神经元通过IFN/STAT1/IRF1上调PD-L1以减轻脑型疟中CD8+ T细胞引起的损伤

Neurons upregulate PD-L1 via IFN/STAT1/IRF1 to alleviate damage by CD8+ T cells in cerebral malaria

作者信息Yi Wang, Yan Shen, Jiao Liang, Shubiao Wang, Yuxiao Huang, Qinghao Zhu, Xizhi Zhang, Kangjie Yu, Guodong Tong, Chao Yang, Yinghui Li, Jun Wang, Ya Zhao
PMID38715061
发布时间2024-05-07
DOI10.1186/s12974-024-03114-7

实验完整度

包含体内ECM小鼠模型、体外原代神经元共培养、基因敲除小鼠验证、RNA-seq转录组分析及腺病毒介导的过表达保护实验,涵盖多个独立证据层级并包含功能与机制验证。

主要模型

原代培养的小鼠皮层神经元 C57BL/6J小鼠ECM模型 Ifnar1−/−和Ifngr1−/−基因敲除小鼠

重点核对

PbA感染剂量:5×10^6 pRBCs/只,腹腔注射 CD8+ T细胞与神经元共培养效靶比:2:1至5:1,共培养24小时 IFNβ刺激浓度:100 U/mL;IFNγ刺激浓度:20 ng/mL STAT1抑制剂氟达拉滨浓度:20 µM 脑立体定位注射腺病毒剂量:文中未明确说明

摘要

背景:脑型疟(CM)是疟疾最致命的并发症,幸存者通常留有神经系统后遗症。值得注意的是,浸润的疟原虫激活的CD8+ T细胞对脑微血管内皮细胞的细胞毒性作用是实验性脑型疟(ECM)模型中血脑屏障破坏的显著特征。然而,浸润脑实质的CD8+ T细胞对神经元的损伤作用仍不清楚。基于PD-1/PD-L1通路对T细胞的免疫抑制作用,我们先前的研究表明,全身性上调PD-L1以抑制CD8+ T细胞功能可有效减轻ECM小鼠的症状。然而,神经元是否能够通过PD-1/PD-L1负性免疫调节通路抑制CD8+ T细胞的致病作用尚未见报道。作为CM的重要炎症因子,干扰素可根据神经免疫微环境通过不同的分子机制诱导PD-L1的表达。因此,本研究旨在探讨CD8+ T细胞与神经元之间的直接相互作用,以及神经元通过IFN诱导上调PD-L1减轻CD8+ T细胞致病作用的机制。方法:采用伯氏疟原虫ANKA(PbA)感染的C57BL/6J小鼠ECM模型,通过电镜和IF染色进行体内形态学观察。通过IF染色和延时摄影观察ECM CD8+ T细胞(从小鼠脾脏免疫磁珠分选)与原代培养的皮层神经元之间的体外相互作用。通过RNA-seq分析IFNβ或IFNγ诱导神经元PD-L1上调的信号通路,并利用IFNAR或IFNGR基因敲除小鼠在体内外通过q-PCR、WB、IF染色和流式细胞术进行验证。通过脑立体定位注射验证腺病毒介导的PD-L1 IgGFc融合蛋白表达在ECM小鼠体内的保护作用,并在体外通过病毒感染原代培养神经元验证。结果:在体内,ECM小鼠脑实质中出现活化CD8+ T细胞浸润和神经元损伤。在体外,ECM CD8+ T细胞与神经元直接接触并诱导轴突损伤,这是一种主动行为。ECM小鼠神经元以及体外经IFNβ、IFNγ或ECM CD8+ T细胞诱导的原代培养神经元中PD-L1蛋白水平升高。此外,IFNβ或IFNγ诱导的神经元PD-L1表达是通过IFN受体增加STAT1/IRF1通路介导的。删除IFNAR或IFNGR后,PbA感染期间神经元PD-L1表达的增加减弱。腺病毒增加的PD-L1表达在体外和体内均部分保护神经元免受CD8+ T细胞介导的损伤。结论:我们的研究表明,I型和II型干扰素均可通过IFN受体介导的STAT1/IRF1通路诱导神经元上调PD-L1,以保护免受活化CD8+ T细胞介导的损伤,为减轻ECM期间的神经炎症提供了靶向途径。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
脑型疟中浸润的CD8+ T细胞是否直接损伤神经元,以及神经元是否通过IFN诱导的PD-L1上调来抑制CD8+ T细胞的致病作用及其分子机制。
核心机制
I型和II型干扰素(IFNβ和IFNγ)通过其受体介导STAT1/IRF1信号通路,诱导神经元上调PD-L1,从而抑制CD8+ T细胞的细胞毒性,减轻神经元损伤。
主要证据
ECM小鼠脑实质中神经元PD-L1表达上调;体外原代皮层神经元经IFNβ、IFNγ或ECM CD8+ T细胞刺激后PD-L1上调;Ifnar1−/−或Ifngr1−/−神经元在相应刺激下PD-L1上调减弱;过表达PD-L1(腺病毒Ad:PD-L1)在体外和体内均部分保护神经元免受CD8+ T细胞损伤。
研究意义
为脑型疟中神经炎症的缓解提供了靶向途径(PD-1/PD-L1通路),并为神经免疫细胞相互作用的研究提供了理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ECM小鼠模型建立与神经损伤观察

