AMPK调节Hippo通路活性以调控能量稳态

AMPK modulates Hippo pathway activity to regulate energy homeostasis.

作者信息Wenqi Wang, Zhen-Dong Xiao, Xu Li, Kathryn E Aziz, Boyi Gan, Randy L Johnson, Junjie Chen
PMID25751139
发布时间2015-04
DOI10.1038/ncb3113

实验完整度

高

包含细胞系、MEFs、小鼠肝脏及人癌组织多层级证据,并有磷酸化位点、基因转录等功能与机制验证

主要模型

HEK293A细胞 MCF10A细胞 AMPKα敲除MEF与野生型MEF C57/B6小鼠禁食-复食肝脏模型 人结肠癌与肝癌组织芯片

重点核对

HEK293A细胞葡萄糖饥饿及25 mM葡萄糖或2-DG处理的时间梯度 2-DG浓度梯度处理4小时及磷酸化tag凝胶检测YAP磷酸化 AMPKα敲除与野生型MEF中2-DG处理4小时后YAP S61磷酸化检测 小鼠禁食16小时后喂食或继续禁食5小时,每组n=3,检测肝脏YAP磷酸化与核定位 YAP-5SA细胞中GLUT3敲低后检测培养基酸化、2-NBDG摄取和乳酸生成

摘要

Hippo通路最初被发现是一个限制细胞增殖和凋亡的保守肿瘤抑制通路。然而,在器官大小控制和癌症预防背景下调控Hippo通路的上游信号在很大程度上仍不清楚。在此,我们报道葡萄糖,这一用于ATP生成的广泛能量来源,调控Hippo通路下游效应分子YAP。我们发现,在葡萄糖饥饿期间,Hippo通路和AMP活化蛋白激酶(AMPK)均被激活,导致YAP磷酸化并促进其失活。我们还鉴定出葡萄糖转运蛋白3(GLUT3)是YAP调控的、参与葡萄糖代谢的基因。总之,这些结果表明葡萄糖介导的能量稳态是调控Hippo通路的上游事件,并可能涉及YAP促进糖酵解的致癌功能,从而在组织维持和癌症预防中为葡萄糖代谢与Hippo通路之间提供了令人兴奋的联系。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在器官大小控制和癌症预防背景下,调控Hippo通路的上游信号是什么?
核心机制
能量应激激活AMPK和Hippo通路,AMPK直接磷酸化YAP多个位点(包括S61),Hippo通路经LATS磷酸化YAP S127,共同抑制YAP转录活性;YAP-TEAD转录上调GLUT3促进糖酵解。
主要证据
葡萄糖饥饿、2-DG和AICAR处理细胞中YAP磷酸化与定位改变;AMPK与YAP结合并磷酸化S61;AMPK敲除MEF中YAP活性升高;小鼠禁食-复食肝脏中YAP磷酸化与核转位变化;YAP-5SA细胞中GLUT3上调并增强糖酵解,GLUT3敲低部分逆转。
研究意义
揭示葡萄糖代谢与Hippo通路之间的交叉调控,提出YAP通过促进葡萄糖摄取和糖酵解发挥致癌功能,为组织维持和癌症预防提供新联系。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

葡萄糖状态调控YAP磷酸化与定位

验证葡萄糖代谢是否调控Hippo通路效应分子YAP

HEK293A细胞葡萄糖饥饿后给予25 mM葡萄糖、D-葡萄糖或2-DG,Western blot检测YAP S127磷酸化,免疫染色检测YAP亚细胞定位,并用2-DG浓度梯度处理。

2

能量应激释放激活YAP

验证能量应激解除是否激活YAP转录功能

HEK293A和MCF10A细胞经葡萄糖饥饿、AICAR(0.5 mM)或2-DG(25 mM)诱导能量应激16小时后释放1小时,检测YAP定位、磷酸化、与14-3-3和TEAD1的相互作用及下游基因转录。

3

小鼠禁食-复食模型验证YAP活性

验证能量稳态对YAP活性的生理相关性

C57/B6小鼠禁食16小时后喂食或继续禁食5小时,收集肝脏进行Western blot、免疫组化和qPCR检测YAP磷酸化、核定位及下游基因转录。

4

AMPK与YAP结合并磷酸化YAP

鉴定能量应激调控YAP的机制

葡萄糖饥饿HEK293A细胞中串联亲和纯化结合质谱鉴定YAP结合蛋白,pulldown验证AMPK与YAP结合,共表达AMPK活性截短体或失活突变体检测YAP磷酸化迁移。

5

鉴定AMPK磷酸化YAP的位点

确定AMPK直接磷酸化YAP的氨基酸位点

通过YAP-5SA及系列回复突变体共表达、体外激酶 assay 和质谱鉴定AMPK磷酸化位点,并用YAP S61磷酸化特异性抗体在野生型与AMPKα敲除MEF中验证。

