ECM小鼠模型建立与神经损伤观察
建立实验性脑型疟小鼠模型,观察脑实质中神经元损伤和CD8+ T细胞浸润情况。
C57BL/6J小鼠腹腔注射5×10^6 pRBCs诱导ECM,第7天取脑组织,通过H&E染色、电子显微镜、Nissl染色、TUNEL染色、IF染色等观察神经元损伤和CD8+ T细胞浸润。
Neurons upregulate PD-L1 via IFN/STAT1/IRF1 to alleviate damage by CD8+ T cells in cerebral malaria
包含体内ECM小鼠模型、体外原代神经元共培养、基因敲除小鼠验证、RNA-seq转录组分析及腺病毒介导的过表达保护实验,涵盖多个独立证据层级并包含功能与机制验证。
原代培养的小鼠皮层神经元 C57BL/6J小鼠ECM模型 Ifnar1−/−和Ifngr1−/−基因敲除小鼠
PbA感染剂量:5×10^6 pRBCs/只,腹腔注射 CD8+ T细胞与神经元共培养效靶比:2:1至5:1,共培养24小时 IFNβ刺激浓度:100 U/mL;IFNγ刺激浓度:20 ng/mL STAT1抑制剂氟达拉滨浓度:20 µM 脑立体定位注射腺病毒剂量:文中未明确说明
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立实验性脑型疟小鼠模型,观察脑实质中神经元损伤和CD8+ T细胞浸润情况。
C57BL/6J小鼠腹腔注射5×10^6 pRBCs诱导ECM,第7天取脑组织,通过H&E染色、电子显微镜、Nissl染色、TUNEL染色、IF染色等观察神经元损伤和CD8+ T细胞浸润。
验证ECM激活的CD8+ T细胞对原代皮层神经元的直接细胞毒性作用。
磁珠分选ECM小鼠脾脏CD8+ T细胞,与原代皮层神经元共培养,通过LDH释放、流式细胞术、IF染色、延时摄影等检测神经元损伤。
确定IFNβ和IFNγ是否能诱导神经元PD-L1表达,并解析其信号通路。
用IFNβ(100 U/mL)或IFNγ(20 ng/mL)刺激原代神经元,通过q-PCR、WB、IF染色、流式细胞术检测PD-L1表达;通过RNA-seq、q-PCR、WB分析STAT1和IRF1表达,并使用STAT1抑制剂氟达拉滨验证通路。
验证IFNAR或IFNGR在IFN诱导神经元PD-L1表达中的必要性。
培养Ifnar1−/−和Ifngr1−/−小鼠的原代皮层神经元,用IFNβ或IFNγ刺激,检测PD-L1表达;并感染PbA,检测脑干中p-STAT1、IRF1、PD-L1表达及CD8+ T细胞浸润。
验证神经元过表达PD-L1对CD8+ T细胞介导损伤的体外和体内保护作用。
体外:用表达PD-L1 IgGFc融合蛋白的重组腺病毒(Ad:PD-L1)感染神经元,与ECM CD8+ T细胞共培养,检测LDH、MAP2、JC-1等。体内:通过脑立体定位注射将Ad:PD-L1注入ECM小鼠脑干,比较注射侧和非注射侧的神经元损伤和CD8+ T细胞浸润。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | Neurobasal A培养基 | Gibco | -- |
| B-27添加剂 | Gibco | 17504-044 | |
| 谷氨酰胺 | Gibco | 25030-164 | |
| 青霉素和链霉素 | Gibco | 14140-148 | |
| 胰蛋白酶 | Hyclone | SH30042.01 | |
| DMEM-F12培养基 | Gibco | 31330-038 | |
| 胎牛血清 | Gibco | 16140063 | |
| 多聚赖氨酸 | Sigma | 25988-63-0 | |
| 细胞分选 | 红细胞裂解液 | Bosterbio | AR1118 |
| 磁珠分选试剂盒(阴性分选) | BD | 558471 | |
| 药物处理 | 干扰素β | Sigma-Aldrich | I9032-1VL |
| 干扰素γ | SinoBiological | 50709-MNAH | |
| 氟达拉滨 | MedChemExpress | HY-B0069 | |
| 细胞损伤检测 | SYTOX™绿色荧光染料 | Invitrogen | S7020 |
| 碘化丙啶 | Beyotime | ST511 | |
| JC-1染料 | MCE | HY-K0601 | |
| LDH细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime | C0016 | |
| 蛋白提取与检测 | RIPA裂解液 | Bosterbio | AR0102 |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | 4693116001 | |
| 蛋白浓度测定试剂盒 | Bosterbio | AR0146 | |
| BeyoGel™ Plus预制PAGE凝胶 | Beyotime | P0523M | |
| 高灵敏度增强化学发光即用型底物试剂盒 | Bosterbio | AR1197 | |
| RNA提取与q-PCR | TRIZOL试剂 | -- | -- |
| 逆转录预混液 | Vazyme | R222-01 | |
| 2×SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q311-02 | |
