临床与术后组织FAP表达分析
评估既往手术对翻修手术的影响及术后手术部位FAP相关基质重塑的证据
回顾性分析207例接受TLIF患者的临床资料;对10例腰椎减压术后患者行⁶⁸Ga-FAPI PET/CT成像;建立小鼠椎板切除模型,进行Masson染色、FAP免疫组化、Western blot、qPCR和流式细胞分析,并比较WT与FAP缺陷小鼠的胶原沉积
Bispecific antibody engineered extracellular vesicles redirect T cells to prevent postoperative epidural fibrosis.
包含患者PET/CT影像、小鼠椎板切除模型、体外细胞杀伤、单细胞RNA测序、体内FAP缺陷及T细胞清除验证
小鼠椎板切除模型BALB/c小鼠 FAP缺陷小鼠(FapLacZ/LacZ,BALB/c背景) K562-FAP细胞及K562细胞 NIH/3T3成纤维细胞 椎板切除术后患者临床样本与PET/CT影像
BsAb EVs每日尾静脉给药40 nmol,连续5天,检测手术部位FAP⁺成纤维细胞丰度与CD25⁺活化T细胞 体外杀伤实验:效应细胞与靶细胞比例10:1或1:1,共培养24小时,荧光素酶法检测特异性裂解 体内CD3⁺T细胞清除后BsAb EVs介导的FAP⁺成纤维细胞减少消失,证实T细胞依赖机制 FAP缺陷小鼠中BsAb EVs在椎板切除部位的富集消失,证实FAP依赖性定位 单细胞RNA测序:WT EV组与BsAb EV组各3只小鼠,术后第7天取材
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估既往手术对翻修手术的影响及术后手术部位FAP相关基质重塑的证据
回顾性分析207例接受TLIF患者的临床资料;对10例腰椎减压术后患者行⁶⁸Ga-FAPI PET/CT成像;建立小鼠椎板切除模型,进行Masson染色、FAP免疫组化、Western blot、qPCR和流式细胞分析,并比较WT与FAP缺陷小鼠的胶原沉积
探究巨噬细胞来源信号对成纤维细胞FAP上调的作用
检测术后第7天瘢痕组织SPP1⁺巨噬细胞;用IFN-γ或IL-4极化的M1/M2巨噬细胞条件培养基处理原代成纤维细胞;TGF-β1中和、SPP1 siRNA敲低;梯度TGF-β1刺激成纤维细胞;并用FAP抑制剂Ac-Gly-BoroPro进行体外与体内干预
构建并验证可表面展示FAP×CD3双特异性抗体的细胞外囊泡平台
将anti-FAP与anti-CD3 scFv串联并融合CD8铰链和跨膜域及GFP标签,经慢病毒转导NIH/3T3细胞并FACS分选,收集纯化EV;进行NTA、zeta电位、透射电镜、Western blot、脂质组学和流式表面染色
验证BsAb EVs能否重定向T细胞杀伤FAP阳性靶细胞
以FAP过表达K562细胞和TGF-β1处理的NIH/3T3细胞为靶细胞,原代小鼠T细胞为效应细胞,进行荧光素酶杀伤实验,并检测T细胞脱颗粒及Granzyme B、TNF-α、IFN-γ产生
验证BsAb EVs在椎板切除部位的FAP依赖定位及T细胞依赖的FAP⁺成纤维细胞清除
DiR/DID标记EV进行体内示踪;每日尾静脉给予BsAb EVs;流式检测瘢痕组织成纤维细胞与CD3⁺CD25⁺活化T细胞;抗CD3ε抗体清除T细胞后复测;免疫组化及免疫荧光检测CD3与FAP共定位
解析BsAb EV治疗对术后部位细胞组成、成纤维细胞亚群及免疫微环境的影响
对BsAb EV组与WT EV组术后第7天硬膜外组织进行scRNA-seq,进行无偏聚类、成纤维细胞亚群分析、CellChat通讯分析、Monocle2拟时序分析及通路富集
评估BsAb EVs减轻硬膜外纤维化及全身安全性
术后4周内每周行⁶⁸Ga-FAPI PET/CT;术后第56天行MRI、Masson染色和透射电镜;检测血清肝肾功能、血常规、血清细胞因子及主要脏器组织学
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖Dulbecco改良Eagle培养基 | Hyclone | -- |
| 胎牛血清 | Hyclone | -- | |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| FAP药理抑制 | Ac-Gly-BoroPro(FAP抑制剂) | MedChemExpress | HY-101801 |
| 体内T细胞清除 | 抗CD3ε单克隆抗体(克隆145-2C11) | Bio × Cell | -- |
| 仓鼠IgG同型对照抗体 | Bio × Cell | -- | |
| 流式分析 | CD31抗体(克隆W18222B) | BioLegend | 160203 |
| CD45抗体(克隆TEK4) | BioLegend | 103105 | |
| Tie2抗体(克隆30-F11) | BioLegend | 124007 | |
| Ter119抗体(克隆TER-119) | BioLegend | 116207 | |
| EpCAM抗体(克隆G8.8) | BioLegend | 118205 | |
| CD3抗体(克隆17A2) | BioLegend | 100220 | |
| CD69抗体(克隆H1.2F3) | BioLegend | 104511 | |
| CD25抗体(克隆3C7) | BioLegend | 101918 | |
| Ly6G抗体(克隆1A8) | BioLegend | 127607 1 | |
| CD11b抗体(克隆M1/70) | BioLegend | 101205 | |
| DAPI | Biolegend | 422801 | |
| T细胞分离与激活 | Stemcell阴选T细胞分离试剂盒 | Stemcell | 19853 |
| T细胞激活 | Dynabeads小鼠T细胞激活剂CD3/CD28 | Gibco | 11452D |
| 荧光素酶实验 | D-荧光素 | Gold-Bio | -- |
| 胶原凝胶收缩实验 | I型胶原溶液 | Corning | 354249 |
