqin Bao, Yuanyi Gao, Xiaoyi Chen, Zhongju Wang, Xiaoqin Feng, Liren Wang, Jing Du, Yuhua Ye, Feijing Chen, Li Du, Aihua Yin, Xiangmin Xu
PMID40156013
发布时间2025-03-28
DOI10.1186/s40164-025-00626-7

实验完整度

高

包含体外细胞系(HUDEP-2)、患者来源CD34+ HSPC、移植小鼠模型等多个独立证据层级,并进行了功能验证(敲除/过表达FOXO3)和机制验证(ChIP-seq、ATAC-seq、RNA-seq等)。

主要模型

HUDEP-2细胞系 健康供体及β-地中海贫血患者的CD34+ HSPC NCG-Kit-V831M免疫缺陷小鼠移植模型

重点核对

CRISPR/Cas9编辑后HUDEP-2细胞中insA突变频率达95%,其中insA占61% CD34+ HSPCs编辑使用Cas9:sgRNA摩尔比1:2.75,实现95%插入缺失频率,insA占60% β-地中海贫血患者CD34+ HSPCs编辑效率为80-96% 移植小鼠中检测到编辑细胞插入缺失频率平均68%(范围62-73%)

摘要

背景:重新激活发育过程中被沉默的γ-珠蛋白基因(HBG1/2)已被证明是改善β-血红蛋白病症状的一种有前景的治疗策略。目前,治疗靶点的焦点主要放在主要的胎儿血红蛋白抑制因子,如BCL11A和ZBTB7A及其在HBG近端启动子上的结合位点。然而,远端HBG启动子在调节基因表达中的作用仍有待探索。方法:我们使用CRISPR/Cas9系统编辑远端HBG启动子。通过体外和体内实验,以及移植的NCG-Kit-V831M小鼠,进行功能验证和机制研究。结果:我们发现在HBG2转录起始位点上游−1368和−1369 bp之间插入一个核苷酸A(insA),导致HUDEP-2细胞中γ-珠蛋白表达显著增加。我们还观察到,在来自健康个体和β-地中海贫血患者的CD34+红系祖细胞中引入insA突变后,γ-珠蛋白表达升高。同样,移植的NCG-Kit-V831M小鼠也显示出γ-珠蛋白表达增加。重要的是,insA既没有脱靶效应,也不影响红系细胞的成熟。此外,我们发现insA突变为转录激活因子FOXO3创造了一个结合位点,FOXO3被AMPK激活。另外,引入insA通过减少DNA甲基转移酶3A(DNMT3A)的富集,特异性地去甲基化了HBG启动子上的−162 CpG位点。同时,它激活了HBG远端和近端启动子中的组蛋白修饰和RNA聚合酶II(Pol II),并可能抑制BCL11A和ZBTB7A分别与HBG启动子上−115和−200位点的结合。此外,insA与−115或-200编辑靶点的组合导致重新激活γ-珠蛋白基因表达的效果放大。结论:总之,我们使用来自健康供体或β-地中海贫血患者的CD34+ HSPC细胞以及随后移植的小鼠,提供了支持insA在调节γ-珠蛋白表达中作用的临床前数据。我们的研究表明,引入insA突变可显著提高胎儿珠蛋白水平,并为β-血红蛋白病揭示了新的安全治疗靶点或策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
远端HBG启动子在调节γ-珠蛋白表达中的作用及潜在的治疗靶点探索。
核心机制
insA突变在HBG2远端启动子创建了FOXO3结合位点,FOXO3被AMPK激活,导致HBG启动子上−162 CpG位点去甲基化,并激活组蛋白修饰和RNA聚合酶II,可能抑制BCL11A和ZBTB7A与近端启动子的结合,从而重新激活γ-珠蛋白表达。
主要证据
在HUDEP-2细胞、健康供体和β-地中海贫血患者的CD34+ HSPC中,insA显著增加γ-珠蛋白mRNA和HbF蛋白水平;移植NCG-Kit-V831M小鼠也观察到γ-珠蛋白诱导。ChIP-seq、ATAC-seq、RNA-seq等揭示了FOXO3结合、染色质激活和DNA去甲基化。
研究意义
研究揭示insA是位于HBG2远端启动子的新型基因编辑靶点,能有效刺激γ-珠蛋白表达,且无脱靶效应或对其他生物功能的干扰,为β-血红蛋白病提供了新的安全治疗靶点或策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定远端HBG启动子潜在调控区域

确定可能调控γ-珠蛋白表达的远端HBG启动子区域。

利用ENCODE项目公开数据(UCSC Genome Browser)分析组蛋白修饰标记,结合已有ERF抑制因子结合位点预测,锁定HBG2上游1370 bp区域作为候选编辑区域。

2

CRISPR/Cas9编辑HBG2远端启动子并筛选insA突变

引入并筛选出HBG2远端启动子的insA突变。

设计sgRNA克隆至Lenti-CRISPR载体,慢病毒转导HUDEP-2细胞;流式分选HbF阳性细胞,深度测序鉴定突变类型,发现单个A碱基插入(HBG2:c.-1421_-1422insA)。

3

体外验证insA对γ-珠蛋白表达的激活作用

验证insA在红系细胞中对γ-珠蛋白和HbF表达的影响。

在HUDEP-2细胞中过表达insA后,通过RT-qPCR、Western blot、HPLC和流式检测γ-珠蛋白mRNA、HbF蛋白、F细胞比例;同时敲除insA验证其必要性。并在健康供体和β-地中海贫血患者的CD34+ HSPCs中验证。

