成纤维细胞GSK-3α通过RAF-MEK-ERK通路促进损伤心脏的纤维化

Fibroblast GSK-3α Promotes Fibrosis via RAF-MEK-ERK Pathway in the Injured Heart

作者信息Prachi Umbarkar, Sultan Tousif, Anand P Singh, Joshua C Anderson, Qinkun Zhang, Michelle D Tallquist, James Woodgett, Hind Lal
PMID36052698
期刊Circ Res
发布时间2022-09-16
DOI10.1161/CIRCRESAHA.122.321431

实验完整度

采用两种成纤维细胞特异性条件敲除小鼠模型进行体内TAC手术,结合体外细胞实验(MEF、NRVF)、激酶组学、免疫印迹、流式细胞术、ELISA及ERK抑制剂功能验证,涵盖体内外功能与机制验证。

主要模型

小鼠心脏成纤维细胞特异性GSK-3α敲除模型(Tcf21MCM和PostnMCM) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEF) 新生大鼠心室成纤维细胞(NRVF) 压力超负荷(TAC)小鼠模型

重点核对

成纤维细胞特异性GSK-3α敲除小鼠模型:Tcf21MCM和PostnMCM驱动Cre重组酶,他莫昔芬(TAM)饮食诱导 TAC手术诱导压力超负荷,剂量和手术时间文中未明确说明 TGF-β1处理浓度:10 ng/mL,处理时间分别为1小时、10分钟、24小时、48小时 ERK抑制剂U0126浓度:10 μM,处理24小时 统计方法:正态分布数据用Student t检验或ANOVA,非正态数据用Mann-Whitney或Kruskal-Wallis检验,p<0.05为显著

摘要

背景:心力衰竭(HF)是全球死亡率、发病率和医疗保健支出的主要原因。大量研究表明糖原合酶激酶-3(GSK-3)是心血管疾病有前景的治疗靶点。GSK-3亚型在心脏中似乎发挥重叠、独特甚至相反的功能。先前我们已经证明,在GSK-3的两种亚型中,心脏成纤维细胞(CF)GSK-3β在缺血性心脏中作为心肌纤维化的负调节因子。然而,CF-GSK-3α在心脏病发病机制中的作用完全未知。方法:为了确定CF-GSK-3α在心肌纤维化和心力衰竭中的作用,使用他莫昔芬诱导的Tcf21或Postn启动子驱动的Cre重组酶从成纤维细胞或肌成纤维细胞中删除GSK-3α。对对照和GSK-3α KO小鼠进行心脏损伤,并评估心脏参数。进行成纤维细胞激酶组图谱分析以阐明分子机制,随后进行体内和体外分析。结果:成纤维细胞特异性GSK-3α缺失限制了纤维化重塑并保留了受损心脏的功能。我们观察到TGFβ1处理的KO成纤维细胞中细胞迁移、胶原凝胶收缩、α-SMA蛋白水平和ECM基因表达降低,表明GSK-3α是肌成纤维细胞转化所必需的。令人惊讶的是,GSK-3α缺失不影响SMAD3激活,表明GSK-3α的促纤维化作用不依赖SMAD3。分子研究证实GSK-3α-KO CF中ERK信号传导减少。相反,腺病毒介导的组成型活性形式的GSK-3α(Ad-GSK-3αS21A)在成纤维细胞中的表达增加了ERK激活和纤维化蛋白的表达。重要的是,这种效应被ERK抑制所消除。结论:GSK-3α介导的MEK-ERK激活是损伤心脏中关键的促纤维化信号回路,独立于经典的TGF-β1-SMAD3通路。因此,抑制GSK-3α-MEK-ERK信号回路的策略可以预防患病心脏中的不良纤维化。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
心脏成纤维细胞中的GSK-3α在心肌纤维化和心力衰竭中扮演什么角色?其分子机制是什么?
核心机制
GSK-3α通过激活RAF-MEK-ERK信号通路促进成纤维细胞向肌成纤维细胞转化和细胞外基质产生,该作用独立于TGF-β1-SMAD3通路,并可能通过IL-11介导。
主要证据
成纤维细胞特异性敲除GSK-3α减轻TAC诱导的心脏纤维化并改善心功能;体外TGF-β1刺激的KO MEF中α-SMA、迁移、收缩和ECM基因表达降低,而SMAD3激活不受影响;激酶组学显示RAF家族活性降低,ERK磷酸化减少;GSK-3αS21A过表达增强ERK激活和纤维化蛋白表达,ERK抑制剂可阻断该效应。
研究意义
该研究首次证明CF-GSK-3α通过GSK-3α-MEK-ERK-IL-11信号回路促进心脏纤维化,提示选择性抑制GSK-3α可能是对抗心肌纤维化和心力衰竭的新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证GSK-3α在心脏成纤维细胞中的表达和活性

