利用一氧化氮纳米泵再生衰老骨髓

Regenerating aged bone marrow via a nitric oxide nanopump.

作者信息Ke Li, Sihan Hu, Hanwen Li, Wenzheng Lin, Duoyi Zhao, Zhuobin Xu, Chun Pan, Huihui Wang, Dandan Li, Jingjing Liu, Hao Chen
PMID40593809
发布时间2025-07-01
DOI10.1038/s41467-025-61256-5

实验完整度

高

包含体外细胞模型、动物模型及RNA-seq机制验证,并有功能与机制验证

主要模型

衰老C57BL/6小鼠(20月龄)骨髓LepR+细胞 年轻C57BL/6小鼠(2月龄)骨髓LepR+细胞 LepR-tdTomato小鼠

重点核对

LepR+细胞分选:使用抗LepR-biotin抗体及流式分选 CB-LepR表征:粒径125.9±0.25 nm,多分散指数未报告 体外NO释放:CB-LepR 50 μg/mL与H2O2(0、6.25、12.5、25、50 mM)共孵育 体内局部治疗:股骨骨髓腔内注射,CPPO剂量5.0 mg/kg 体内系统治疗:尾静脉注射,每2周一次,CPPO剂量5.0 mg/kg,8周后micro-CT

摘要

驻留的瘦素受体表达(LepR+)细胞在衰老骨髓中发生衰老,损害成骨细胞及其他谱系细胞的再生能力。本研究构建了一种靶向LepR+细胞、具有体内自控开启能力的一氧化氮(NO)纳米泵,用于 rejuvenate 衰老骨髓中的LepR+细胞。该纳米泵通过纳米沉淀过程将疏水性化学发光底物和NO供体共包封于两亲性聚合物基质中。NO纳米泵中的化学发光底物自动与衰老骨髓中积累的H2O2反应,然后将化学能直接转移给NO供体,诱导原位NO释放。衰老骨髓中原位产生的NO通过激活衰老LepR+细胞中的糖酵解信号,触发体内成骨细胞及其他龛的再生。总之,所构建的NO纳米泵是对抗衰老诱导的骨髓疾病的有前景的工具。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
衰老骨髓中LepR+细胞衰老导致骨髓稳态崩溃,能否通过靶向LepR+细胞原位释放NO来逆转衰老并恢复骨髓稳态?
核心机制
NO纳米泵在衰老骨髓中响应H2O2原位释放NO,NO通过激活衰老LepR+细胞中的糖酵解信号通路,逆转细胞衰老并促进成骨分化。
主要证据
体外实验显示CB-LepR清除H2O2并在LepR+细胞内释放NO,减少SA-β-Gal阳性衰老细胞,促进成骨分化;体内局部注射CB-LepR增加骨量、减少衰老LepR+细胞、改善血管/淋巴管/神经再生并降低my-HSCs比例;RNA-seq和Seahorse assay证实糖酵解通路激活。
研究意义
所构建的NO纳米泵可作为对抗衰老诱导的骨髓疾病的有前景的工具,为逆转骨髓衰老提供精准治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

衰老骨髓中LepR+细胞衰老及H2O2积累和NO减少的检测

验证衰老骨髓中LepR+细胞衰老、H2O2积累和NO生成减少的现象

对年轻(2月龄)和衰老(20月龄)小鼠股骨骨髓进行免疫荧光染色检测P21、ASL、CD31、OCN、PERIPHERIN、LYVE1等;流式细胞术分析my-HSCs比例;qPCR检测LepR+细胞中SCF mRNA;H2O2探针检测H2O2水平;H2O2检测试剂盒定量H2O2浓度。

2

NO纳米泵的构建与表征

构建并表征共包封CPPO和BNN6的NO纳米泵,并验证其H2O2响应性NO释放

通过纳米沉淀法制备CB-NPs,共包封BNN6、CPPO、大豆油和DSPE-PEG-MAL;通过Traut's试剂将抗LepR抗体偶联到表面得到CB-LepR;用TEM、DLS、HPLC、EDS表征;用Griess试剂和DAF-FM DA探针检测NO释放;用LC-MS检测BNN6消耗。

