整合性癌基因依赖性图谱鉴定RIT1在肺癌中的脆弱性与协同作用

Integrative oncogene-dependency mapping identifies RIT1 vulnerabilities and synergies in lung cancer.

作者信息Athea Vichas, Amanda K Riley, Naomi T Nkinsi, Shriya Kamlapurkar, Phoebe C R Parrish, April Lo, Fujiko Duke, Jennifer Chen, Iris Fung, Jacqueline Watson, Matthew Rees, Austin M Gabel, James D Thomas, Robert K Bradley, John K Lee, Emily M Hatch, Marina K Baine, Natasha Rekhtman, Marc Ladanyi, Federica Piccioni, Alice H Berger
PMID34373451
发布时间2021-08-09
DOI10.1038/s41467-021-24841-y

实验完整度

高

同基因细胞系CRISPR筛选、小分子筛选、机制验证(有丝分裂时序)、多种细胞模型及体内异种移植验证。

主要模型

PC9 EGFR突变型肺腺癌细胞系(同基因表达RIT1M90I、KRASG12V或EGFRT790M/L858R) NCI-H2110 RIT1M90I突变型非小细胞肺癌细胞系 SALE人小气道上皮细胞(表达RIT1M90I和/或YAP15SA) HeLa H2B-GFP细胞(表达RIT1M90I)

重点核对

PC9同基因细胞系中RIT1M90I、KRASG12V和EGFRT790M/L858R的表达及对erlotinib(40-50 nM)的抗性 全基因组CRISPR筛选(Brunello文库)在erlotinib或DMSO条件下培养约12个群体倍增 验证筛选使用定制sgRNA文库(1288个基因)在PC9-Cas9-RIT1M90I细胞中进行 HeLa H2B-GFP细胞中有丝分裂时序分析(NEBD到后期起始),n=50细胞/条件 SALE细胞异种移植模型中RIT1M90I+YAP15SA或sgNF2的肿瘤生长(n=6-8肿瘤/组)

摘要

基于CRISPR的癌症依赖性图谱正在加速癌症精准医学的进展,但足够的功能性图谱仅限于最常见的癌基因。为了在其他较罕见的癌症亚群中寻找治疗干预的机会,我们研究了肺癌癌基因RIT1所赋予的癌基因特异性依赖性。在此,我们在KRAS、EGFR和RIT1突变型同基因肺癌细胞中进行全基因组CRISPR筛选,鉴定了每种癌基因共有和独特的脆弱性。将这些遗传数据与小分子敏感性分析相结合,我们鉴定了RIT1突变细胞对纺锤体组装检查点调节因子缺失的独特脆弱性。致癌性RIT1M90I削弱纺锤体组装检查点并扰乱有丝分裂时序,导致对Aurora A抑制的敏感性。此外,我们在多种模型中观察到突变型RIT1与YAP1激活之间的协同作用,并且在人原发性RIT1突变型肺肿瘤中频繁观察到YAP1的核过表达。这些结果提供了致癌性RIT1功能相互作用的基因组范围图谱,并确定了RAS通路、纺锤体组装检查点和Hippo/YAP1网络的组分作为RIT1突变型肺癌的候选治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
RIT1突变型肺癌的癌基因特异性依赖性是什么,以及如何利用这些依赖性进行靶向治疗?
核心机制
致癌性RIT1M90I削弱纺锤体组装检查点,导致有丝分裂时序加速和对Aurora激酶抑制的敏感性;同时,RIT1M90I与YAP1激活协同促进肿瘤发生,可能通过增强YAP1靶基因表达实现。
主要证据
同基因PC9细胞系的全基因组CRISPR筛选和验证筛选、小分子敏感性分析、HeLa细胞有丝分裂时序分析、SALE细胞转化和异种移植模型,以及人RIT1突变型肺肿瘤中YAP1核过表达的免疫组化分析。
研究意义
提供了致癌性RIT1功能相互作用的基因组范围图谱,并确定了RAS通路、纺锤体组装检查点和Hippo/YAP1网络组分作为RIT1突变型肺癌的候选治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立同基因肺癌细胞系