建立实验性脑型疟小鼠模型,观察脑实质中神经元损伤和CD8+ T细胞浸润情况。

C57BL/6J小鼠腹腔注射5×10^6 pRBCs诱导ECM,第7天取脑组织,通过H&E染色、电子显微镜、Nissl染色、TUNEL染色、IF染色等观察神经元损伤和CD8+ T细胞浸润。

2

CD8+ T细胞与神经元体外共培养

验证ECM激活的CD8+ T细胞对原代皮层神经元的直接细胞毒性作用。

磁珠分选ECM小鼠脾脏CD8+ T细胞,与原代皮层神经元共培养,通过LDH释放、流式细胞术、IF染色、延时摄影等检测神经元损伤。

3

IFN诱导神经元PD-L1表达及机制解析

确定IFNβ和IFNγ是否能诱导神经元PD-L1表达,并解析其信号通路。

用IFNβ(100 U/mL)或IFNγ(20 ng/mL)刺激原代神经元,通过q-PCR、WB、IF染色、流式细胞术检测PD-L1表达;通过RNA-seq、q-PCR、WB分析STAT1和IRF1表达,并使用STAT1抑制剂氟达拉滨验证通路。

4

IFN受体基因敲除验证

验证IFNAR或IFNGR在IFN诱导神经元PD-L1表达中的必要性。

培养Ifnar1−/−和Ifngr1−/−小鼠的原代皮层神经元,用IFNβ或IFNγ刺激,检测PD-L1表达;并感染PbA,检测脑干中p-STAT1、IRF1、PD-L1表达及CD8+ T细胞浸润。

