ATM在过氧化物酶体上发挥作用,响应ROS诱导pexophagy

ATM functions at the peroxisome to induce pexophagy in response to ROS.

作者信息Jiangwei Zhang, Durga Nand Tripathi, Ji Jing, Angela Alexander, Jinhee Kim, Reid T Powell, Ruhee Dere, Jacqueline Tait-Mulder, Ji-Hoon Lee, Tanya T Paull, Raj K Pandita, Vijaya K Charaka, Tej K Pandita, Michael B Kastan, Cheryl Lyn Walker
PMID26344566
发布时间2015-10
DOI10.1038/ncb3230

实验完整度

高

包含细胞系、原代细胞、患者成纤维细胞、动物细胞模型等多层级证据,并进行功能与机制验证。

主要模型

HEK293细胞 HepG2细胞 FAO大鼠肝细胞 AT患者成纤维细胞(GM05849)

重点核对

H2O2处理浓度0.4 mM及不同时间点(1,3,6 h) Clofibrate处理浓度0.25 mM、0.5 mM、1 mM及时间点(1,3,6 h) PEX5 S141A、S141E、K209R等突变体的构建与转染 ATM siRNA和PEX2/10/12 siRNA的敲低效率验证 Bafilomycin A1(浓度文中未明确说明)对自噬流检测的阻断

摘要

过氧化物酶体是高度代谢、自主复制的细胞器,作为脂肪酸β-氧化的副产物产生活性氧(ROS)。因此,细胞必须维持过氧化物酶体稳态,否则面临与过氧化物酶体过少相关的病理(如过氧化物酶体生物发生障碍)或与过氧化物酶体过多相关的病理,后者诱导氧化损伤并促进癌症等疾病。我们报道,PEX5过氧化物酶体输入受体结合共济失调毛细血管扩张突变(ATM)激酶,并将该激酶定位于过氧化物酶体。响应ROS,ATM信号激活ULK1并抑制mTORC1以诱导自噬。过氧化物酶体自噬(pexophagy)的特异性由ATM在Ser141磷酸化PEX5提供,该磷酸化促进PEX5在K209单泛素化,并通过自噬接头蛋白p62识别泛素化的PEX5,引导自噬体至过氧化物酶体以诱导pexophagy。这些数据揭示了ATM在代谢中的重要作用,即作为ROS传感器调控pexophagy。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
细胞如何识别并清除过量或异常的过氧化物酶体以维持稳态,以及ROS是否作为过氧化物酶体稳态的调节信号。
核心机制
ROS激活过氧化物酶体上的ATM,ATM一方面通过AMPK-TSC2抑制mTORC1激活ULK1诱导自噬,另一方面磷酸化PEX5 Ser141促进其K209单泛素化,泛素化的PEX5被p62识别,引导自噬体至过氧化物酶体诱导pexophagy。
主要证据
在HEK293、HepG2、FAO细胞及AT患者成纤维细胞中,通过亚细胞分离、免疫共沉淀、Western blot、免疫荧光和电镜等技术,证明ATM定位于过氧化物酶体、PEX5磷酸化与泛素化及p62结合、过氧化物酶体蛋白降解,且这些过程依赖ATM和PEX5的S141/K209位点。
研究意义
揭示了ATM在代谢中的作用,即作为ROS传感器调控pexophagy,为理解过氧化物酶体稳态维持机制及相关疾病提供新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ATM过氧化物酶体定位及ROS激活验证

验证ATM是否定位于过氧化物酶体并在ROS响应下被激活。

对HEK293细胞进行亚细胞分离,用proteinase K保护实验检测ATM在过氧化物酶体的定位;用H2O2处理HepG2细胞,免疫印迹和免疫荧光检测p-ATM(S1981)与过氧化物酶体标志物的共定位;在Zellweger成纤维细胞中验证。

