马齿苋来源的细胞外囊泡样颗粒重编程肠道ILCs以缓解炎症性肠病和结肠炎相关结直肠癌

Portulaca oleracea L.-derived extracellular vesicle-like particles reprogram intestinal ILCs to alleviate inflammatory bowel disease and colitis-associated colorectal cancer

作者信息Hao Zhong, Zhuoya Liu, Zixuan Zhao, Shujia Yao, Deyang Ning, Hongzhi Qiao, Haiyang Yu
PMID42979575
发布时间2026-11
DOI10.1016/j.apsb.2026.07.044

实验完整度

高

含体外细胞实验、肠道ILC分离培养、DSS及AOM/DSS小鼠模型、生物分布及双荧光素酶验证

主要模型

DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠模型 慢性结肠炎小鼠模型 AOM/DSS诱导的CAC小鼠模型 CT26细胞

重点核对

DSS诱导UC模型:3% DSS饮水1周;慢性结肠炎:2% DSS饮水1周+2周恢复,共3个周期 CAC模型:腹腔注射10 mg/kg AOM后,2% DSS饮水1周+2周恢复,共3个周期 PO-EVLPs灌胃剂量:30和60 mg/kg,每日给药 miR159-y agomir腹腔注射剂量:500 pmol(低剂量)或1 nmol(高剂量) 双荧光素酶报告实验:HEK-293T细胞共转染TGFBR2 3′UTR野生型/突变型质粒与miR159-y mimic或阴性对照

摘要

炎症性肠病(IBD)及其向结肠炎相关结直肠癌(CAC)的进展,因其复杂的发病机制和有限的治疗选择而构成重大临床挑战。植物来源的细胞外囊泡样颗粒(PEVLPs)因其生物相容性和内在生物活性,已成为靶向治疗的有前景候选者。在此,我们分离并表征了马齿苋来源的细胞外囊泡样颗粒(PO-EVLPs),并通过系统的生物分布研究证明其在小鼠模型结肠中的优先积累。机制上,PO-EVLPs通过递送miRNAs发挥治疗作用。具体而言,富集的miR159-y抑制TGF-β受体表达,从而促进结肠炎组织中3型固有淋巴细胞(ILC3s)的扩增。此外,在从慢性炎症向癌发生的转变过程中,miR159-y介导的TGF-β受体抑制阻止了TGF-β驱动的NK细胞向ILC1s的分化以及ILC3s向调节性固有淋巴细胞(ILCregs)的转化,从而阻碍CAC进展。体内研究还表明其具有良好的安全性。这些发现确立了PEVLPs作为一个多功能治疗平台,同时靶向炎症通路和肿瘤转化,为通过精确调节黏膜免疫来管理IBD和CAC提供了新策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PO-EVLPs能否通过靶向肠道ILCs对IBD和CAC发挥双重治疗作用,其作用机制是什么。
核心机制
PO-EVLPs递送miR159-y抑制TGFBR2表达,进而抑制TGF-β/Smad3信号通路;在IBD中促进ILC3扩增和IL-22产生以修复肠屏障,在CAC中阻止NK细胞向ILC1s转化及ILC3s向ILCregs转化。
主要证据
DSS诱导UC和慢性结肠炎模型、AOM/DSS诱导CAC模型中PO-EVLPs灌胃改善疾病指标;结肠ILC分离培养、流式细胞术分析ILC亚群;RNA-seq和KEGG/GSEA富集分析;Western blot检测TGFBR2和p-Smad3;双荧光素酶报告验证miR159-y靶向TGFBR2 3′UTR;miR159-y agomir和antagomir体内验证。
研究意义
确立PEVLPs作为同时靶向炎症通路和肿瘤转化的多功能治疗平台,为通过精确调节黏膜免疫管理IBD和CAC提供新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

PO-EVLPs的分离与表征

获得PO-EVLPs并明确其粒径、形态、组成和稳定性。

采用差速离心法从马齿苋中分离PO-EVLPs,通过NTA、TEM、TLC、SDS-PAGE、脂质组学、蛋白质组学和小RNA测序进行表征,并在模拟胃液和肠液中评估稳定性。