| EV蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| EV表征 | ZetaView PMX120-Z纳米颗粒跟踪分析仪 | Particle Metrix | -- |
| EV制备 | Avanti J-26S XPI高性能离心机 | Beckman Coulter | -- |
| bulk RNA测序 | RNeasy RNA提取试剂盒 | Qiagen | 75144 |
| DNase I | Thermo Fisher Scientific | AM2222 | |
| 组织解离 | sCelLiveTM组织解离液 | Singleron | -- |
| 单细胞建库 | GEXSCOPE®单细胞RNA文库构建试剂盒 | Singleron | -- |
| 中性粒细胞分离 | Histopaque 1077/1119密度梯度分离液 | Sigma-Aldrich | -- |
| 活性氧检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| Western blot | FAP抗体 | Abcam | ab207178 |
| GFP抗体 | Abcam | ab290 | |
| Annexin A1抗体 | Huabio | ER1803-70 | |
| Annexin V抗体 | Huabio | ET1702-62 | |
| β-tubulin抗体 | Proteintech | 10094-1-AP | |
| Calnexin抗体 | Proteintech | 10427-2-AP | |
| TSG101抗体 | Proteintech | 28283-1-AP | |
| CD63抗体 | Proteintech | 25682-1-AP | |
| 实时定量PCR | Trizol试剂 | Takara | -- |
| High-Capacity cDNA逆转录试剂盒 | Takara | -- | |
| 细胞因子检测 | Luminex小鼠XL细胞因子检测试剂盒(10重)FCSTM20-10 | R&D Systems | FCSTM20-10 |
| Bio-Plex 200系统 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫组化 | α-SMA抗体 | Abcam | ab5694 |
| ABC试剂 | Vector Laboratories | -- | |
| Masson染色 | Masson三色染色试剂盒 | Thermo Scientific | 87019 |
| 免疫荧光 | CD3抗体 | Proteintech | 17617-1-AP |
| 透射电镜 | JEM-1400透射电子显微镜 | JEOL | -- |
| MRI | μMR 9.4 T磁共振扫描仪 | United Imaging Life Science Instrument | -- |
| 荧光素酶检测 | TECAN Spark酶标仪 | TECAN | -- |
| 流式分析 | CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠椎板切除模型建立 | 麻醉剂1.25%三溴乙醇30 μL/g腹腔注射;手术节段T12-L2;约2 cm背部纵行切口;小鼠品系BALB/c,5–7周龄;FAP缺陷小鼠为FapLacZ/LacZ BALB/c背景 阅读提示:Methods中“Laminectomy mouse model”与“Cell culture and mice”小节 |
| FAP抑制剂体内给药 | Ac-Gly-BoroPro剂量0.5 mg/kg腹腔注射,术后第0–4天每日一次;对照为等体积无菌PBS 阅读提示:Methods中“FAP inhibitor (FAPi) treatment”小节及Fig. 2I图注 |
| BsAb EVs体内给药与T细胞清除 | BsAb EVs 40 nmol每日尾静脉给药连续5天;anti-CD3ε 10 μg/只于术后第−4、−2、0天腹腔注射;对照为仓鼠IgG同型对照 阅读提示:Results中“FAP × CD3 BsAb EVs redirect T cells...”段落及Methods中“In vivo T cell depletion”小节 |
| 体外杀伤实验 | 效靶比10:1或1:1;靶细胞1×10⁴/孔;共培养24小时;TGF-β1诱导NIH/3T3为10 ng/mL 48小时;技术三重复 阅读提示:Methods中“Luciferase assays”小节及Fig. 4图注 |
| 单细胞RNA测序样本与分组 | BsAb EV组与WT EV组各3只小鼠,术后第7天取材;共93439个高质量细胞;测序平台Illumina Novaseq 6000 阅读提示:Methods中“Single-cell RNA sequencing”小节及Fig. 5图注 |
| EV制备与表征 | UVB 300 J/m²照射1小时;500×g 10分钟、0.45 μm过滤、14,000×g 60分钟离心;NTA使用ZetaView PMX120-Z;每颗粒BsAb拷贝数基于三批独立EV 阅读提示:Methods中“Generation and isolation of EVs”与“Quantification of BsAb copy number per EV particle”小节及Fig. 3图注 |
| 体内影像学评估 | ⁶⁸Ga-FAPI剂量7.40–9.25 MBq尾静脉注射;PET/CT术后4周内每周一次;MRI于术后2个月在9.4 T扫描仪进行,范围T11-L4 阅读提示:Methods中“Micro-PET/CT”与“Magnetic resonance imaging”小节及Fig. 7图注 |
| 安全性评估 | 肝肾功能与血常规检测时间点为术后第7、14、27、56天;血清细胞因子检测时间点为术后第1、4、7、14天;每组n=3 阅读提示:Results中“BsAb EVs exhibit a favorable systemic safety profile”段落及Supplementary Fig. 14 |