2

PEX5介导ATM过氧化物酶体定位

探究PEX5是否通过结合ATM将其定位于过氧化物酶体。

免疫共沉淀检测ATM与PEX5相互作用;构建ATM R3047Q突变体破坏SRL序列,通过亚细胞分离和免疫荧光检测其定位变化。

3

过氧化物酶体ROS激活ATM并抑制mTORC1诱导自噬

验证内源性过氧化物酶体ROS能否激活ATM信号并诱导自噬。

用clofibrate处理FAO细胞,DHE和DCFDA检测ROS;Western blot检测ATM、AMPK、TSC2、mTORC1底物磷酸化及LC3-II、p62变化;在ATM或TSC2缺失细胞中验证依赖性。

4

ATM磷酸化PEX5 Ser141

验证ATM是否在ROS响应下磷酸化PEX5的Ser141位点。

使用泛磷酸化ATM底物抗体检测PEX5磷酸化;构建PEX5 S141A突变体;使用p-PEX5(S141)特异性抗体验证磷酸化依赖ATM。

5

ROS诱导PEX5 K209泛素化依赖S141磷酸化

确定PEX5泛素化位点及S141磷酸化对泛素化的调控。

使用HA-Ub和HA-Ub-K0区分单泛素化;构建PEX5 K209R及S141A突变体,免疫共沉淀检测泛素化;在ATM缺失细胞中验证。

6

泛素化PEX5招募p62至过氧化物酶体

验证p62是否通过识别泛素化PEX5介导过氧化物酶体自噬。

免疫共沉淀检测PEX5与p62结合;免疫荧光观察p62、PEX5、泛素与过氧化物酶体标志物共定位;使用K209R突变体验证p62结合减少。

7

ROS诱导pexophagy的体内外验证

证明ROS通过ATM-PEX5-p62通路诱导过氧化物酶体自噬。

使用GFP-LC3和DsRed-SKL或mRFP-EGFP-SKL报告系统,免疫荧光和电镜观察自噬体包裹过氧化物酶体;Western blot检测PEX1、PEX14降解;在ATM缺失、PEX5突变体回补细胞中验证。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
MEM培养基Life Technologies--
DMEM培养基Life Technologies--
F12培养基Life Technologies--
RPMI 1640培养基Life Technologies--
IMEM培养基Life Technologies--
胎牛血清Sigma--
L-谷氨酰胺Life technologies--
过氧化氢溶液Sigma323381-25ML
氯贝特SigmaC6643-1G
巴弗洛霉素A1Sigma--
KU-55933Tocris Bioscience--
磷酸化S6 (S235/236)抗体Cell Signaling Technology2211
S6抗体Cell Signaling Technology2217
磷酸化4E-BP1 (T37/46)抗体Cell Signaling Technology2855
4E-BP1抗体Cell Signaling Technology9644
磷酸化p70-S6K (T389)抗体Cell Signaling Technology9205
p70-S6K抗体Cell Signaling Technology9202
磷酸化AMPK (T172)抗体Cell Signaling Technology2531
AMPK抗体Cell Signaling Technology2532
磷酸化ULK1 (S757)抗体Cell Signaling Technology6888
磷酸化ULK1 (S317)抗体Cell Signaling Technology6887
ULK1抗体Cell Signaling Technology8054
lamin A/C抗体Cell Signaling Technology2032
VDAC抗体Cell Signaling Technology4866
LC3B抗体Cell Signaling Technology2775
HA抗体Cell Signaling Technology3724
TSC2抗体Cell Signaling Technology4308
磷酸化(S/T) ATM/ATR底物抗体Cell Signaling Technology2851
磷酸化ACC抗体Cell Signaling Technology3661L
ACC抗体Cell Signaling Technology3662S
磷酸化ATM S1981抗体Abcamab81292
过氧化氢酶抗体Abcamab1877
ACAA1抗体Abcamab84635
HA抗体Abcamab9110
PEX14抗体Abcamab109999
c-Myc (9E10)抗体Santa Cruz Biotechnologysc-40
