肠道Mucin-1缺失损害肠上皮屏障并促进雄性小鼠代谢功能障碍相关脂肪性肝病

Lack of intestinal Mucin-1 impairs intestinal epithelial barrier and promotes metabolic dysfunction-associated steatotic liver disease in male mice.

作者信息Zecheng Li, Runchuan Gu, Donghai Liu, Yijia Zhang, Yijin Qin, Xinyu Li, Yuan Qiao, Ziyao Li, Jing Guo, Jun Wang, Hua Meng, Liang Peng
PMID41350285
发布时间2025-12
DOI10.1038/s41467-025-67034-7

实验完整度

高

含临床样本、细胞系、基因敲除/过表达小鼠模型,并进行了功能与机制验证

主要模型

MASLD患者结肠黏膜活检样本 高脂饮食诱导的雄性C57BL/6J小鼠 肠上皮细胞特异性Muc1敲除小鼠(Muc1EKO) HT-29人肠上皮细胞系

重点核对

Muc1EKO小鼠与Muc1Flox/Flox小鼠在ND或HFD喂养16周后的表型比较(n=8只/组) HT-29细胞经50 nM O-glycosidase处理30分钟后,再用CHX处理24小时检测MUC1稳定性 HT-29细胞经O-glycosidase处理后,分别用CQ、MG132、CPZ、MβCD、BFA、HCQ等抑制剂处理以确定降解途径 肠上皮特异性MUC1ΔCT过表达小鼠在HFD喂养16周后的代谢和屏障指标检测(n=8只/组) 人结肠黏膜活检样本中MUC1蛋白水平与BMI、血清TG、ALT的相关性分析(n=60)

摘要

越来越多的证据表明,肠上皮屏障(IEB)受损参与代谢功能障碍相关脂肪性肝病(MASLD)的进展;然而,确切机制仍不清楚。在此,我们揭示在MASLD患者和雄性小鼠中,肠道黏蛋白1(MUC1)的水平和糖基化均降低。肠上皮细胞特异性Muc1敲除加重高脂饮食(HFD)诱导的雄性小鼠IEB损伤和MASLD进展。机制上,HFD喂养降低肠上皮MUC1的糖基化,触发其网格蛋白介导的内吞和NEDD4介导的溶酶体降解,随后诱导β-Catenin降解并最终损害IEB。值得注意的是,肠上皮细胞特异性过表达胞质尾缺失的MUC1可保护免受IEB损伤并减轻MASLD进展。这些发现表明,肠上皮MUC1水平降低促进MASLD的进展。保持肠道MUC1的糖基化和水平以维持IEB完整性是探索MASLD治疗的潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肠道MUC1在维持肠上皮屏障完整性及MASLD进展中的作用和机制是什么?
核心机制
HFD喂养降低肠上皮MUC1糖基化,触发其网格蛋白介导的内吞和NEDD4介导的K63连接泛素化及溶酶体降解,导致β-Catenin降解,进而损害肠上皮屏障并促进MASLD进展。
主要证据
MASLD患者和小鼠肠道MUC1水平及糖基化降低;肠上皮特异性Muc1敲除加重HFD诱导的IEB损伤和MASLD进展;MUC1ΔCT过表达保护IEB并减轻MASLD;体外实验证实O-glycosidase处理诱导MUC1内吞和溶酶体降解,NEDD4介导MUC1泛素化。
研究意义
研究提示维持肠道MUC1的糖基化和水平以保持IEB完整性是探索MASLD治疗的潜在策略,肠上皮过表达MUC1ΔCT可能是一种有效且潜在安全的方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本与动物模型验证MUC1表达与糖基化改变

探究肠道MUC1水平及糖基化是否与MASLD相关

检测30例MASLD患者和30例健康对照结肠黏膜活检样本中MUC1蛋白水平、糖基化(PNA)及糖萼厚度;检测HFD喂养16周小鼠结肠MUC1蛋白水平、糖基化和糖萼厚度。

2

体外细胞实验探究MUC1降解机制

明确MUC1去糖基化后通过何种途径降解

HT-29细胞经O-glycosidase处理,结合溶酶体抑制剂CQ、蛋白酶体抑制剂MG132、内吞抑制剂CPZ、MβCD等处理,检测MUC1蛋白水平;通过IP-MS鉴定NEDD4为MUC1相互作用蛋白,并验证NEDD4介导的泛素化及降解位点。

3

肠上皮特异性Muc1敲除小鼠在HFD下评估MASLD进展

验证肠道MUC1缺失对IEB和MASLD进展的影响

Muc1EKO和Muc1Flox/Flox雄性小鼠分别给予ND或HFD喂养16周,检测体重、肝脏重量、GTT、ITT、血清和肝脏脂质、ALT、AST、炎症和纤维化基因表达,以及IEB通透性指标(血清LPS、细菌DNA、FITC-dextran通量)和紧密连接宽度。

4

肠上皮特异性Muc1过表达及β-catenin敲除验证机制

验证MUC1是否通过β-Catenin调控IEB和MASLD进展

在β-cateninEKO小鼠中利用AAV-Villin-Muc1过表达Muc1,HFD喂养16周,检测GTT、ITT、肝脏脂肪积累和IEB指标;同时检测MUC1缺失对β-Catenin磷酸化和降解的影响。

