双特异性抗体工程化细胞外囊泡重定向T细胞以预防术后硬膜外纤维化

Bispecific antibody engineered extracellular vesicles redirect T cells to prevent postoperative epidural fibrosis.

作者信息Shanwei Ye, Qian Xu, Yong Xu, Hui Lu, Zhenfeng Liu, Jianfeng Guo, Yichuan Li, Wei Wang, Jun Ran, Xiaohua Zhu, Dongling Zhu, Wei Wu, Zechuan Yang, Shiqi Gu, Feng Li, Lugui Qiu, Ellen Puré, Vijay G Bhoj, Liang Huang, Wei Xiong, Zheng Zhang
PMID42364978
发布时间2026-06-27
DOI10.1038/s41467-026-74883-3

实验完整度

高

包含患者PET/CT影像、小鼠椎板切除模型、体外细胞杀伤、单细胞RNA测序、体内FAP缺陷及T细胞清除验证

主要模型

小鼠椎板切除模型BALB/c小鼠 FAP缺陷小鼠(FapLacZ/LacZ,BALB/c背景) K562-FAP细胞及K562细胞 NIH/3T3成纤维细胞 椎板切除术后患者临床样本与PET/CT影像

重点核对

BsAb EVs每日尾静脉给药40 nmol,连续5天,检测手术部位FAP⁺成纤维细胞丰度与CD25⁺活化T细胞 体外杀伤实验:效应细胞与靶细胞比例10:1或1:1,共培养24小时,荧光素酶法检测特异性裂解 体内CD3⁺T细胞清除后BsAb EVs介导的FAP⁺成纤维细胞减少消失,证实T细胞依赖机制 FAP缺陷小鼠中BsAb EVs在椎板切除部位的富集消失,证实FAP依赖性定位 单细胞RNA测序:WT EV组与BsAb EV组各3只小鼠,术后第7天取材

摘要

硬膜外纤维化(EF)是脊柱手术后常见且致残的并发症,会妨碍恢复,但目前缺乏有效的靶向治疗。本研究观察到椎板切除术后患者手术部位FAP⁺成纤维细胞富集。为靶向该亚群,作者开发了双特异性抗体修饰的细胞外囊泡(BsAb EVs),可将内源性T细胞重定向以原位清除FAP⁺成纤维细胞。在临床前模型中,BsAb EVs选择性清除致病性成纤维细胞,减少纤维化胶原蓄积,并在所测试条件下预防术后硬膜外纤维化的发生,且未检测到全身毒性。单细胞RNA测序显示,FAP⁺成纤维细胞是与α-SMA⁺肌成纤维细胞不同的转录上独特的亚群,其特征为细胞外基质重塑增强和TGF-β产生增加。总之,这些发现突出了EF发病机制中的关键基质亚群,并将BsAb EVs定位为一种有前景的免疫治疗策略,用于靶向纤维化和组织重塑疾病中的致病性基质细胞。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
术后硬膜外纤维化中驱动粘连形成的特定成纤维细胞亚群及其与免疫细胞的相互作用是什么,能否通过靶向该亚群实现治疗。
核心机制
FAP⁺成纤维细胞是与α-SMA⁺肌成纤维细胞转录上不同的致病性基质亚群,与ECM重塑及TGF-β程序相关;FAP×CD3 BsAb EVs通过同时靶向FAP和CD3,将内源性T细胞重定向至FAP⁺成纤维细胞并将其清除。
主要证据
患者术后⁶⁸Ga-FAPI PET/CT显示手术路径示踪剂摄取;小鼠椎板切除模型中FAP表达于术后第7、14天升高;FAP缺陷小鼠纤维化减轻;BsAb EVs在体外介导T细胞依赖的FAP阳性靶细胞杀伤,在小鼠体内减少FAP⁺成纤维细胞、改善MRI与Masson染色所示纤维化;单细胞RNA测序显示FAP⁺成纤维细胞亚群被选择性清除。
研究意义
作者提出FAP⁺成纤维细胞是EF发病机制中的关键基质亚群,并将BsAb EVs定位为靶向纤维化和组织重塑疾病中致病性基质细胞的有前景免疫治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床与术后组织FAP表达分析

