小鼠模型构建与验证
建立小胶质细胞特异性表达人TREM2-WT或TREM2-R47H的PS19小鼠模型,并验证其表达。
将TREM2条件性过表达小鼠与Cx3cr1CreER小鼠及PS19小鼠杂交,通过他莫昔芬诱导表达。通过qPCR和Western blot验证人TREM2 mRNA和蛋白水平,免疫荧光共染确认小胶质细胞特异性表达。
Enhancing TREM2 expression activates microglia and modestly mitigates tau pathology and neurodegeneration
包含多个独立证据层级:体外模型(细胞系)、动物模型(PS19小鼠)、单细胞测序及病理学验证,并进行了功能验证和机制研究。
PS19小鼠模型(过表达人MAPT-P301S) 小胶质细胞特异性表达人TREM2-WT或TREM2-R47H的PS19小鼠 原代小胶质细胞(scRNA-seq分析)
小鼠模型:PS19-TREM2-WT和PS19-TREM2-R47H,诱导组(他莫昔芬)与对照组(玉米油) 给药方式及剂量:他莫昔芬250 mg/kg,灌胃两次,间隔48小时 分析时间点:1.5月龄诱导,8.5月龄取材 检测指标:p-tau(AT8、MC-1)、tau ELISA(RAB、RIPA、FA部分)、NeuN厚度、微胶质密度(Iba1)、Galectin-3 scRNA-seq分析:单细胞分离、10x Genomics Chromium平台、Seurat分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立小胶质细胞特异性表达人TREM2-WT或TREM2-R47H的PS19小鼠模型,并验证其表达。
将TREM2条件性过表达小鼠与Cx3cr1CreER小鼠及PS19小鼠杂交,通过他莫昔芬诱导表达。通过qPCR和Western blot验证人TREM2 mRNA和蛋白水平,免疫荧光共染确认小胶质细胞特异性表达。
检测TREM2表达对tau蛋白病理的影响。
通过免疫荧光染色(AT8、MC-1)评估磷酸化tau和构象改变tau的分布,通过ELISA定量RAB、RIPA和FA各组分中总tau和p-tau水平。
评估TREM2表达对神经元结构完整性的影响。
通过NeuN免疫荧光染色测量侧脑室面积、梨状皮层锥体神经元层厚度、海马CA1和DG神经元层厚度。
检测TREM2表达对小胶质细胞总体密度的影响。
通过Iba1免疫荧光染色评估梨状皮层和海马的小胶质细胞覆盖面积。
通过scRNA-seq揭示TREM2表达对小胶质细胞转录组的影响,特别是DAM亚群。
从皮层分离单细胞,进行scRNA-seq。对微胶质细胞进行聚类和亚群鉴定,比较诱导组与对照组的差异表达基因和通路富集。
在独立队列中验证scRNA-seq发现的DAM标志物变化。
通过Galectin-3和Iba1免疫荧光染色,定量Galectin-3阳性小胶质细胞覆盖面积。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型诱导 | 他莫昔芬 | -- | 10540-29-1 |
| 玉米油 | -- | 8001-30-7 | |
| 组织制备 | 磷酸盐缓冲液 | Fisher BioReagents | BP39920 |
| 蔗糖 | Sigma-Aldrich | S7903 | |
| OCT包埋剂 | Fisher Healthcare | 23-730-571 | |
| 蛋白提取 | RAB缓冲液 | G-Biosciences | 786-91 |
| 蛋白酶抑制剂 | Roche | 11697498001 | |
| 磷酸酶抑制剂 | Roche | 4906845001 | |
| RIPA裂解液 | Millipore | 20-188 | |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | IPFL00010 |
| ECL底物 | Pierce | -- | |
| 抗人TREM2抗体 | Cell Signaling Technology | 91068 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A2228 | |
| ELISA | HT7抗体 | Thermo Scientific | MN1000 |
| BT2抗体 | Thermo Scientific | MN1010B | |
| 磷酸化tau ELISA试剂盒 | Thermo Scientific | KHO0631 | |
| 免疫荧光 | 山羊血清 | Vector Laboratories | S-1000 |
| AT8抗体 | Thermo Fisher Scientific | MN1020 | |
| 抗人TREM2抗体(16E1) | Mayo Clinic | -- | |
| 抗Iba1抗体 | Wako | 019-19741 | |
| 抗NeuN抗体 | Millipore | MAB377 | |
| 抗半乳糖凝集素3抗体 | Thermo Fisher Scientific | 14-5301-82 | |
| MC-1抗体 | Dr. Peter Davies | -- | |
| 图像采集 | 共聚焦显微镜(LSM800) | Carl Zeiss | -- |
| BZ-X810显微镜 | Keyence | -- | |
| 图像分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Thermo Fisher Scientific | 15596018 |
| RNeasy Mini试剂盒 | QIAGEN | 74104 | |
| DNase I | QIAGEN | 79254 | |
| RT-qPCR | iScript逆转录预混液 | Bio-Rad | 1708891 |
| SYBR Green预混液 | Bio-Rad | 172-5274 | |
| QuantStudio 7 Flex实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 单细胞测序 | 神经组织解离试剂盒 (P) | Miltenyi Biotec | 130-092-628 |
| 髓鞘去除磁珠II | Miltenyi Biotec | 130-096-733 | |
| 红细胞裂解液 | Miltenyi Biotec | 130-094-183 | |
| 死细胞去除试剂 | Miltenyi Biotec | 130-090-101 | |
| Chromium平台 | 10x Genomics | -- | |
| HiSeq 4000测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 他莫昔芬诱导剂量、时间点、动物品系 阅读提示:Methods: Mouse models |
| tau病理分析 | AT8、MC-1抗体稀释度、ELISA各组分分析条件 阅读提示:Figure 2 legend, Methods: Tissue Preparation, ELISA |
| 神经退行性变分析 | NeuN染色条件、测量参数 阅读提示:Figure 3 legend, Methods: Immunofluorescence staining |
| 小胶质细胞密度分析 | Iba1染色条件、量化方法 阅读提示:Figure 4 legend |
| scRNA-seq | 细胞分离、建库、测序深度、生物信息学参数 阅读提示:Methods: Single cell isolation and sequencing, ScRNA-seq data analysis |
| 免疫荧光验证DAM | Galectin-3抗体稀释度、定量方法 阅读提示:Figure 5 legend, Methods: Immunofluorescence staining |