5

过表达MUC1ΔCT评估对MASLD的保护作用

探究胞质尾缺失的MUC1过表达是否安全有效地减轻MASLD

构建肠上皮特异性Muc1ΔCT过表达小鼠(Muc1ΔCTEOE),HFD喂养16周,检测糖萼厚度、肝脏脂质积累、GTT、ITT、血清TG、肝脏TG、ALT、AST、血清LPS和FITC-dextran通量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基----
胎牛血清Gibco--
DMEM培养基Gibco--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
Lipo8000转染试剂Beyotime--
O-糖苷酶----
氯喹----
MG132----
氯丙嗪----
甲基-β-环糊精----
布雷菲德菌素A----
羟氯喹----
生物素标记花生凝集素Sigma AldrichL6135
兔抗MUC1抗体AbclonalA21726
抗MUC1抗体InvitrogenPA5-95487
抗MUC1抗体Santa cruzsc-53381
抗NEDD4抗体Proteintech21698-1-AP
抗GAPDH抗体Proteintech10494-1-AP
抗LC3抗体Proteintech14600-1-AP
抗泛素抗体WanleibioWL01368
抗HA标签抗体Proteintech81290-1-RR
抗His标签抗体Proteintech66005-1-Ig
抗DYKDDDDK标签抗体Proteintech80010-1-RR
鼠抗β-Catenin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7963
抗磷酸化β-Catenin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-57533
Protein A磁珠Santa Cruz--
Trizol试剂Invitrogen--
M-MLV逆转录酶试剂盒Promega--
SYBR Green PCR预混液试剂盒Applied Biosystems--
ABI Prism 7900 HT快速实时PCR系统Applied Biosystems--
QuickBlock™封闭液Beyotime--
Western blot一抗稀释液Beyotime--
Western blot二抗稀释液Beyotime--
ChemiDoc™ MP成像系统BIO-RAD--
Zeiss 880正置共聚焦显微镜Zeiss--
Lonza QCL-1000®鲎试剂显色法Lonza--
FITC-葡聚糖(4 kDa)MerckFD4
Roche ACCU-CHEK Aviva手持血糖仪Roche--
诺和锐Novo Nordisk--
Wako诊断试剂盒Wako Diagnostics--
Catachem试剂盒Catachem--
Abcam试剂盒Abcam--
FemtoTM细菌DNA定量试剂盒Zymo Research--
天根DNA提取试剂盒Tiangen Biotech--
Orbitrap Fusion LUMOS质谱仪Thermo Fisher Scientific--
Titan Themis显微镜Thermo Fisher Scientific--
Gatan K2 Summit直接检测相机Gatan Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
MASLD诊断标准(肝超声诊断脂肪肝且至少符合BMI≥25、ALT/AST升高、血清TG或胆固醇升高之一)、排除标准、样本来源为结肠息肉旁非病变黏膜组织、样本量30例/组
阅读提示:Methods-Human participants;Fig. 1a-c
小鼠模型建立
小鼠品系C57BL/6J、性别雄性、周龄8周、HFD配方(60%脂肪、20%蛋白质、20%碳水化合物)、喂养时长16周、每组n=8
阅读提示:Methods-Animals;Fig. 3a、Fig. 5b
Muc1EKO小鼠构建与验证
Muc1Flox/Flox与Villin-Cre杂交策略、Cre重组酶表达范围(小肠和大肠绒毛及隐窝上皮细胞)、敲除效率验证(Western blot)
阅读提示:Methods-Animals;Supplementary Fig. 3a
MUC1ΔCT过表达小鼠构建
AAV血清型AAV9、给药剂量1.5×10^11 genome copies/只、启动子Villin、注射时间(8周龄)、HFD喂养16周
阅读提示:Methods-Animals;Fig. 5a-b
体外MUC1降解实验
HT-29细胞来源(北京协和医学院细胞资源中心)、O-glycosidase浓度50 nM处理30分钟、CHX处理24小时、抑制剂浓度(CQ 50 μM、MG132 10 μM、CPZ 10 μM、MβCD 5 mM、BFA 8 μM、HCQ 50 μM)及处理时间
阅读提示:Methods-Cell lines and cell culture;Fig. 2a-d
肠道通透性检测
FITC-dextran分子量4 kDa、剂量750 µg/g体重、灌胃后90分钟采血、荧光检测波长(激发485 nm/发射535 nm)
阅读提示:Methods-In vivo intestinal permeability assessment;Fig. 4c
GTT和ITT
GTT在处死前3周进行、ITT在处死前2周进行、禁食6小时、D-葡萄糖剂量1.25 g/kg腹腔注射、胰岛素剂量1.2 U/kg腹腔注射、血糖测量时间点0、30、60、90、120分钟
阅读提示:Methods-GTT and ITT;Fig. 3d-e
血清LPS检测
血清稀释比例1:5、56°C热灭活30分钟、标准曲线范围0.005-5 EU/mL、检测波长405-410 nm、回收率范围85%-110%
阅读提示:Methods-Serum LPS detection