构建表达不同癌基因的同基因PC9细胞系,以研究癌基因特异性依赖性。

在PC9-Cas9细胞中通过慢病毒转导表达Firefly luciferase(对照)、RIT1M90I、KRASG12V或EGFRT790M/L858R,并用潮霉素筛选。

2

全基因组CRISPR筛选

鉴定在erlotinib选择压力下各癌基因特异性依赖的基因。

使用Brunello文库(76,441 sgRNAs靶向19,114个基因)转导PC9-Cas9同基因细胞,在erlotinib或DMSO中培养约12个群体倍增,通过测序分析sgRNA丰度变化。

3

小分子敏感性筛选

评估RIT1M90I和KRASG12V细胞对160种小分子的敏感性差异。

在PC9-RIT1M90I和PC9-KRASG12V细胞中,联合500 nM erlotinib测试160种小分子(8个剂量点),96小时后用CellTiterGlo检测细胞活力。

4

验证筛选与单基因敲除验证

验证全基因组筛选鉴定的关键依赖性基因。

使用定制sgRNA文库(1000个非靶向对照和11,333个sgRNAs靶向1288个基因)在PC9-Cas9-RIT1M90I细胞中进行二次筛选;并对SHOC2、AURKA、USP9X等基因进行单独敲除验证。

5

有丝分裂时序和染色体异常分析

研究RIT1M90I对纺锤体组装检查点和有丝分裂保真度的影响。

在HeLa H2B-GFP细胞中表达RIT1M90I,使用活细胞荧光显微镜追踪从核膜破裂(NEBD)到后期起始的时间,并分析染色体异常。

6

体外转化和体内成瘤实验

验证RIT1M90I与YAP1激活的协同作用以及关键依赖性基因在体内的作用。

在SALE细胞中表达RIT1M90I和/或YAP15SA或敲除NF2,观察细胞形态和软琼脂生长,并进行免疫缺陷小鼠异种移植实验;使用多西环素诱导型Cas9系统在体内敲除RIT1、AURKA、IGF1R或FURIN。

