验证GSK-3α在心脏成纤维细胞中的表达和活性
检测压力超负荷下心脏成纤维细胞中GSK-3α的活性变化。
在压力超负荷早期检测GSK-3α活性,发现其活性增加(补充图S1),并构建成纤维细胞特异性敲除小鼠模型,通过Western blot验证敲除效率。
Fibroblast GSK-3α Promotes Fibrosis via RAF-MEK-ERK Pathway in the Injured Heart
采用两种成纤维细胞特异性条件敲除小鼠模型进行体内TAC手术,结合体外细胞实验(MEF、NRVF)、激酶组学、免疫印迹、流式细胞术、ELISA及ERK抑制剂功能验证,涵盖体内外功能与机制验证。
小鼠心脏成纤维细胞特异性GSK-3α敲除模型(Tcf21MCM和PostnMCM) 小鼠胚胎成纤维细胞(MEF) 新生大鼠心室成纤维细胞(NRVF) 压力超负荷(TAC)小鼠模型
成纤维细胞特异性GSK-3α敲除小鼠模型:Tcf21MCM和PostnMCM驱动Cre重组酶,他莫昔芬(TAM)饮食诱导 TAC手术诱导压力超负荷,剂量和手术时间文中未明确说明 TGF-β1处理浓度:10 ng/mL,处理时间分别为1小时、10分钟、24小时、48小时 ERK抑制剂U0126浓度:10 μM,处理24小时 统计方法:正态分布数据用Student t检验或ANOVA,非正态数据用Mann-Whitney或Kruskal-Wallis检验,p<0.05为显著
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测压力超负荷下心脏成纤维细胞中GSK-3α的活性变化。
在压力超负荷早期检测GSK-3α活性,发现其活性增加(补充图S1),并构建成纤维细胞特异性敲除小鼠模型,通过Western blot验证敲除效率。
评估成纤维细胞中GSK-3α缺失对压力超负荷心脏纤维化、肥厚和心功能的影响。
对照和GSK-3αFKO小鼠经TAC手术,通过超声心动图、组织学染色、qPCR和免疫荧光评估心脏功能、纤维化、肥大和分子标志物。
评估肌成纤维细胞中GSK-3α缺失对心脏重塑和功能的影响,以区分细胞类型特异性作用。
使用PostnMCM小鼠构建GSK-3αMFKO,TAM饮食1周后TAC手术,后续检测与FKO相似。
确定GSK-3α在TGF-β1诱导的肌成纤维细胞转化中的作用。
使用WT和GSK-3α KO MEFs,经TGF-β1处理后,检测α-SMA蛋白水平、伤口愈合实验、胶原凝胶收缩和ECM基因表达。
确定GSK-3α是否通过经典的TGF-β1-SMAD3通路介导促纤维化作用。
在WT和KO MEF、GSK-3α缺失的CFs及GSK-3α过表达的NRVF中,TGF-β1处理后检测SMAD3磷酸化和核转位。
通过无偏激酶组学图谱发现GSK-3α调控的关键激酶通路。
TAC后4周分离CTL和KO CF,进行激酶组分析,发现RAF家族活性降低,并通过网络分析生成ERK中心网络。
证实GSK-3α通过激活ERK信号促进纤维化,并证明其因果关系。
在体内检测KO CF中pERK水平;在体外使用TGF-β1处理KO MEF和CF;过表达GSK-3αS21A检测MEK/ERK激活;使用ERK抑制剂U0126检测纤维化蛋白分泌。
探究IL-11是否参与GSK-3α介导的纤维化作用。
在KO CF和MEF中检测IL-11表达,并检测IL-11诱导的ERK激活,同时用ERK抑制剂阻断纤维化蛋白产生。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 他莫昔芬饮食 | -- | -- |
| PostnMCM小鼠 | Jackson laboratories | stock #029645 | |
| 细胞培养与处理 | 转化生长因子β1 | Sigma-Aldrich | T7039 |
| 重组小鼠IL-11 | R&D Systems | 418-ML-005 | |
| U0126(MEK抑制剂) | LC Laboratories | U-6770 | |
| 蛋白质分析 | Immobilon-P PVDF膜 | EMD Millipore | IPVH00010 |
| 细胞裂解液 | Cell Signaling Technology | 9803S | |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Sigma-Aldrich | P8340 | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Sigma-Aldrich | P0044 | |
| NE-PER核浆蛋白提取试剂 | Pierce | 78833 | |
| Bio-Rad蛋白质定量染料 | Bio-Rad | 5000006 | |
| Odyssey封闭缓冲液 | LI-COR Biosciences | 927-40000 | |
| 抗体 | p-ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370S |
| ERK1/2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-93 | |
| pSMAD3抗体 | Abcam | ab52903 | |
| 总SMAD3抗体 | Abcam | ab40854 | |
| Lamin A/C抗体 | Cell Signaling Technology | 2032 | |
| GSK-3α/β抗体 | Cell Signaling Technology | 5676 | |
| GSK-3α抗体 | Cell Signaling Technology | 4337 | |
| GAPDH抗体 | Fitzgerald | 10R-G109a | |
| β-actin抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-4778 | |
| β-tubulin抗体 | Proteintech | 66240-1-Ig | |
