临床样本中FTO表达水平及其与AML1-ETO的相关性分析
明确FTO在t(8;21) AML患者中的表达水平及其与AML1-ETO的相关性,以探究潜在的调控关系
利用qPCR检测26例初发t(8;21) AML患者和7例正常对照骨髓单个核细胞中FTO mRNA表达,分析其与AML1-ETO表达的相关性,并比较原发难治与非难治患者、不同治疗阶段(诊断与完全缓解)的FTO水平。
A novel AML1-ETO/FTO positive feedback loop promotes leukemogenesis and Ara-C resistance via stabilizing IGFBP2 in t(8;21) acute myeloid leukemia
包含体外细胞实验(增殖、凋亡、分化)、体内小鼠模型(AML1-ETO9a模型、异种移植模型)、临床样本分析及转录组测序等多层级验证,并进行机制和功能回复实验。
SKNO-1细胞系 Kasumi-1细胞系 AML1-ETO9a驱动的AML小鼠模型 SKNO-1异种移植裸鼠模型
AML1-ETO通过抑制PU.1介导的FTO转录抑制来上调FTO表达 FTO通过抑制YTHDF2介导的AML1-ETO mRNA衰减来促进AML1-ETO表达 FTO通过m6A去甲基化直接调控IGFBP2表达 IGFBP2过表达可恢复FTO敲低导致的Ara-C敏感性增加
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确FTO在t(8;21) AML患者中的表达水平及其与AML1-ETO的相关性,以探究潜在的调控关系
利用qPCR检测26例初发t(8;21) AML患者和7例正常对照骨髓单个核细胞中FTO mRNA表达,分析其与AML1-ETO表达的相关性,并比较原发难治与非难治患者、不同治疗阶段(诊断与完全缓解)的FTO水平。
验证AML1-ETO是否通过PU.1转录抑制FTO表达
在SKNO-1和Kasumi-1细胞中敲低AML1-ETO(siRNA或shRNA),检测FTO和PU.1的表达变化;通过ChIP、双荧光素酶报告基因实验验证PU.1直接结合FTO启动子并抑制其转录。
明确FTO是否通过m6A去甲基化抑制YTHDF2介导的AML1-ETO mRNA衰减
在SKNO-1和Kasumi-1细胞中过表达野生型或酶活突变型FTO,或敲低FTO,检测AML1-ETO mRNA和蛋白水平、m6A水平及mRNA半衰期;通过RIP验证FTO和YTHDF2与AML1-ETO mRNA的结合。
评估FTO对t(8;21) AML细胞恶性表型的影响
通过CCK-8、集落形成实验、流式细胞术检测细胞增殖、凋亡、细胞周期和分化;使用FTO过表达、敲低或FB23-2处理。
在体内模型中验证FTO对白血病发生和进展的影响
使用AML1-ETO9a驱动的AML小鼠模型,通过shRNA敲低Fto或使用FB23-2处理,观察小鼠生存期、白血病细胞浸润和分化。
验证FTO是否影响t(8;21) AML细胞对Ara-C的耐药性
在SKNO-1和Kasumi-1细胞中过表达或敲低FTO,或使用FB23-2预处理,检测Ara-C处理后的细胞活力(IC50)和凋亡;在异种移植模型中评估Ara-C联合FB23-2的抗肿瘤效果。
全转录组范围内鉴定FTO的m6A靶基因,并筛选关键下游效应分子
在过表达野生型FTO或对照的Kasumi-1细胞中进行RNA-seq和m6A-seq,分析m6A峰值变化和基因表达差异;结合TCGA数据库筛选与FTO表达相关的m6A低甲基化基因,并验证IGFBP2为关键靶点。
验证IGFBP2是否为FTO功能上的关键下游靶点,并参与白血病发生和耐药
在SKNO-1和Kasumi-1细胞中敲低IGFBP2,评估细胞增殖、凋亡、分化和Ara-C敏感性;在小鼠AML模型中敲低Igfbp2观察生存期和白血病浸润;在FTO敲低细胞中过表达IGFBP2进行回复实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Solarbio | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| 质粒构建 | 快速点突变试剂盒V2 | Vazyme | -- |
| 慢病毒感染 | 聚乙烯亚胺 | -- | -- |
| 聚凝胺 | Solarbio | -- | |
| 嘌呤霉素 | Solarbio | -- | |
| siRNA转染 | 4D核转染系统 | Lonza | -- |
| SF细胞系4D核转染X试剂盒 | Lonza | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | -- |
| 集落形成实验 | MethoCult™ H4434 Classic培养基 | StemCell Technologies | -- |
| 凋亡检测 | Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒 | Dojindo | -- |
| 细胞周期检测 | DNA标记溶液 | Cytognos | -- |
| 分化检测 | 红细胞裂解液 | Invitrogen | 00-4333-57 |
| 流式分析 | 抗人CD11b抗体 | Biolegend | 301310 |
| 抗CD11b-BV421抗体 | Biolegend | 101251 | |
| CytoFLEX S流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| RT-qPCR | GoScript™逆转录系统 | Promega | -- |
| SYBR Fast Universal预混液 | KAPA Biosystems | -- | |
| ABI Prism 7500序列检测系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | 抗FTO抗体 | Cell Signaling Technology | 45980 |
| 抗AML1抗体 | Cell Signaling Technology | 4334 | |
| 抗PU.1抗体 | Cell Signaling Technology | 2266 | |
| 抗YTHDF2抗体 | Proteintech | 24744-1-AP | |
| 抗YTHDF3抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-377119 | |