检测压力超负荷下心脏成纤维细胞中GSK-3α的活性变化。

在压力超负荷早期检测GSK-3α活性,发现其活性增加(补充图S1),并构建成纤维细胞特异性敲除小鼠模型,通过Western blot验证敲除效率。

2

成纤维细胞特异性敲除GSK-3α对TAC诱导的心脏重塑和功能的影响

评估成纤维细胞中GSK-3α缺失对压力超负荷心脏纤维化、肥厚和心功能的影响。

对照和GSK-3αFKO小鼠经TAC手术,通过超声心动图、组织学染色、qPCR和免疫荧光评估心脏功能、纤维化、肥大和分子标志物。

3

肌成纤维细胞特异性敲除GSK-3α对心脏损伤的影响

评估肌成纤维细胞中GSK-3α缺失对心脏重塑和功能的影响,以区分细胞类型特异性作用。

使用PostnMCM小鼠构建GSK-3αMFKO,TAM饮食1周后TAC手术,后续检测与FKO相似。

4

体外验证GSK-3α对肌成纤维细胞转化的作用

确定GSK-3α在TGF-β1诱导的肌成纤维细胞转化中的作用。

使用WT和GSK-3α KO MEFs,经TGF-β1处理后,检测α-SMA蛋白水平、伤口愈合实验、胶原凝胶收缩和ECM基因表达。

5

验证GSK-3α对TGF-β1-SMAD3信号的影响

确定GSK-3α是否通过经典的TGF-β1-SMAD3通路介导促纤维化作用。

在WT和KO MEF、GSK-3α缺失的CFs及GSK-3α过表达的NRVF中,TGF-β1处理后检测SMAD3磷酸化和核转位。

6

激酶组学分析GSK-3α调控的ERK信号网络

通过无偏激酶组学图谱发现GSK-3α调控的关键激酶通路。

TAC后4周分离CTL和KO CF,进行激酶组分析,发现RAF家族活性降低,并通过网络分析生成ERK中心网络。

7

验证GSK-3α-ERK通路在体内和体外的作用

证实GSK-3α通过激活ERK信号促进纤维化,并证明其因果关系。

在体内检测KO CF中pERK水平;在体外使用TGF-β1处理KO MEF和CF;过表达GSK-3αS21A检测MEK/ERK激活;使用ERK抑制剂U0126检测纤维化蛋白分泌。