EHHADH抗体Santa Cruz Biotechnologysc-99388
p62抗体Santa Cruz Biotechnologysc-28359
PEX1抗体Santa Cruz BiotechnologySC-21957
GAPDH抗体Santa Cruz BiotechnologySC-25778
ATM抗体Santa Cruz BiotechnologySC-23921
SDHA抗体Santa Cruz BiotechnologySC-27992
磷酸化PEX5 (S141)抗体Covance--
ATG16L抗体ABGENEAP1817b
FIP200抗体Proteintech10043-2-AP
Flag抗体SigmaF3165
PMP70抗体SigmaSAB4200181
ATM抗体GeneTexGTX70103
LDH抗体ChemiconAB1222
PEX5抗体ProteinTech12545-1-AP
β-整合素抗体BD Transduction Laboratories610468
泛素抗体SigmaU5379
PEX5抗体Santa CruzSC-23188
p62抗体ARP03-GP62-C
辣根过氧化物酶偶联二抗Santa Cruz Biotechnology--
Alexa fluor 488、546和633二抗Molecular Probes--
过氧化物酶体分离试剂盒Sigma--
蛋白酶KRoche--
磁珠A/GThermo Scientific--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific--
4-15%梯度胶Bio-Rad--
PVDF膜----
RiboPure RNA提取试剂盒Life technologies--
TaqMan Fast Universal试剂盒Life Technologies--
ABI Viia7实时定量PCR仪Applied Biosystems--
DCFDA探针----
二氢乙锭----
Synergy H1 Hybrid荧光酶标仪BioTek--
Deltavision反卷积显微镜GE--
Nikon共聚焦系统Nikon--
SoftWoRx软件GE--
ImageJ软件----
Imaris软件V.7.6.1Bitplane AG--
玻璃底培养皿MatTek Corporation--
Olympus BX40荧光显微镜Olympus--
QuikChange Lightning多位点定点突变试剂盒Agilent Technologies--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ATM过氧化物酶体定位及ROS激活
H2O2处理浓度(0.4 mM)和时间(1,3,6 h);细胞类型(HEK293, HepG2, 成纤维细胞);亚细胞分离方法;proteinase K浓度(0.1μg/ml)及Triton X-100浓度(1%)
阅读提示:Methods 'Cellular fractionation'、'Protease protection assay'及Figure 1图注
PEX5介导ATM定位
ATM R3047Q突变体转染;H2O2处理浓度(0.4 mM)和时间(1-3 h);免疫共沉淀抗体用量
阅读提示:Methods 'Plasmids and mutagenesis'、'Immunoprecipitation'及Figure 2图注
过氧化物酶体ROS激活ATM信号
Clofibrate浓度(0.25,0.5,1 mM)和处理时间(1,3,6 h);FAO细胞培养条件;ATM或TSC2缺失模型;bafilomycin A1浓度(文中未明确说明)
阅读提示:Methods 'Cell culture'、'ROS Measurement'及Figure 3图注
PEX5 S141磷酸化及K209泛素化
H2O2浓度(0.4 mM)和时间(1-6 h);PEX5突变体(S141A, K209R, S141E)转染;ATM抑制剂KU-55933预处理2小时(浓度文中未明确说明);HA-Ub-K0质粒
阅读提示:Methods 'Plasmids and mutagenesis'、'Immunoprecipitation'及Figure 4、5图注
p62结合及pexophagy诱导
H2O2浓度(0.4 mM)和时间(6 h);mRFP-EGFP-SKL或GFP-LC3/DsRed-SKL报告系统;bafilomycin A1处理(浓度文中未明确说明);PEX5 siRNA敲低效率;电镜样品处理
阅读提示:Methods 'Electron microscopy'、'Immunofluorescence microscopy'及Figure 6、7图注