建立线虫-细菌-药物三方模型并比较菌株效应
验证不同细菌菌株是否影响氟尿嘧啶对线虫的疗效。
将线虫饲养于不同大肠杆菌实验室菌株和野生型菌株上,测定5-FU及其他氟尿嘧啶类药物对卵孵化的MIC;并比较热/UV灭活细菌、细菌生长和细菌药物敏感性与宿主药效的关系。
Host-Microbe Co-metabolism Dictates Cancer Drug Efficacy in C. elegans.
结合大肠杆菌Keio基因敲除文库三方高通量筛选、线虫表型验证、LC-MS/MS代谢物检测及体内肿瘤/寿命模型,含功能与机制验证。
秀丽隐杆线虫N2 Bristol及突变体 大肠杆菌BW25113及Keio单基因敲除文库 大肠杆菌OP50、HB101、HT115等菌株 gld-1 RNAi和glp-1(gof)线虫肿瘤模型
线虫卵孵化MIC测定:5-FU浓度梯度0-64 μM,至少3个独立生物学重复,每数据点至少100只动物 宿主-微生物-药物筛选:3813个Keio敲除株,初筛0/1/2.5/5 μM 5-FU,复筛0-100 μM,3个生物学重复 细菌生长IC50:96孔板OD600nm,37°C 180 rpm 16 hr,log(inhibitor) vs response四参数模型 LC-MS/MS代谢物检测:细菌/线虫/卵样本,至少3-4个生物学重复,稳定同位素内标定量 寿命分析:gld-1 RNAi或glp-1(gof)线虫,25°C,每4天转板,每1-2天评分,log-rank检验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证不同细菌菌株是否影响氟尿嘧啶对线虫的疗效。
将线虫饲养于不同大肠杆菌实验室菌株和野生型菌株上,测定5-FU及其他氟尿嘧啶类药物对卵孵化的MIC;并比较热/UV灭活细菌、细菌生长和细菌药物敏感性与宿主药效的关系。
系统鉴定影响5-FU对宿主疗效的大肠杆菌基因。
使用Keio单基因敲除文库进行初筛和复筛,以线虫发育停滞的MIC为读出;同时进行微生物-药物筛选测定细菌生长;进行KEGG/EcoCyc通路富集分析。
确定细菌PLP合成通路是否介导5-FU对宿主的疗效。
测试B6从头合成和补救途径基因敲除对线虫MIC的影响;用LC-MS/MS测定B6维他命水平;补充PL或PN等前体进行回补实验;用RNAi敲低线虫F57C9.1。
探究细菌甘氨酸裂解系统和叶酸代谢是否调节5-FU疗效。
测试gcvTHP、gcvA、gcvR、folM、purU、fau、metF等敲除对线虫MIC的影响;LC-MS/MS测定叶酸代谢物和多聚谷氨酸化谱;使用二甲双胍进行化学干预。
确定细菌是否通过代谢转化氟尿嘧啶前药来影响宿主疗效。
进行生物转化实验,将5-FC或5-FO与细菌预孵育后用于线虫孵化实验;LC-MS/MS检测氟核苷酸;测试Δupp、Δudk、Δudp、ΔpyrE、ΔpyrF、ΔcodA等突变体及尿苷/乳清酸/胸苷补充。
探究ndk和dcd突变增强5-FU疗效的机制及其与宿主ndk-1的关系。
测试Δndk、Δdcd、ΔyjjG对线虫MIC、细菌IC50、氟核苷酸水平、自噬报告基因和msh-6突变体反应的影响;用RNAi敲低线虫ndk-1。
验证细菌代谢是否影响5-FU的抗增殖和延长寿命效应。
使用gld-1 RNAi或glp-1(gof)线虫模型,测量肿瘤大小和寿命;比较对照细菌与Δupp、ΔudpΔudkΔupp、ΔpyrE等突变体的效应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 5-氟尿嘧啶 | Sigma-Aldrich | F6627 |
| 5-氟-2′-脱氧尿苷 | Alfa Aesar | L1497 | |
| 5-氟胞嘧啶 | Acros Organics | 258340010 | |
| 5-氟乳清酸 | ThermoFisher Scientific | R0811 | |
| 卡培他滨 | Santa Cruz Biotechnology | SC-205618 | |
| LC-MS/MS | 氘代3-磷酸吡哆醛 | Buchem BV | -- |
| 氘代3-吡哆醛 | Sigma-Aldrich | 705187 | |
| 氘代2-吡哆醇 | CDN Isotopes | D-6819 | |
| 氘代3-吡哆胺 | Sigma-Aldrich | 705322 | |
