衰老骨髓中LepR+细胞衰老及H2O2积累和NO减少的检测
验证衰老骨髓中LepR+细胞衰老、H2O2积累和NO生成减少的现象
对年轻(2月龄)和衰老(20月龄)小鼠股骨骨髓进行免疫荧光染色检测P21、ASL、CD31、OCN、PERIPHERIN、LYVE1等;流式细胞术分析my-HSCs比例;qPCR检测LepR+细胞中SCF mRNA;H2O2探针检测H2O2水平;H2O2检测试剂盒定量H2O2浓度。
Regenerating aged bone marrow via a nitric oxide nanopump.
包含体外细胞模型、动物模型及RNA-seq机制验证,并有功能与机制验证
衰老C57BL/6小鼠(20月龄)骨髓LepR+细胞 年轻C57BL/6小鼠(2月龄)骨髓LepR+细胞 LepR-tdTomato小鼠
LepR+细胞分选:使用抗LepR-biotin抗体及流式分选 CB-LepR表征:粒径125.9±0.25 nm,多分散指数未报告 体外NO释放:CB-LepR 50 μg/mL与H2O2(0、6.25、12.5、25、50 mM)共孵育 体内局部治疗:股骨骨髓腔内注射,CPPO剂量5.0 mg/kg 体内系统治疗:尾静脉注射,每2周一次,CPPO剂量5.0 mg/kg,8周后micro-CT
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证衰老骨髓中LepR+细胞衰老、H2O2积累和NO生成减少的现象
对年轻(2月龄)和衰老(20月龄)小鼠股骨骨髓进行免疫荧光染色检测P21、ASL、CD31、OCN、PERIPHERIN、LYVE1等;流式细胞术分析my-HSCs比例;qPCR检测LepR+细胞中SCF mRNA;H2O2探针检测H2O2水平;H2O2检测试剂盒定量H2O2浓度。
构建并表征共包封CPPO和BNN6的NO纳米泵,并验证其H2O2响应性NO释放
通过纳米沉淀法制备CB-NPs,共包封BNN6、CPPO、大豆油和DSPE-PEG-MAL;通过Traut's试剂将抗LepR抗体偶联到表面得到CB-LepR;用TEM、DLS、HPLC、EDS表征;用Griess试剂和DAF-FM DA探针检测NO释放;用LC-MS检测BNN6消耗。
验证CB-LepR在体内对LepR+细胞的靶向能力
将CB-NPs或CB-LepR用CY5.5或FITC标记,注射到衰老小鼠股骨骨髓腔或LepR-tdTomato小鼠,7天后取股骨进行免疫荧光共定位分析;流式细胞术检测LepR+细胞结合比例;尾静脉注射后不同时间点进行全身荧光成像。
验证CB-LepR在衰老骨髓中清除H2O2并在LepR+细胞内释放NO
向衰老小鼠股骨骨髓腔注射CB-LepR,用H2O2探针和H2O2检测试剂盒检测H2O2水平;分选LepR+和LepR-细胞检测细胞内H2O2;用Griess试剂检测LepR+细胞内NO浓度;用活细胞成像观察NO释放。
验证CB-LepR对衰老LepR+细胞的抗衰老作用及对成骨/成脂分化的影响
LepR+细胞在含H2O2(100 μM)的条件下与CB-NPs或CB-LepR共孵育,进行SA-β-Gal染色、ALP染色、ARS染色和油红O染色;qPCR检测成骨(Alp、Ocn、Osx、Runx2)和成脂(Fabp4、Pparγ)基因表达。
验证CB-LepR局部注射能否恢复衰老骨髓稳态
对衰老小鼠股骨骨髓腔局部注射PBS、CB-NPs或CB-LepR,8周后通过micro-CT分析骨参数;免疫荧光染色检测衰老、骨形成、脂滴和破骨细胞活性;检测my-HSCs比例;RNA-seq分析LepR+细胞基因表达。
验证NO纳米泵通过激活糖酵解信号通路逆转LepR+细胞衰老
对体外和体内LepR+细胞进行RNA-seq,进行KEGG和GSEA分析;用2-DG(糖酵解抑制剂)和L-NAME(NO合成抑制剂)干预,通过SA-β-Gal染色和P21免疫荧光检测衰老;qPCR检测Pkm2和Ldha表达;Seahorse assay检测ECAR。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| LepR+细胞分离与消化 | I型胶原酶 | Gibco | 17018029 |
| 中性蛋白酶 | Roche | 4942078001 | |
| DNA酶 | Thermo | 89836 | |
| HBSS缓冲液 | Gibco | 14170120 | |
| LepR+细胞分选 | 山羊抗LepR生物素抗体 | R&D Systems | BAF497 |
| 驴抗山羊FITC抗体 | Abcam | ab6881 | |
| NO纳米泵制备 | BNN6 | MedChemExpress | HY-164117 |
| 大豆油 | Aladdin | S110244 | |
| CPPO | Aladdin | B101611 | |
| DSPE-PEG-Mal | Shanghai ToYongBio Tech Co., Ltd. | -- | |
| 四氢呋喃 | Aladdin | T103263 | |
| Traut's试剂 | Aladdin | I106793 | |
| H2O2检测 | Amplex Red | Beyotime | ST010 |
| H2O2检测试剂盒 | Beyotime | S0021 | |
| NO检测 | DAF-FM DA | Beyotime | S0019 |
| Griess试剂盒 | Beyotime | S0021 | |
| 细胞毒性检测 | 细胞计数试剂盒-8 | Solarbio | CA1210 |
| 活/死细胞染色试剂盒 | Solarbio | CA1630 | |
| 体内靶向检测 | 抗LepR-FITC抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8391 FITC |
| 体外衰老与分化诱导 | SA-β-Gal染色试剂盒 | Solarbio | G1580 |
| 体外成骨诱导 | 成骨诱导培养基 | OriCell | MUBMX-90041 |
| 体外成脂诱导 | 成脂诱导培养基 | OriCell | MUBMX-90031 |