6

AMPK与Hippo通路平行磷酸化YAP

区分AMPK与Hippo通路对YAP磷酸化的贡献

检测AMPK活性对YAP S127磷酸化、LATS1和MST1磷酸化的影响,并在LATS1/2或MST1/2双敲除细胞中检测2-DG诱导的YAP S127磷酸化。

7

能量应激经Rho GTPase和细胞骨架激活LATS

探究能量应激激活LATS激酶的机制

在能量应激释放细胞中预处理latrunculin B或Rho抑制剂C3,检测YAP S127磷酸化;用GST-Rhotekin-RBD pulldown检测Rho GTPase活性。

8

YAP调控GLUT3转录并促进糖酵解

验证YAP对葡萄糖代谢的功能影响及GLUT3的作用

比较YAP-5SA与对照细胞培养基酸化、葡萄糖摄取和乳酸生成,qPCR筛选葡萄糖代谢相关基因,检测GLUT3转录和蛋白,敲低GLUT3后检测糖酵解指标。

9

人癌组织中YAP与GLUT3表达相关性

评估YAP与GLUT3在人类癌症中的相关性

人结肠癌和肝癌组织芯片进行YAP和GLUT3免疫组化染色,分析表达相关性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗YAP抗体----
抗YAP抗体Santa Cruz Biotechnologysc101199
抗磷酸化YAP (S127)抗体Cell Signaling Technology4911S
抗α-tubulin抗体Sigma-AldrichT6199-200UL
抗flag (M2)抗体Sigma-AldrichF3165-5MG
抗Myc抗体Santa Cruz Biotechnologysc-40
抗GST抗体Santa Cruz Biotechnologysc-138
抗14-3-3θ抗体Santa Cruz Biotechnologysc-732
抗TEAD1抗体Millipore610922
抗磷酸化AKT1 (Ser473)抗体Cell Signaling Technology9271S
抗磷酸化ERK1/2抗体Cell Signaling Technology9100S
抗磷酸化ACC (Ser79)抗体Cell Signaling Technology3661S
抗ACC抗体Cell Signaling Technology3662S
抗磷酸化p70 S6K抗体Cell Signaling Technology9205S
抗磷酸化AMPKα抗体Cell Signaling Technology2531S
抗AMPKα抗体Cell Signaling Technology2532S
抗磷酸化LATS1抗体Cell Signaling Technology8654S
抗LATS1抗体Cell Signaling Technology9153S
抗LATS1抗体Cell Signaling Technology3477S
抗磷酸化MST1/MST2抗体Cell Signaling Technology3681S
抗MST1抗体Cell Signaling Technology3682S
抗GLUT3抗体Santa Cruz Biotechnologysc-30107
抗RhoA抗体Cytoskeleton, Inc.ARH03-A
GST-Rhotekin-RBD蛋白Cytoskeleton, Inc.RT01-A
抗YAP抗体Cell Signaling Technology4912S
抗GLUT3抗体SigmaHPA006539
链霉亲和素偶联磁珠Amersham--
S蛋白磁珠Novagen--
AminoLink Plus固定化与纯化试剂盒Pierce--
Dulbecco改良Eagle培养基----
胎牛血清----
聚乙烯亚胺----
聚brene----
嘌呤霉素----
2-NBDGInvitrogen--
Lactate Plus检测试纸Nova Biomedical--
Lactate Plus检测仪Nova Biomedical--
TRIZOL试剂Invitrogen--
ProtoScript M-MuLV Taq RT-PCR试剂盒New England Biolabs--
Power SYBR Green PCR预混液Applied Biosystems--
抗原修复液Vector Laboratories--
SignalStain Boost检测试剂Cell Signaling Technology--
SignalStain DAB显色剂Cell Signaling Technology--
4′,6-二脒基-2-苯基吲哚----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
葡萄糖饥饿与2-DG处理
HEK293A细胞葡萄糖饥饿时间梯度;葡萄糖或2-DG浓度25 mM;处理时间4小时或16小时
阅读提示:Figure 1A–1E图注及Methods细胞培养部分
AMPKα敲除MEF验证YAP S61磷酸化
野生型与AMPKα敲除MEF来源;2-DG 25 mM处理4小时;YAP免疫沉淀与S61磷酸化抗体
阅读提示:Figure 4E图注及Methods抗体部分
小鼠禁食-复食实验
5周龄C57/B6雌性小鼠;禁食16小时后喂食或继续禁食5小时;每组n=3;肝脏采集
阅读提示:Figure 2E–2G图注及Methods小鼠禁食实验部分
YAP-5SA细胞糖酵解检测
YAP-5SA稳定表达细胞;2-NBDG 50 μM处理1小时;乳酸检测方法;n=3生物学重复
阅读提示:Figure 6A–6Q图注及Methods葡萄糖摄取和乳酸生成assay部分
GLUT3敲低实验
GLUT3 shRNA序列TRCN0000043615和TRCN0000042880;敲低效率验证;糖酵解指标检测
阅读提示:Figure 6M–6Q图注及Methods构建与病毒部分