评估既往手术对翻修手术的影响及术后手术部位FAP相关基质重塑的证据

回顾性分析207例接受TLIF患者的临床资料;对10例腰椎减压术后患者行⁶⁸Ga-FAPI PET/CT成像;建立小鼠椎板切除模型,进行Masson染色、FAP免疫组化、Western blot、qPCR和流式细胞分析,并比较WT与FAP缺陷小鼠的胶原沉积

2

SPP1⁺巨噬细胞–TGF-β1–FAP⁺成纤维细胞轴验证

探究巨噬细胞来源信号对成纤维细胞FAP上调的作用

检测术后第7天瘢痕组织SPP1⁺巨噬细胞;用IFN-γ或IL-4极化的M1/M2巨噬细胞条件培养基处理原代成纤维细胞;TGF-β1中和、SPP1 siRNA敲低;梯度TGF-β1刺激成纤维细胞;并用FAP抑制剂Ac-Gly-BoroPro进行体外与体内干预

3

FAP×CD3 BsAb EV平台构建与表征

构建并验证可表面展示FAP×CD3双特异性抗体的细胞外囊泡平台

将anti-FAP与anti-CD3 scFv串联并融合CD8铰链和跨膜域及GFP标签,经慢病毒转导NIH/3T3细胞并FACS分选,收集纯化EV;进行NTA、zeta电位、透射电镜、Western blot、脂质组学和流式表面染色

4

体外T细胞重定向杀伤验证

验证BsAb EVs能否重定向T细胞杀伤FAP阳性靶细胞

以FAP过表达K562细胞和TGF-β1处理的NIH/3T3细胞为靶细胞,原代小鼠T细胞为效应细胞,进行荧光素酶杀伤实验,并检测T细胞脱颗粒及Granzyme B、TNF-α、IFN-γ产生

5

体内靶向、清除与机制验证

验证BsAb EVs在椎板切除部位的FAP依赖定位及T细胞依赖的FAP⁺成纤维细胞清除

DiR/DID标记EV进行体内示踪;每日尾静脉给予BsAb EVs;流式检测瘢痕组织成纤维细胞与CD3⁺CD25⁺活化T细胞;抗CD3ε抗体清除T细胞后复测;免疫组化及免疫荧光检测CD3与FAP共定位

6

单细胞转录组解析细胞景观重塑

解析BsAb EV治疗对术后部位细胞组成、成纤维细胞亚群及免疫微环境的影响

对BsAb EV组与WT EV组术后第7天硬膜外组织进行scRNA-seq,进行无偏聚类、成纤维细胞亚群分析、CellChat通讯分析、Monocle2拟时序分析及通路富集