| 引物 | Sangon Biotechnology | -- | |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪(FACSCanto) | BD | -- |
| PE标记的抗PD-L1抗体 | BioLegend | 124307 | |
| FITC标记的H-2 Kb/H-2Db抗体 | BioLegend | 114605 | |
| 免疫荧光 | 含DAPI的封片剂 | Abcam | ab104139 |
| 组织切片与染色 | 柠檬酸抗原修复液 | BBI | E673001 |
| 抗体孵育 | 抗CD8抗体 | ServiceBio | GB13429 |
| 抗Ki67抗体 | ServiceBio | GB111141 | |
| 抗PD-L1/CD274抗体 | Proteintech | 66248-1-Ig | |
| 抗NeuN抗体 | Proteintech | 66836-1-Ig | |
| 抗MAP2抗体 | Proteintech | 17490-1-AP | |
| 抗CD18抗体 | Proteintech | 10554-1-AP | |
| 抗APP抗体 | Proteintech | 25524-1-AP | |
| 抗p-STAT1抗体 | HUABIO | ET1611-20 | |
| 抗LC3抗体 | HUABIO | ER1802-2 | |
| 抗HLA I类ABC抗体 | HUABIO | EM1801-10 | |
| 抗IRF1抗体 | Abways | CY5507 | |
| 抗IFNβ抗体 | Abcam | AB218229 | |
| 抗IFNγ抗体 | ABclonal | A12450 | |
| 抗β-actin抗体 | CWBio | CW0096 | |
| 山羊抗兔IgG(HRP) | CWBio | CW0103S | |
| 山羊抗小鼠IgG(HRP) | CWBio | CW0102S | |
| 免疫荧光 | FITC标记的山羊抗小鼠IgG | ServiceBio | GB22301 |
| FITC标记的山羊抗兔IgG | ServiceBio | GB22303 | |
| Cy3标记的山羊抗小鼠IgG | ServiceBio | GB21301 | |
| Cy3标记的山羊抗兔IgG | ServiceBio | GB21303 | |
| 成像与分析 | EVOS M7000成像系统 | Thermo Fisher | -- |
| 电子显微镜(JEM-1400PLUS) | JEOL | -- | |
| Pannoramic DESK玻片扫描仪 | P25 | -- | |
| 酶标仪(Model 680) | Bio-Rad | -- | |
| 基因编辑 | Ifnar1−/−小鼠 | Cyagen Bioscience | -- |
| Ifngr1−/−小鼠 | Shanghai Model Organisms Center | -- | |
| 转录组测序 | 10X Genomics Chromium仪器及单细胞3'试剂盒 | 10X Genomics | -- |
| Illumina NovaSeq 6000测序系统 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、周龄、体重、感染剂量(5×10^6 pRBCs)、感染途径(腹腔注射)、感染时间(第7天) 阅读提示:Methods - Mice and infection |
| 原代神经元培养 | 取材时间(出生后24h内)、消化酶(0.25%胰蛋白酶)及时间(10min)、培养基(Neurobasal A + 2% B-27 + 2mM Glutamine + 0.5%双抗)、成熟时间(约2周) 阅读提示:Methods - Primary murine cortical neuron culture |
| CD8+ T细胞分选 | 脾脏来源(ECM小鼠)、磁珠分选试剂盒(阴性分选) 阅读提示:Methods - Purification of spleen CD8+ T cells |
| 共培养实验 | 效靶比(2:1-5:1)、共培养时间(24h)、检测指标(LDH、PI、SyTox、JC-1、MAP2、APP) 阅读提示:Methods - Cells co-culture and live-cell time-lapse photography; Figure 2 |
| IFN刺激实验 | IFNβ浓度(100 U/mL)、IFNγ浓度(20 ng/mL)、刺激时间(0-24小时,PD-L1在5小时达峰)、STAT1抑制剂(氟达拉滨20 µM) 阅读提示:Methods - Quantitative real-time PCR, Western blot, Flow cytometry; Figure 3, 4 |
| 基因敲除验证 | Ifnar1−/−和Ifngr1−/−小鼠的基因型、感染模型(PbA)、检测时间(第7天) 阅读提示:Methods - Mice and infection; Figure 5 |
| PD-L1过表达保护实验 | 腺病毒载体(Ad:PD-L1或Ad:IgGFc)、感染复数(MOI)未明确、脑立体定位注射坐标未明确、注射后感染时间(第1天感染,第7天取材) 阅读提示:Methods - Stereo-localization and microinjection of brain; Figure 6 |