2

PO-EVLPs在IBD模型中的治疗效果评价

验证PO-EVLPs对溃疡性结肠炎和慢性结肠炎的缓解作用及肠屏障修复能力。

建立DSS诱导的UC模型和慢性结肠炎模型,每日灌胃给予PO-EVLPs,检测疾病活动指数、体重、结肠病理、肠通透性、杯状细胞和Ki67等指标。

3

PO-EVLPs在CAC模型中的治疗效果和安全性评价

验证PO-EVLPs对结肠炎相关结直肠癌进展的抑制作用及安全性。

建立AOM/DSS诱导的CAC模型,每日灌胃PO-EVLPs,检测结肠长度、肿瘤数量、生存率、体重、组织病理及血清肝肾功能指标。

4

PO-EVLPs的体内生物分布和细胞摄取

明确口服后PO-EVLPs在体内的组织分布及被肠道免疫细胞摄取的情况。

采用Cy7标记PO-EVLPs灌胃,在不同时间点进行活体成像和离体器官荧光成像;采用CFSE和PKH26标记PO-EVLPs,通过流式细胞术和共聚焦显微镜检测肠道免疫细胞摄取。

5

PO-EVLPs对肠道ILC亚群的调控

明确PO-EVLPs在UC和CAC模型中对ILC亚群组成的影响。

分离结肠固有层细胞,通过流式细胞术检测NK、ILC1、ILC2、ILC3和ILCreg比例;通过mIHC检测ILCreg。

6

IL-22在PO-EVLPs治疗IBD中的作用验证

验证ILC3来源的IL-22是否介导PO-EVLPs的肠屏障修复作用。

在PO-EVLPs治疗期间给予IL-22中和抗体,观察对疗效的影响,同型对照抗体作为对照。

7

TGF-β信号通路机制验证

验证PO-EVLPs通过下调TGFBR2抑制TGF-β信号通路,进而调控ILC表型可塑性。

对PO-EVLPs处理的肠道ILC进行RNA-seq和KEGG/GSEA分析;Western blot检测TGFBR2、Smad3和p-Smad3;分离结肠ILC,在体外用TGF-β和PO-EVLPs处理72 h,流式检测ILCreg分化和IL-22表达。

8

PO-EVLPs对结肠癌细胞体外的抗肿瘤作用

验证PO-EVLPs是否通过抑制TGF-β信号通路直接抑制结肠癌细胞增殖和迁移。

用不同浓度PO-EVLPs处理CT26细胞,通过MTT、Annexin V/PI凋亡、Western blot、免疫荧光、克隆形成、划痕愈合和Transwell实验检测细胞活力、凋亡、EMT标志物和迁移侵袭能力。

9

miR159-y作为PO-EVLPs功能成分的鉴定与验证

确定PO-EVLPs中抑制TGFBR2的关键活性成分并验证miR159-y与TGFBR2的靶向关系。

分离PO-EVLPs的脂质、蛋白、RNA和小分子组分,分别处理CT26细胞检测TGFBR2表达;对PO-EVLPs进行miRNA测序;将丰度前五的miRNA转染ILC筛选TGFBR2抑制因子;双荧光素酶报告验证miR159-y与TGFBR2 3′UTR结合;在ILC中转染miR159-y检测ILCreg分化。