4

体内验证insA对γ-珠蛋白表达的激活作用

评估insA在移植小鼠模型中对γ-珠蛋白表达的长期诱导作用。

将编辑后的β-地中海贫血患者CD34+ HSPCs移植入NCG-Kit-V831M小鼠,16周后分析骨髓中人源细胞嵌合率、γ-珠蛋白表达和多谱系重建。

5

评估insA的安全性

检测insA是否影响红系分化或引起脱靶效应。

通过流式检测红系分化表面标志物、吉姆萨染色检测形态,以及MLPA和深度测序分析脱靶位点。

6

机制研究:FOXO3结合与染色质状态改变

揭示insA激活γ-珠蛋白表达的分子机制。

通过RNA-seq分析基因表达变化,JASPAR预测转录因子结合位点,双荧光素酶报告、EMSA、ChIP-seq验证FOXO3结合;ATAC-seq和ChIP-seq分析染色质可及性和组蛋白修饰;亚硫酸盐测序分析DNA甲基化。

7

联合编辑放大HbF诱导效应

评估insA与近端HPFH突变位点联合编辑是否能增强γ-珠蛋白激活。

在insA克隆HUDEP-2细胞中,利用CRISPR-Cas9靶向−115和−200簇,通过qPCR检测γ-珠蛋白mRNA水平,并通过qPCR检测中间区域是否缺失。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
X-VIVO 15培养基Lonza04–418Q
StemSpan无血清培养基StemCell Technologies09650
人干细胞因子Peprotech300-07
地塞米松SigmaD4902
多西环素SigmaD9891
促红细胞生成素Amgen55513-144-10
青霉素/链霉素ThermoFisher15140122
CD34+磁珠分选试剂盒Miltenyi Biotec--
Lenti-CRISPR载体--Addgene
Lonza 4D核转染仪LonzaV4XP-3032或V4XP-3024
Cas9蛋白----
TRIzol试剂ThermoFisher Scientific15596018
Hifair III第一链cDNA合成预混液YEASEN11141ES60
Hieff qPCR SYBR Green预混液YEASEN11201ES08
罗氏实时荧光定量PCR仪Roche--
抗HbF抗体Abcamab137096
抗GAPDH抗体Ray antibody129-10312
抗lamin A/C抗体Abcamab238303
抗β-微管蛋白抗体Abcamab6046
抗磷酸化FOXO3 (Ser413)抗体Cell Signaling Technology8174s
抗磷酸化AMPK (Thr172)抗体Cell Signaling Technology2535T
Variant II血红蛋白分析仪Bio-Rad Laboratories--
岛津Prominence高效液相色谱仪Shimadzu--
Vydac 214TP C4反相色谱柱Hichrom214TP54
PrimeScript RT试剂盒Takara--
SALSA MLPA P102-C1 HBB探针MRC-Holland--
FITC标记的抗人HbF抗体BD pharmingen552829
FITC标记的抗CD235a抗体eBioscience11-9987-82
PE-CY7标记的抗CD71抗体eBioscience25-0719-42
APC标记的抗CD233抗体Miltenyi130-117-713
PE标记的抗CD49d抗体eBioscience12-0499-42
NCG-Kit-V831M小鼠GemPharmatechT003802
pGL4.18载体----
pcDNA3.1载体----
WallacVictor V 1420多功能酶标仪PerkinElmer--
LightShift EMSA试剂盒Thermo Scientific20148X
NE-PER核浆蛋白提取试剂盒Thermo Scientific78833
吉姆萨染色试剂盒Fdbio scienceFD7527
ECLIPSE Ci-S显微镜Nikon--
EpiArtTM DNA甲基化亚硫酸盐试剂盒VzymeEM101
pMD19T载体TAKARAD104
蛋白A/G Plus琼脂糖珠Santa Cruzsc-2003
Q Exactive HF质谱仪----
UltiMate 3000 RSLCnano液相色谱系统----
TransNGS ATAC-Seq文库制备试剂盒TransgenKP171
TransNGS ATAC-Seq文库扩增SuperMix ITransgen--
TransNGS Tn5 Index试剂盒Transgen--
MagicPure DNA片段筛选磁珠--EC401
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒VazymeA211
SimpleChIP酶法染色质免疫沉淀试剂盒Cell Signaling Technology9003
Covaris S2超声破碎仪Covaris--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
CD34+ HSPC培养与分化
培养基配方、细胞因子种类及浓度、培养时间
阅读提示:Methods - Cell culture
CRISPR/Cas9编辑
RNP浓度、电穿孔程序、sgRNA序列
阅读提示:Methods - CRISPR/Cas9 editing
HUDEP-2细胞培养与分化
维持培养基成分、分化阶段培养基及时间
阅读提示:Methods - Cell culture
γ-珠蛋白表达检测
RT-qPCR引物和条件、Western blot抗体、HPLC方法
阅读提示:Methods - qPCR, Western blot, HPLC
机制研究
ChIP-seq/ATAC-seq抗体和条件、亚硫酸盐测序引物和程序
阅读提示:Methods - ChIP, ATAC-seq, Bisulfite sequencing
动物移植实验
小鼠品系和年龄、移植细胞数量、移植途径、分析时间点
阅读提示:Methods - Engraftment study