5

PD-L1过表达保护实验

验证神经元过表达PD-L1对CD8+ T细胞介导损伤的体外和体内保护作用。

体外:用表达PD-L1 IgGFc融合蛋白的重组腺病毒(Ad:PD-L1)感染神经元,与ECM CD8+ T细胞共培养,检测LDH、MAP2、JC-1等。体内:通过脑立体定位注射将Ad:PD-L1注入ECM小鼠脑干,比较注射侧和非注射侧的神经元损伤和CD8+ T细胞浸润。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Neurobasal A培养基Gibco--
B-27添加剂Gibco17504-044
谷氨酰胺Gibco25030-164
青霉素和链霉素Gibco14140-148
胰蛋白酶HycloneSH30042.01
DMEM-F12培养基Gibco31330-038
胎牛血清Gibco16140063
多聚赖氨酸Sigma25988-63-0
红细胞裂解液BosterbioAR1118
磁珠分选试剂盒(阴性分选)BD558471
干扰素βSigma-AldrichI9032-1VL
干扰素γSinoBiological50709-MNAH
氟达拉滨MedChemExpressHY-B0069
SYTOX™绿色荧光染料InvitrogenS7020
碘化丙啶BeyotimeST511
JC-1染料MCEHY-K0601
LDH细胞毒性检测试剂盒BeyotimeC0016
RIPA裂解液BosterbioAR0102
蛋白酶抑制剂混合物Roche4693116001
蛋白浓度测定试剂盒BosterbioAR0146
BeyoGel™ Plus预制PAGE凝胶BeyotimeP0523M
高灵敏度增强化学发光即用型底物试剂盒BosterbioAR1197
TRIZOL试剂----
逆转录预混液VazymeR222-01
2×SYBR qPCR预混液VazymeQ311-02
引物Sangon Biotechnology--
流式细胞仪(FACSCanto)BD--
PE标记的抗PD-L1抗体BioLegend124307
FITC标记的H-2 Kb/H-2Db抗体BioLegend114605
含DAPI的封片剂Abcamab104139
柠檬酸抗原修复液BBIE673001
抗CD8抗体ServiceBioGB13429
抗Ki67抗体ServiceBioGB111141
抗PD-L1/CD274抗体Proteintech66248-1-Ig
抗NeuN抗体Proteintech66836-1-Ig
抗MAP2抗体Proteintech17490-1-AP
抗CD18抗体Proteintech10554-1-AP
抗APP抗体Proteintech25524-1-AP
抗p-STAT1抗体HUABIOET1611-20
抗LC3抗体HUABIOER1802-2
抗HLA I类ABC抗体HUABIOEM1801-10
抗IRF1抗体AbwaysCY5507
抗IFNβ抗体AbcamAB218229
抗IFNγ抗体ABclonalA12450
抗β-actin抗体CWBioCW0096
山羊抗兔IgG(HRP)CWBioCW0103S
山羊抗小鼠IgG(HRP)CWBioCW0102S
FITC标记的山羊抗小鼠IgGServiceBioGB22301
FITC标记的山羊抗兔IgGServiceBioGB22303
Cy3标记的山羊抗小鼠IgGServiceBioGB21301
Cy3标记的山羊抗兔IgGServiceBioGB21303
EVOS M7000成像系统Thermo Fisher--
电子显微镜(JEM-1400PLUS)JEOL--
Pannoramic DESK玻片扫描仪P25--
酶标仪(Model 680)Bio-Rad--
Ifnar1−/−小鼠Cyagen Bioscience--
Ifngr1−/−小鼠Shanghai Model Organisms Center--
10X Genomics Chromium仪器及单细胞3'试剂盒10X Genomics--
Illumina NovaSeq 6000测序系统Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、周龄、体重、感染剂量(5×10^6 pRBCs)、感染途径(腹腔注射)、感染时间(第7天)
阅读提示:Methods - Mice and infection
原代神经元培养
取材时间(出生后24h内)、消化酶(0.25%胰蛋白酶)及时间(10min)、培养基(Neurobasal A + 2% B-27 + 2mM Glutamine + 0.5%双抗)、成熟时间(约2周)
阅读提示:Methods - Primary murine cortical neuron culture
CD8+ T细胞分选
脾脏来源(ECM小鼠)、磁珠分选试剂盒(阴性分选)
阅读提示:Methods - Purification of spleen CD8+ T cells
共培养实验
效靶比(2:1-5:1)、共培养时间(24h)、检测指标(LDH、PI、SyTox、JC-1、MAP2、APP)
阅读提示:Methods - Cells co-culture and live-cell time-lapse photography; Figure 2
IFN刺激实验
IFNβ浓度(100 U/mL)、IFNγ浓度(20 ng/mL)、刺激时间(0-24小时,PD-L1在5小时达峰)、STAT1抑制剂(氟达拉滨20 µM)
阅读提示:Methods - Quantitative real-time PCR, Western blot, Flow cytometry; Figure 3, 4
基因敲除验证
Ifnar1−/−和Ifngr1−/−小鼠的基因型、感染模型(PbA)、检测时间(第7天)
阅读提示:Methods - Mice and infection; Figure 5
PD-L1过表达保护实验
腺病毒载体(Ad:PD-L1或Ad:IgGFc)、感染复数(MOI)未明确、脑立体定位注射坐标未明确、注射后感染时间(第1天感染,第7天取材)
阅读提示:Methods - Stereo-localization and microinjection of brain; Figure 6