小鼠肝脏混合扰动文库递送
在活体肝细胞中引入遗传扰动
通过颞静脉注射慢病毒文库到新生小鼠,随后用AAV8-Cre诱导Cas9表达。
Perturb-Multimodal: A platform for pooled genetic screens with imaging and sequencing in intact mammalian tissue.
结合小鼠体内混合CRISPR筛选、单细胞测序和多重成像,包含功能验证和机制验证。
Cas9转基因小鼠肝脏 原代肝细胞 K562-CRISPRi细胞系
慢病毒注射剂量:约1×10^7滴度单位/动物 AAV8-Cre诱导剂量:约5×10^11基因组拷贝/动物 Cas9诱导后10天进行组织固定与分析 扰动文库:202个基因(每个2个sgRNA)加50个阴性对照 单细胞测序分析约55,000个单扰动细胞,成像分析约79,000个单扰动细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在活体肝细胞中引入遗传扰动
通过颞静脉注射慢病毒文库到新生小鼠,随后用AAV8-Cre诱导Cas9表达。
保留细胞和组织形态用于成像和测序
灌注固定肝脏,取10μm切片用于成像,100μm切片用于测序。
同时检测内源mRNA、扰动条码和蛋白质
对组织切片进行抗体染色、凝胶包埋、原位连接和滚环扩增,然后进行多轮杂交成像。
获得全转录组表达谱和扰动身份
将固定组织解离成单细胞,FACS富集mTurquoise+和GFP+细胞,使用10x Flex平台进行单细胞RNA测序。
关联扰动与转录组和形态表型
使用CellRanger、自定义流程和机器学习方法处理数据,进行聚类和差异分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 慢病毒制备 | Fugene HD转染试剂 | Promega | E2311 |
| 慢病毒浓缩 | Lenti-X浓缩试剂 | Takara | 631232 |
| 单细胞RNA测序 | Chromium固定RNA试剂盒,小鼠转录组 | 10x Genomics | 1000496 |
| 免疫荧光 | 抗钙网蛋白抗体 | Abcam | ab271865 |
| 抗组织蛋白酶B抗体 | CST | D1C7YBF | |
| 抗GAPDH抗体 | CST | 14C10BF | |
| 抗脂滴包被蛋白抗体 | Proteintech | 15294-1-AP | |
| 抗磷酸化S6核糖体蛋白抗体 | CST | 2211BF | |
| RCA-MERFISH | SplintR连接酶 | NEB | M0375S |
| NxGen phi29 DNA聚合酶 | Lucigen | 30221-3 | |
| BccI限制酶 | NEB | R0704S | |
| BciVI限制酶 | NEB | R0596S |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 慢病毒递送 | 注射剂量:约1×10^7滴度单位/动物;注射途径:颞静脉;小鼠日龄:P1 阅读提示:STAR Methods: Mosaic Liver Preparation |
| Cas9诱导 | AAV8-Cre剂量:约5×10^11基因组拷贝/动物;注射途径:眶后注射;诱导时间:P30后 阅读提示:STAR Methods: Mosaic Liver Preparation |
| 组织固定与切片 | 固定液:PBS+4%多聚甲醛;切片厚度:成像10μm,测序100μm 阅读提示:STAR Methods: Mosaic Liver Preparation |
| RCA-MERFISH成像 | 编码探针浓度:1 nM/探针;杂交时间:36-48小时;成像物镜:40X或60X 阅读提示:STAR Methods: RCA-MERFISH Sample Preparation 和 Multiplexed RNA and protein imaging |
| 固定细胞Perturb-seq | sgRNA探针浓度:2 nM;细胞分选门:mTurquoise+和GFP+;测序平台:NovaSeq 6000 阅读提示:STAR Methods: Fixed Cell scRNA-seq Library Preparation and Sequencing |