3

CB-LepR在体内靶向LepR+细胞的效率评估

验证CB-LepR在体内对LepR+细胞的靶向能力

将CB-NPs或CB-LepR用CY5.5或FITC标记,注射到衰老小鼠股骨骨髓腔或LepR-tdTomato小鼠,7天后取股骨进行免疫荧光共定位分析;流式细胞术检测LepR+细胞结合比例;尾静脉注射后不同时间点进行全身荧光成像。

4

CB-LepR在体内清除H2O2和释放NO的能力检测

验证CB-LepR在衰老骨髓中清除H2O2并在LepR+细胞内释放NO

向衰老小鼠股骨骨髓腔注射CB-LepR,用H2O2探针和H2O2检测试剂盒检测H2O2水平;分选LepR+和LepR-细胞检测细胞内H2O2;用Griess试剂检测LepR+细胞内NO浓度;用活细胞成像观察NO释放。

5

CB-LepR体外逆转LepR+细胞衰老并促进成骨分化

验证CB-LepR对衰老LepR+细胞的抗衰老作用及对成骨/成脂分化的影响

LepR+细胞在含H2O2(100 μM)的条件下与CB-NPs或CB-LepR共孵育,进行SA-β-Gal染色、ALP染色、ARS染色和油红O染色;qPCR检测成骨(Alp、Ocn、Osx、Runx2)和成脂(Fabp4、Pparγ)基因表达。

6

CB-LepR局部治疗衰老小鼠骨髓的体内疗效评估

验证CB-LepR局部注射能否恢复衰老骨髓稳态

对衰老小鼠股骨骨髓腔局部注射PBS、CB-NPs或CB-LepR,8周后通过micro-CT分析骨参数;免疫荧光染色检测衰老、骨形成、脂滴和破骨细胞活性;检测my-HSCs比例;RNA-seq分析LepR+细胞基因表达。