7

体内抗纤维化疗效与安全性评估

评估BsAb EVs减轻硬膜外纤维化及全身安全性

术后4周内每周行⁶⁸Ga-FAPI PET/CT;术后第56天行MRI、Masson染色和透射电镜;检测血清肝肾功能、血常规、血清细胞因子及主要脏器组织学

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖Dulbecco改良Eagle培养基Hyclone--
胎牛血清Hyclone--
RPMI 1640培养基----
Ac-Gly-BoroPro(FAP抑制剂)MedChemExpressHY-101801
抗CD3ε单克隆抗体(克隆145-2C11)Bio × Cell--
仓鼠IgG同型对照抗体Bio × Cell--
CD31抗体(克隆W18222B)BioLegend160203
CD45抗体(克隆TEK4)BioLegend103105
Tie2抗体(克隆30-F11)BioLegend124007
Ter119抗体(克隆TER-119)BioLegend116207
EpCAM抗体(克隆G8.8)BioLegend118205
CD3抗体(克隆17A2)BioLegend100220
CD69抗体(克隆H1.2F3)BioLegend104511
CD25抗体(克隆3C7)BioLegend101918
Ly6G抗体(克隆1A8)BioLegend127607 1
CD11b抗体(克隆M1/70)BioLegend101205
DAPIBiolegend422801
Stemcell阴选T细胞分离试剂盒Stemcell19853
Dynabeads小鼠T细胞激活剂CD3/CD28Gibco11452D
D-荧光素Gold-Bio--
I型胶原溶液Corning354249
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
ZetaView PMX120-Z纳米颗粒跟踪分析仪Particle Metrix--
Avanti J-26S XPI高性能离心机Beckman Coulter--
RNeasy RNA提取试剂盒Qiagen75144
DNase IThermo Fisher ScientificAM2222
sCelLiveTM组织解离液Singleron--
GEXSCOPE®单细胞RNA文库构建试剂盒Singleron--
Histopaque 1077/1119密度梯度分离液Sigma-Aldrich--
活性氧检测试剂盒Beyotime--
FAP抗体Abcamab207178
GFP抗体Abcamab290
Annexin A1抗体HuabioER1803-70
Annexin V抗体HuabioET1702-62
β-tubulin抗体Proteintech10094-1-AP
Calnexin抗体Proteintech10427-2-AP
TSG101抗体Proteintech28283-1-AP
CD63抗体Proteintech25682-1-AP
Trizol试剂Takara--
High-Capacity cDNA逆转录试剂盒Takara--
Luminex小鼠XL细胞因子检测试剂盒(10重)FCSTM20-10R&D SystemsFCSTM20-10
Bio-Plex 200系统Bio-Rad--
α-SMA抗体Abcamab5694
ABC试剂Vector Laboratories--
Masson三色染色试剂盒Thermo Scientific87019
CD3抗体Proteintech17617-1-AP
JEM-1400透射电子显微镜JEOL--
μMR 9.4 T磁共振扫描仪United Imaging Life Science Instrument--
TECAN Spark酶标仪TECAN--
CytoFLEX流式细胞仪Beckman Coulter--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠椎板切除模型建立
麻醉剂1.25%三溴乙醇30 μL/g腹腔注射;手术节段T12-L2;约2 cm背部纵行切口;小鼠品系BALB/c,5–7周龄;FAP缺陷小鼠为FapLacZ/LacZ BALB/c背景
阅读提示:Methods中“Laminectomy mouse model”与“Cell culture and mice”小节
FAP抑制剂体内给药
Ac-Gly-BoroPro剂量0.5 mg/kg腹腔注射,术后第0–4天每日一次;对照为等体积无菌PBS
阅读提示:Methods中“FAP inhibitor (FAPi) treatment”小节及Fig. 2I图注
BsAb EVs体内给药与T细胞清除
BsAb EVs 40 nmol每日尾静脉给药连续5天;anti-CD3ε 10 μg/只于术后第−4、−2、0天腹腔注射;对照为仓鼠IgG同型对照
阅读提示:Results中“FAP × CD3 BsAb EVs redirect T cells...”段落及Methods中“In vivo T cell depletion”小节
体外杀伤实验
效靶比10:1或1:1;靶细胞1×10⁴/孔;共培养24小时;TGF-β1诱导NIH/3T3为10 ng/mL 48小时;技术三重复
阅读提示:Methods中“Luciferase assays”小节及Fig. 4图注
单细胞RNA测序样本与分组
BsAb EV组与WT EV组各3只小鼠,术后第7天取材;共93439个高质量细胞;测序平台Illumina Novaseq 6000
阅读提示:Methods中“Single-cell RNA sequencing”小节及Fig. 5图注
EV制备与表征
UVB 300 J/m²照射1小时;500×g 10分钟、0.45 μm过滤、14,000×g 60分钟离心;NTA使用ZetaView PMX120-Z;每颗粒BsAb拷贝数基于三批独立EV
阅读提示:Methods中“Generation and isolation of EVs”与“Quantification of BsAb copy number per EV particle”小节及Fig. 3图注
体内影像学评估
⁶⁸Ga-FAPI剂量7.40–9.25 MBq尾静脉注射;PET/CT术后4周内每周一次;MRI于术后2个月在9.4 T扫描仪进行,范围T11-L4
阅读提示:Methods中“Micro-PET/CT”与“Magnetic resonance imaging”小节及Fig. 7图注
安全性评估
肝肾功能与血常规检测时间点为术后第7、14、27、56天;血清细胞因子检测时间点为术后第1、4、7、14天;每组n=3
阅读提示:Results中“BsAb EVs exhibit a favorable systemic safety profile”段落及Supplementary Fig. 14