10

miR159-y的体内治疗作用和必要性验证

验证miR159-y单独给药能否缓解结肠炎,以及抑制miR159-y是否削弱PO-EVLPs的疗效。

在结肠炎小鼠中腹腔注射miR159-y agomir,检测结肠长度、DAI、体重、HE染色、AB/PAS染色、肠屏障蛋白和ILC亚群;在PO-EVLPs治疗小鼠中注射miR159-y antagomir,观察对PO-EVLPs保护作用的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
葡聚糖硫酸钠Yeasen60316ES76
氧化偶氮甲烷Sigma-AldrichA5486
FITC-葡聚糖(分子量4000)MCEHY-128868A
山羊抗兔IgG(H+L)辣根过氧化物酶标记二抗Thermo Fisher Scientific31460
ECL超敏化学发光底物试剂盒ABclonalRM02867
溶菌酶抗体ABclonalA10972
E-钙黏蛋白抗体ABclonalA20798
波形蛋白抗体ABclonalA19607
N-钙黏蛋白抗体ABclonalA19083
TGF-β受体II抗体ABclonalA1415
黏蛋白2抗体ABclonalA4767
磷酸化Smad3抗体ABclonalAP0727
Smad3抗体Proteintech66516-1-Ig
CoraLite® Plus 488标记山羊抗兔重组二抗(H+L)ProteintechRGAR002
CoraLite® Plus 594标记山羊抗小鼠重组二抗(H+L)ProteintechRGAM004
Smad4抗体Proteintech83169-5-RR
闭锁小带蛋白1抗体Proteintech82870-7-RR
闭合蛋白抗体SelleckF22C23
Percoll密度梯度介质GE Healthcare--
VIII型胶原酶Sigma-Aldrich--
脱氧核糖核酸酶ISigma-Aldrich--
EasySep™小鼠泛ILC富集试剂盒Stemcell19875
白细胞介素-23Gibco--
白细胞介素-1βGibco--
酪胺信号放大染料ServicebioG1257-50T
中性树胶封片剂ServicebioG1003
Ki67抗体ServicebioGB151499-100
可固定活性染料eFluor780eBioscience65-0865-14
抗CD16/32抗体eBioscience93
CD127抗体eBioscienceA7R34
CD45抗体eBioscience30-F11
NKp46抗体eBioscience29A1.4
CD3e抗体eBioscience145-2C11
CD8a抗体eBioscience53-6.7
CD19抗体eBioscience1D3
CD11b抗体eBioscienceM1/70
CD11c抗体eBioscienceN418
F4/80抗体eBioscienceBM8
TER-119抗体eBioscienceTER-119
Ly-6G抗体eBioscience1A8
Ly-6C抗体eBioscienceHK1.4
芳香烃受体抗体eBioscience4MEJJ
细胞刺激混合物(含蛋白转运抑制剂,500×)eBioscience00-4975
细胞内固定和透化试剂盒eBioscience88-8824-00
丙氨酸氨基转移酶检测试剂盒njjcbioC009-2-1
天冬氨酸氨基转移酶检测试剂盒njjcbioC010-2-1
血清肌酐检测试剂盒njjcbioC011-2-1
血尿素氮检测试剂盒njjcbioC013-2-1
Lipofectamine™ RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher Scientific13778100
Lipofectamine™ 3000转染试剂Thermo Fisher ScientificL3000015
Opti-MEM减血清培养基Thermo Fisher Scientific31985070
双荧光素酶报告基因检测系统PromegaE1910
PKH26荧光染料UmibioUR52302

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
UC和慢性结肠炎模型构建及给药
DSS浓度与周期、PO-EVLPs灌胃剂量(30和60 mg/kg)、给药频次(每日)、每组样本量(n=6)
阅读提示:Methods 2.2 Mouse model;Figure 2A图注
CAC模型构建及给药
AOM腹腔注射剂量(10 mg/kg)、DSS浓度(2%)与周期、PO-EVLPs灌胃剂量、实验总时长(70天)、生存监测样本量(n=10)
阅读提示:Methods 2.2 Mouse model;Figure 3A图注
PO-EVLPs体内生物分布
Cy7-PO-EVLPs灌胃剂量(30 mg/kg)、成像时间点(1、6、12、24 h)、DSS预处理方案
阅读提示:Methods 2.6 In vivo distribution of PO-EVLPs;Figure 4
结肠ILC分离与培养
胶原酶VIII和DNase I浓度(150 μg/mL)、消化时间(90 min)、Percoll密度梯度(40%和80%)、ILC培养基添加因子及浓度
阅读提示:Methods 2.9 ILC isolation;2.10 Intestinal lymphocyte sorting
ILC体外TGF-β和PO-EVLPs处理
TGF-β浓度(文中未明确说明)、PO-EVLPs浓度(文中未明确说明)、处理时间(72 h)、流式检测指标
阅读提示:Figure 6G–I图注;Results 3.6
miR159-y靶向TGFBR2验证
TGFBR2 3′UTR野生型/突变型质粒构建、miR159-y mimic浓度(文中未明确说明)、共转染细胞(HEK-293T)、检测时间(48 h)
阅读提示:Methods 2.19 Dual-luciferase reporter assay;Figure 8D和E
miR159-y agomir体内治疗
给药剂量(500 pmol或1 nmol)、给药途径(腹腔注射)、给药频次和疗程(文中未明确说明)、每组样本量(n=6)
阅读提示:Results 3.8;Figure 8G–M图注
PO-EVLPs组分活性筛选
组分提取方法、等效质量策略(35 mg PO-EVLPs对应17.5 mg/mL)、处理时间(24 h)、检测指标(TGFBR2蛋白表达)
阅读提示:Methods 2.20 Extraction of PO-EVLP components;Figure 8A