7

CB-LepR通过激活糖酵解通路逆转LepR+细胞衰老的机制验证

验证NO纳米泵通过激活糖酵解信号通路逆转LepR+细胞衰老

对体外和体内LepR+细胞进行RNA-seq,进行KEGG和GSEA分析;用2-DG(糖酵解抑制剂)和L-NAME(NO合成抑制剂)干预,通过SA-β-Gal染色和P21免疫荧光检测衰老;qPCR检测Pkm2和Ldha表达;Seahorse assay检测ECAR。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
I型胶原酶Gibco17018029
中性蛋白酶Roche4942078001
DNA酶Thermo89836
HBSS缓冲液Gibco14170120
山羊抗LepR生物素抗体R&D SystemsBAF497
驴抗山羊FITC抗体Abcamab6881
BNN6MedChemExpressHY-164117
大豆油AladdinS110244
CPPOAladdinB101611
DSPE-PEG-MalShanghai ToYongBio Tech Co., Ltd.--
四氢呋喃AladdinT103263
Traut's试剂AladdinI106793
Amplex RedBeyotimeST010
H2O2检测试剂盒BeyotimeS0021
DAF-FM DABeyotimeS0019
Griess试剂盒BeyotimeS0021
细胞计数试剂盒-8SolarbioCA1210
活/死细胞染色试剂盒SolarbioCA1630
抗LepR-FITC抗体Santa Cruz Biotechnologysc-8391 FITC
SA-β-Gal染色试剂盒SolarbioG1580
成骨诱导培养基OriCellMUBMX-90041
成脂诱导培养基OriCellMUBMX-90031
碱性磷酸酶染色试剂盒SolarbioG1480
茜素红染色试剂盒SolarbioG1452
油红O染色试剂盒SolarbioG1262
抗OCN抗体Thermo Fisher ScientificPA5-78870
抗ASL抗体Abcamab97370
抗P21抗体Abcamab188224
抗γ-H2AX抗体Abcamab81299
抗IL-6抗体Abcamab290735
抗PERILIPIN抗体Abcamab316115
抗CD31抗体Abcamab222783
抗LYVE1抗体Abcamab14917
抗PERIPHERIN抗体Abcamab246502
山羊抗兔FITC抗体Abcamab6717
抗CD16/32抗体BioLegend101301
抗Lineage鸡尾酒同型对照-FITCBioLegend133302
抗Sca-1-APCBioLegend108112
抗c-Kit-PE/Cyanine7BioLegend105814
抗CD48-PerCP/Cyanine5.5BioLegend103422
抗CD150-PEBioLegend162606
TRIzolVazyme--
HiScript III逆转录试剂盒Vazyme--
ChamQ Universal SYBR qPCR预混液Vazyme--
NanoDrop 2000分光光度计Thermo Fisher Scientific--
QuantStudio3实时PCR仪Applied Biosystems--
Seahorse XFe96细胞外流量分析仪Agilent Technologies--
SkyScan 1176微型CTSkyScan--
Hitachi HT7800透射电子显微镜Hitachi--
动态光散射仪Malvern Instruments--
高效液相色谱仪(Dionex系统)Thermo Fisher Scientific--
Axio Imager 2荧光显微镜Carl Zeiss--
BD LSRII流式细胞仪BD Bioscience--
IVIS光谱成像系统PerkinElmer--
酶标仪BioTek--
Zeiss Axiovert 200荧光显微镜Carl Zeiss Inc.--
FACSAria流式细胞仪BD Biosciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
LepR+细胞分选
酶消化浓度(I型胶原酶3 mg/mL、中性蛋白酶4 mg/mL、DNase 200 U/mL)及消化时间(37°C,15分钟×2次);抗体孵育条件(山羊抗LepR-biotin 2小时4°C,驴抗山羊FITC 1小时)
阅读提示:Methods: Isolation and sorting of LepR+ cells;Supplementary Fig. 11分选策略
CB-NPs和CB-LepR制备
BNN6 0.75 mg、CPPO 1 mg、大豆油2 μL、DSPE-PEG-Mal 5 mg、THF 1 mL;抗LepR抗体500 μL(10 μmol)与Traut's试剂(200 μmol)反应1小时;CB-NPs与抗体混合物反应6小时
阅读提示:Methods: Preparation of CB-NPs and CB-LepR
体外NO释放检测
CB-LepR浓度50 μg/mL,H2O2浓度0、6.25、12.5、25、50 mM,37°C水浴;DAF-FM DA浓度5 μM,孵育20分钟37°C
阅读提示:Methods: Characterizations of NO generation;Fig. 3H
体内局部治疗
CPPO剂量5.0 mg/kg,股骨骨髓腔内注射,8周后检测;每组n=5只小鼠
阅读提示:Methods: In vivo therapeutic efficiency;Fig. 7A
体外衰老与分化诱导
H2O2浓度100 μM(成骨/成脂诱导)或200 μM(衰老诱导);CB-NPs或CB-LepR浓度50 μg/mL;成骨诱导7天和14天染色,成脂诱导21天染色;SA-β-Gal染色在7天后
阅读提示:Methods: In vitro aging, osteogenic and adipogenic induction;Fig. 6A
Seahorse assay
细胞数1×10^7,处理24小时;依次加入葡萄糖(10 mM)、寡霉素(1 μM)、2-DG(50 mM)
阅读提示:Methods: Extracellular acidification rate measurements with the Seahorse assay;Fig. 8H–J
micro-CT扫描
各向同性体素大小3.5 μm,低密度阈值90,感兴趣区域为股骨远端骨骺
阅读提示:Methods: Micro-CT imaging;Fig. 7B–F