| 抗IGFBP2抗体 | Cell Signaling Technology | 3922 | |
| 抗Igfbp2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-515134 | |
| 抗β-actin hFAB罗丹明抗体 | Bio-Rad | 12004163 | |
| 抗β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 4970 | |
| m6A dot blot | GenElute™ mRNA小提试剂盒 | Sigma-Aldrich | -- |
| Amersham Hybond™-N+膜 | GE Healthcare | RPN203B | |
| Bio-Dot点样仪 | Bio-Rad | 170-6545 | |
| m6A抗体 | Abcam | ab232905 | |
| HRP标记的抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 7074 | |
| 亚甲蓝 | Solarbio | -- | |
| ChIP | SimpleChIP® Plus酶学染色质免疫沉淀试剂盒 | Cell Signaling Technology | 9005 |
| 抗PU.1抗体 | Cell Signaling Technology | 2266 | |
| 抗AML1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8563 | |
| 抗ETO抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-9737 | |
| 双荧光素酶报告基因 | pGL3-basic载体 | Promega | -- |
| pRL-TK海肾荧光素酶报告载体 | Promega | -- | |
| SuperFect®转染试剂 | Qiagen | -- | |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| psiCHECK2载体 | Promega | -- | |
| m6A-qPCR | Magna MeRIP m6A试剂盒 | Millipore | 17-10499 |
| m6A抗体 (MABE1006) | Millipore | MABE1006 | |
| 正常小鼠IgG抗体 | Millipore | CS200621 | |
| RNeasy MiniElute纯化试剂盒 | Qiagen | 74204 | |
| RIP | Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Millipore | 17-700 |
| 抗FTO抗体 | Cell Signaling Technology | 31687 | |
| 抗YTHDF1抗体 | Cell Signaling Technology | 57530 | |
| RNA pull-down | Pierce磁珠RNA-蛋白质下拉试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 20164 |
| 质谱分析 | EASY nLC 1200超高压液相色谱系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Q Exactive HF-X质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| RNA-seq和m6A-seq | Agilent Bioanalyzer 2100生物分析仪 | Agilent | -- |
| RNA 6000 Nano LabChip试剂盒 | Agilent | -- | |
| m6A抗体 | Synaptic Systems | 202003 | |
| Illumina Novaseq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| 小分子药物处理 | FB23-2 | -- | -- |
| 药物处理 | 阿糖胞苷 | -- | -- |
| 细胞培养 | 二甲基亚砜 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | SKNO-1和Kasumi-1细胞培养条件:RPMI-1640培养基,10% FBS,1%青霉素-链霉素;HEK-293T细胞用DMEM,10% FBS。 阅读提示:Methods 中 Cell culture |
| AML1-ETO敲低 | siRNA靶向AML1-ETO融合位点(siAE#1、siAE#2);SKNO-1-siAE稳转细胞系由慢病毒载体pRRLcPPT.hPGK生成。 阅读提示:Methods 中 Lentiviral infection and siRNA transfection |
| FTO过表达/敲低 | FTO过表达质粒pLVX-wtFTO和pLVX-mutFTO(H231A/D233A);shFTO#1和shFTO#2序列;FB23-2处理浓度及时间。 阅读提示:Methods 中 Plasmid construction 和 Lentiviral infection |
| m6A和RNA稳定性检测 | m6A-qPCR使用Magna MeRIP m6A Kit;RNA稳定性实验使用放线菌素D(终浓度5 mg/mL),检测1、1.5、3小时。 阅读提示:Methods 中 Gene-specific m6A-qPCR 和 RNA stability |
| 体内实验 | AML1-ETO9a小鼠模型:C57BL/6受体,450 cGy照射,尾静脉注射2×10^4细胞;FB23-2剂量6 mg/kg/day,30天;异种移植模型:BALB/c裸鼠皮下接种2×10^7 SKNO-1细胞,Ara-C剂量75 mg/kg/day,FB23-2剂量2 mg/kg/day(裸鼠)或4 mg/kg/day(NSG)。 阅读提示:Methods 中 AML1-ETO9a-driven AML mice model 和 Xenograft model |
| 统计设计 | 数据以均值±SD表示,两组比较用双尾Student's t检验,生存分析用Kaplan-Meier和对数秩检验,p<0.05为显著。 阅读提示:Methods 中 Statistical analysis |