7

人肺肿瘤样本分析

探究RIT1突变型人肺腺癌中Hippo通路基因表达和YAP1核定位情况。

分析TCGA肺腺癌RNA-seq数据(230样本)中RIT1突变或扩增肿瘤的基因表达;对MSK-IMPACT鉴定的RIT1突变型肿瘤进行YAP1免疫组化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基Gibco--
胎牛血清----
杜尔贝科改良鹰培养基Genesee Scientific--
小气道上皮生长培养基PromoCell or Lonza--
TransIT-LTI转染试剂Mirus Bio--
OptiMEM培养基Thermo Fisher Scientific--
嘌呤霉素Sigma--
杀稻瘟菌素----
潮霉素----
G418/遗传霉素ThermoFisher Scientific10131035
Brunello慢病毒文库Broad Institute Genetic Perturbation Platform73179-LV
QIAamp DNA血液大提试剂盒QIAGEN--
ExTaq聚合酶Takara Bio--
Agencourt AMPure XP SPRI磁珠Beckman Coulter--
HiSeq 2500测序仪Illumina--
厄洛替尼SelleckChemS1023
奥希替尼SelleckChemS7297
Torin 1SelleckChemS2827
AlisertibSelleckChemS1133
BarasertibSelleckChemS1147
ReversineSelleckchem--
CellTiterGlo试剂Promega--
Envision多标记板阅读仪PerkinElmer--
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific--
Trans-blot Turbo转膜系统BioRad--
iBlot转膜系统Invitrogen--
ChemiDoc MP成像系统BioRad--
磷酸化p44/42 MAPK (Erk1/2) (Thr202/Tyr204)抗体Cell Signaling Technology4370
p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体Cell Signaling Technology9107
磷酸化MEK1/2 (Ser217/221)抗体Cell Signaling Technology9154
MEK1抗体Cell Signaling Technology2352
磷酸化AKT抗体Cell Signaling Technology4060
AKT抗体Cell Signaling Technology2920
EGFR抗体Cell Signaling Technology2239
β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology4970
Vinculin抗体SigmaV9264
萤火虫荧光素酶抗体AbcamAb16466
RIT1抗体AbcamAb53720
KRAS抗体SigmaWH0003845M1
NF2抗体AbcamAb109244
USP9X抗体Proteintech55054-1-AP
SHOC2/Sur-8抗体Santa Cruz Biotechnologysc-514779
IGF1R抗体Cell Signaling Technology9750
FURIN抗体Thermo ScientificPA1-062
AURKA抗体Cell Signaling Technology4718
YAP1抗体(克隆63.7)Santa Cruz--
Bond Polymer Refine DAB IHC检测试剂盒----
SuperScript IV第一链合成系统Invitrogen--
ITGB2 TaqMan基因表达检测ThermoFisher ScientificHs00164957_m1
TNNT2 TaqMan基因表达检测ThermoFisher ScientificHs00943911_m1
COL4A3 TaqMan基因表达检测ThermoFisher ScientificHs01022502_m1
18S TaqMan基因表达检测ThermoFisher ScientificHs99999901_s1
BioRad CFX384实时系统BioRad--
Direct-zol RNA小量提取plus试剂盒Zymo Research--
Illumina TruSeq试剂盒Illumina--
Leica DMi8显微镜Leica--
Andor CSU转盘单元Andor--
Andor iXon Ultra 888 EMCCD相机Andor--
MetaMorph软件(v7.10.0.119)Molecular Devices--
含DAPI的Vectashield抗淬灭封片剂Vector Laboratories--
Nunc Lab-Tek腔室载玻片ThermoFisher Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
全基因组CRISPR筛选
细胞系(PC9-Cas9同基因表达RIT1M90I、KRASG12V、EGFRT790M/L858R或Luciferase对照)、文库(Brunello)、MOI(<0.3)、嘌呤霉素浓度(1 μg/mL)、erlotinib浓度(40 nM)、培养时长(约12个群体倍增)、生物学重复数(2-3)
阅读提示:Methods 'Genome-wide CRISPR gene knockout screen' 和 Figure 2b
小分子敏感性筛选
细胞系(PC9-RIT1M90I和PC9-KRASG12V)、erlotinib固定浓度(500 nM)、小分子库(160种化合物,8剂量点)、处理时间(96小时)、技术重复数(2)
阅读提示:Methods 'Small-molecule drug screen' 和 Figure 5a
有丝分裂时序分析
细胞系(HeLa H2B-GFP表达RIT1M90I或亲本)、 reversine浓度(0.5 μM)或alisertib浓度(1 μM)、处理时间(成像前2小时)、成像频率(每分钟一次,18小时)、分析细胞数(50细胞/条件)
阅读提示:Methods 'Mitotic timing and chromosomal aberration analysis' 和 Figure 6c, h
异种移植实验
细胞系(SALEiCas9表达RIT1M90I+YAP15SA或sgNF2)、细胞数量(2×10^6)、注射部位(皮下)、小鼠品系(NU/J)、每组肿瘤数(6-8)、多西环素给药方式(625 ppm chow)
阅读提示:Methods 'In vivo xenograft studies and ethical approval' 和 Figure 7g-l
TCGA数据分析
RIT1改变定义(突变或扩增)、样本量(RIT1改变37例,非改变193例)、差异表达分析q值阈值(<=0.25)、Hippo通路基因列表
阅读提示:Methods 'TCGA RNA expression analysis' 和 Figure 8a-b