| Phospho-MEK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9154 | |
| 总MEK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 9122 | |
| α-SMA抗体 | Sigma-Aldrich | A5228 | |
| p-GSK3β抗体 | Cell Signaling Technology | 9336 | |
| 总GSK3β抗体 | Cell Signaling Technology | 9315 | |
| p-糖原合酶抗体 | Cell Signaling Technology | 3891 | |
| 总糖原合酶抗体 | Cell Signaling Technology | 3893 | |
| Phospho-p38 MAPK抗体 | Cell Signaling Technology | 9211 | |
| 总p38抗体 | Santa Cruz Biotechnology | SC-535 | |
| p-ERK1/2流式抗体 | eBioscience | 53-9109-42 | |
| MEFSK4抗体 | Miltenyibiotec | 130-120-802 | |
| CD31抗体 | BD Pharmingen | 563356 | |
| CD45抗体 | BD Pharmingen | 557659 | |
| 纯化的抗小鼠CD16/CD32抗体 | BD Pharmingen | 553141 | |
| IL-11抗体(PE) | Santa Cruz Biotechnology | SC-133063 PE | |
| p-GSK-3α (Ser21)抗体 | Cell Signaling Technology | 9316 | |
| α-Actinin抗体 | Sigma-Aldrich | SAB4503474 | |
| 驴抗兔Alexa Fluor 488二抗 | Invitrogen | A-21206 | |
| 山羊抗小鼠Alexa Fluor 647二抗 | Invitrogen | A-21236 | |
| IRDye 680LT山羊抗兔IgG二抗 | LI-COR Biosciences | 926-68021 | |
| IRDye 800CW山羊抗小鼠IgG二抗 | LI-COR Biosciences | 925-32210 | |
| 细胞转染 | Ad-LacZ腺病毒 | -- | -- |
| Ad-GSK3α-S21A腺病毒 | -- | -- | |
| Ad-GSK3α腺病毒 | -- | -- | |
| 组织学 | Masson三色染色试剂盒 | Sigma-Aldrich | HT15 |
| RNA提取与qPCR | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | 74104 |
| iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-rad | 170-8891 | |
| TaqMan基因表达预混液 | Applied Biosystems | 4369016 | |
| 免疫荧光 | ProLong Gold抗淬灭封片剂(含DAPI) | Invitrogen | P36941 |
| 组织学 | 抗原修复液 | Vector Lab Inc | H-3300 |
| 细胞增殖检测 | BrdU标记和检测试剂盒 | Roche | 11296736001 |
| BrdU(5-溴脱氧尿苷) | Sigma-Aldrich | B5002 | |
| ELISA | 大鼠I型胶原α1 ELISA试剂盒(比色法) | Novus biologicals | NBP2-75840 |
| 大鼠IL-11 ELISA试剂盒(比色法) | Novus biologicals | NBP3-06795 | |
| 细胞分离 | MidiMACS™分离器和起始试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-042-301 |
| 小鼠CD31微珠 | Miltenyi Biotec | 130-097-418 | |
| 小鼠CD45微珠 | Miltenyi Biotec | 130-052-301 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建 | 小鼠品系、背景、性别、年龄、TAM饮食浓度和持续时间、TAC手术具体步骤(如麻醉、结扎位置、时间点) 阅读提示:Methods: Mice, Figure 1A和3A实验设计 |
| 心脏功能与形态学评估 | 超声心动图参数采集时间点(BL、4周、8周)、具体切面、麻醉方式;组织学染色(HE、Masson)的切片厚度、染色时间、纤维化定量方法;CSA测量方法、α-SMA阳性细胞计数标准 阅读提示:Methods: Statistical analysis, Figure legends 1-4 |
| 细胞实验 | MEF分离和培养方法、TGF-β1处理浓度和时间(10 ng/mL,1h-48h)、IL-11处理浓度和时间(10 ng/mL,10min)、Ad-Cre和Ad-GSK-3αS21A的感染复数(MOI)和转染时间、U0126处理浓度和时间(10 μM,24h) 阅读提示:Methods: Statistical analysis, Figure legends 5-8 |
| 分子生物学检测 | Western blot抗体稀释比例(在Major Resources Table中列出)、细胞裂解液配方、qPCR引物/探针Assay ID、RNA提取方法、逆转录和PCR循环参数、激酶组学平台和实验参数 阅读提示:Methods: 补充材料方法,Major Resources Table |