| 胞苷-13C9,15N3 5′三磷酸 | Sigma-Aldrich | 645699 | |
| 尿苷-13C9,15N2 5′-三磷酸 | Santa Cruz Biotechnology | SC-301963A | |
| 蛋白定量 | Pierce™ BCA蛋白测定试剂盒 | ThermoFisher Scientific | 23250 |
| RNA定量 | Qubit® RNA HS测定试剂盒 | ThermoFisher Scientific | Q32852 |
| 蛋白定量 | Qubit®蛋白测定试剂盒 | ThermoFisher Scientific | Q33211 |
| 质粒提取 | GenElute质粒小量提取试剂盒 | Sigma-Aldrich | PLN70 |
| RNA提取 | Direct-zol RNA小量制备试剂盒 | Zymo Research | R2052 |
| RT-qPCR | iScript逆转录预混液 | Bio-Rad | 1708841 |
| PrecisionPLUS 2X qPCR预混液 | PrimerDesign | PrecisionPLUS-R-SY | |
| 分子克隆 | Phusion高保真DNA聚合酶 | ThermoFisher Scientific | F530S |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 线虫培养与药物处理 | 线虫饲养温度20°C(除非另有说明);药物处理时25°C;氟尿嘧啶浓度范围0.01-64 μM;核苷酸补充200 μM或2 mM;B6维他命补充10 μM或1 mM。 阅读提示:STAR Methods中Nematode Culture Conditions小节。 |
| 宿主-微生物-药物高通量筛选 | 使用Keio文库奇数编号敲除株;初筛5-FU浓度0、1、2.5、5 μM;复筛浓度0、5、10、15、20、30、40、50、75、100 μM;复筛3个生物学重复;每孔约10只L1线虫;25°C孵育72 hr;排除标准:NGM上不生长、无药物时线虫发育延迟、靶基因未敲除。 阅读提示:STAR Methods中Host-Microbe-Drug Screen小节及Figure 2C、Figure S2C。 |
| 卵孵化实验 | 12孔板;线虫从L1在测试细菌上20°C培养2天;每孔2只L4线虫;25°C产卵24 hr后移除成虫;再孵育24 hr后评分;至少3个独立生物学重复,每数据点至少100只动物。 阅读提示:STAR Methods中Hatching Assays小节。 |
| 细菌生长与IC50测定 | 细菌过夜培养后洗涤,OD600nm=2,在96孔板中1:1000稀释于含系列药物浓度的NGM肉汤;37°C 180 rpm孵育16 hr;OD600nm读取;四参数log(inhibitor) vs response模型计算IC50。 阅读提示:STAR Methods中Bacterial MIC Assays小节。 |
| LC-MS/MS代谢物分析 | 细菌样本:20°C NGM上生长3天的菌苔;线虫样本:约1000-5000只同步化L1在20°C培养至L4;卵样本:约5000只1日龄成虫碱性次氯酸盐处理;至少3-4个生物学重复;使用稳定同位素内标;蛋白浓度归一化。 阅读提示:STAR Methods中1-Carbon Metabolism Analysis、Vitamin B6 Analysis、Nucleotide and Fluoronucleotide Analysis小节。 |
| 寿命分析 | gld-1 RNAi或glp-1(gof)线虫;25°C全程;每4天转至新板;每1-2天监测存活;无肿瘤性生殖腺的动物在第1天移除;统计采用log-rank检验。 阅读提示:STAR Methods中Lifespan Analysis小节。 |
| RNAi实验 | 线虫在含1 mM IPTG的NGM板上用HT115(DE3)或HT115(DE3) Δndk表达pL4440 RNAi构建体维持两代;敲低效率用qRT-PCR验证。 阅读提示:STAR Methods中Nematode Culture Conditions小节及Figures S3D、S6I。 |