8

评估IL-11在GSK-3α-ERK信号中的作用

探究IL-11是否参与GSK-3α介导的纤维化作用。

在KO CF和MEF中检测IL-11表达,并检测IL-11诱导的ERK激活,同时用ERK抑制剂阻断纤维化蛋白产生。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他莫昔芬饮食----
PostnMCM小鼠Jackson laboratoriesstock #029645
转化生长因子β1Sigma-AldrichT7039
重组小鼠IL-11R&D Systems418-ML-005
U0126(MEK抑制剂)LC LaboratoriesU-6770
Immobilon-P PVDF膜EMD MilliporeIPVH00010
细胞裂解液Cell Signaling Technology9803S
蛋白酶抑制剂混合物Sigma-AldrichP8340
磷酸酶抑制剂混合物Sigma-AldrichP0044
NE-PER核浆蛋白提取试剂Pierce78833
Bio-Rad蛋白质定量染料Bio-Rad5000006
Odyssey封闭缓冲液LI-COR Biosciences927-40000
p-ERK1/2抗体Cell Signaling Technology4370S
ERK1/2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-93
pSMAD3抗体Abcamab52903
总SMAD3抗体Abcamab40854
Lamin A/C抗体Cell Signaling Technology2032
GSK-3α/β抗体Cell Signaling Technology5676
GSK-3α抗体Cell Signaling Technology4337
GAPDH抗体Fitzgerald10R-G109a
β-actin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-4778
β-tubulin抗体Proteintech66240-1-Ig
Phospho-MEK1/2抗体Cell Signaling Technology9154
总MEK1/2抗体Cell Signaling Technology9122
α-SMA抗体Sigma-AldrichA5228
p-GSK3β抗体Cell Signaling Technology9336
总GSK3β抗体Cell Signaling Technology9315
p-糖原合酶抗体Cell Signaling Technology3891
总糖原合酶抗体Cell Signaling Technology3893
Phospho-p38 MAPK抗体Cell Signaling Technology9211
总p38抗体Santa Cruz BiotechnologySC-535
p-ERK1/2流式抗体eBioscience53-9109-42
MEFSK4抗体Miltenyibiotec130-120-802
CD31抗体BD Pharmingen563356
CD45抗体BD Pharmingen557659
纯化的抗小鼠CD16/CD32抗体BD Pharmingen553141
IL-11抗体(PE)Santa Cruz BiotechnologySC-133063 PE
p-GSK-3α (Ser21)抗体Cell Signaling Technology9316
α-Actinin抗体Sigma-AldrichSAB4503474
驴抗兔Alexa Fluor 488二抗InvitrogenA-21206
山羊抗小鼠Alexa Fluor 647二抗InvitrogenA-21236
IRDye 680LT山羊抗兔IgG二抗LI-COR Biosciences926-68021
IRDye 800CW山羊抗小鼠IgG二抗LI-COR Biosciences925-32210
Ad-LacZ腺病毒----
Ad-GSK3α-S21A腺病毒----
Ad-GSK3α腺病毒----
Masson三色染色试剂盒Sigma-AldrichHT15
RNeasy Mini试剂盒Qiagen74104
iScript cDNA合成试剂盒Bio-rad170-8891
TaqMan基因表达预混液Applied Biosystems4369016
ProLong Gold抗淬灭封片剂(含DAPI)InvitrogenP36941
抗原修复液Vector Lab IncH-3300
BrdU标记和检测试剂盒Roche11296736001
BrdU(5-溴脱氧尿苷)Sigma-AldrichB5002
大鼠I型胶原α1 ELISA试剂盒(比色法)Novus biologicalsNBP2-75840
大鼠IL-11 ELISA试剂盒(比色法)Novus biologicalsNBP3-06795
MidiMACS™分离器和起始试剂盒Miltenyi Biotec130-042-301
小鼠CD31微珠Miltenyi Biotec130-097-418
小鼠CD45微珠Miltenyi Biotec130-052-301

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型构建
小鼠品系、背景、性别、年龄、TAM饮食浓度和持续时间、TAC手术具体步骤(如麻醉、结扎位置、时间点)
阅读提示:Methods: Mice, Figure 1A和3A实验设计
心脏功能与形态学评估
超声心动图参数采集时间点(BL、4周、8周)、具体切面、麻醉方式;组织学染色(HE、Masson)的切片厚度、染色时间、纤维化定量方法;CSA测量方法、α-SMA阳性细胞计数标准
阅读提示:Methods: Statistical analysis, Figure legends 1-4
细胞实验
MEF分离和培养方法、TGF-β1处理浓度和时间(10 ng/mL,1h-48h)、IL-11处理浓度和时间(10 ng/mL,10min)、Ad-Cre和Ad-GSK-3αS21A的感染复数(MOI)和转染时间、U0126处理浓度和时间(10 μM,24h)
阅读提示:Methods: Statistical analysis, Figure legends 5-8
分子生物学检测
Western blot抗体稀释比例(在Major Resources Table中列出)、细胞裂解液配方、qPCR引物/探针Assay ID、RNA提取方法、逆转录和PCR循环参数、激酶组学平台和实验参数
阅读提示:Methods: 补充材料方法,Major Resources Table