| 体外成骨染色 | 碱性磷酸酶染色试剂盒 | Solarbio | G1480 |
| 茜素红染色试剂盒 | Solarbio | G1452 | |
| 体外成脂染色 | 油红O染色试剂盒 | Solarbio | G1262 |
| 免疫荧光染色 | 抗OCN抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-78870 |
| 抗ASL抗体 | Abcam | ab97370 | |
| 抗P21抗体 | Abcam | ab188224 | |
| 抗γ-H2AX抗体 | Abcam | ab81299 | |
| 抗IL-6抗体 | Abcam | ab290735 | |
| 抗PERILIPIN抗体 | Abcam | ab316115 | |
| 抗CD31抗体 | Abcam | ab222783 | |
| 抗LYVE1抗体 | Abcam | ab14917 | |
| 抗PERIPHERIN抗体 | Abcam | ab246502 | |
| 山羊抗兔FITC抗体 | Abcam | ab6717 | |
| my-HSCs分析 | 抗CD16/32抗体 | BioLegend | 101301 |
| 抗Lineage鸡尾酒同型对照-FITC | BioLegend | 133302 | |
| 抗Sca-1-APC | BioLegend | 108112 | |
| 抗c-Kit-PE/Cyanine7 | BioLegend | 105814 | |
| 抗CD48-PerCP/Cyanine5.5 | BioLegend | 103422 | |
| 抗CD150-PE | BioLegend | 162606 | |
| RNA提取与qPCR | TRIzol | Vazyme | -- |
| HiScript III逆转录试剂盒 | Vazyme | -- | |
| ChamQ Universal SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| QuantStudio3实时PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| Seahorse assay | Seahorse XFe96细胞外流量分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| micro-CT | SkyScan 1176微型CT | SkyScan | -- |
| 透射电镜 | Hitachi HT7800透射电子显微镜 | Hitachi | -- |
| 动态光散射 | 动态光散射仪 | Malvern Instruments | -- |
| 高效液相色谱 | 高效液相色谱仪(Dionex系统) | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 荧光显微镜 | Axio Imager 2荧光显微镜 | Carl Zeiss | -- |
| 流式细胞分析 | BD LSRII流式细胞仪 | BD Bioscience | -- |
| 动物荧光成像 | IVIS光谱成像系统 | PerkinElmer | -- |
| 酶标仪 | 酶标仪 | BioTek | -- |
| 荧光显微镜 | Zeiss Axiovert 200荧光显微镜 | Carl Zeiss Inc. | -- |
| 流式细胞分选 | FACSAria流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| LepR+细胞分选 | 酶消化浓度(I型胶原酶3 mg/mL、中性蛋白酶4 mg/mL、DNase 200 U/mL)及消化时间(37°C,15分钟×2次);抗体孵育条件(山羊抗LepR-biotin 2小时4°C,驴抗山羊FITC 1小时) 阅读提示:Methods: Isolation and sorting of LepR+ cells;Supplementary Fig. 11分选策略 |
| CB-NPs和CB-LepR制备 | BNN6 0.75 mg、CPPO 1 mg、大豆油2 μL、DSPE-PEG-Mal 5 mg、THF 1 mL;抗LepR抗体500 μL(10 μmol)与Traut's试剂(200 μmol)反应1小时;CB-NPs与抗体混合物反应6小时 阅读提示:Methods: Preparation of CB-NPs and CB-LepR |
| 体外NO释放检测 | CB-LepR浓度50 μg/mL,H2O2浓度0、6.25、12.5、25、50 mM,37°C水浴;DAF-FM DA浓度5 μM,孵育20分钟37°C 阅读提示:Methods: Characterizations of NO generation;Fig. 3H |
| 体内局部治疗 | CPPO剂量5.0 mg/kg,股骨骨髓腔内注射,8周后检测;每组n=5只小鼠 阅读提示:Methods: In vivo therapeutic efficiency;Fig. 7A |
| 体外衰老与分化诱导 | H2O2浓度100 μM(成骨/成脂诱导)或200 μM(衰老诱导);CB-NPs或CB-LepR浓度50 μg/mL;成骨诱导7天和14天染色,成脂诱导21天染色;SA-β-Gal染色在7天后 阅读提示:Methods: In vitro aging, osteogenic and adipogenic induction;Fig. 6A |
| Seahorse assay | 细胞数1×10^7,处理24小时;依次加入葡萄糖(10 mM)、寡霉素(1 μM)、2-DG(50 mM) 阅读提示:Methods: Extracellular acidification rate measurements with the Seahorse assay;Fig. 8H–J |
| micro-CT扫描 | 各向同性体素大小3.5 μm,低密度阈值90,感兴趣区域为股骨远端骨骺 阅读提示:Methods: Micro-CT imaging;Fig. 7B–F |