建立PA癌细胞识别与单细胞测序流程
在低级别肿瘤缺乏大范围CNV和表达突变的情况下,将PA癌细胞与肿瘤相关细胞区分开。
采用快速解离、A2B5免疫标记与流式分选富集A2B5+胶质祖细胞,结合SMART-seq2、BRAF 3'寡核苷酸spike-in、KIAA1549:BRAF融合接头qPCR及表达胶质肿瘤标志物聚类鉴定癌细胞。
Mitogenic and progenitor gene programmes in single pilocytic astrocytoma cells.
含6例PA患者样本scRNA-seq、荧光免疫组化、RNA原位杂交、bulk表达反卷积及小鼠神经干细胞过表达BRAF的scRNA-seq功能验证
6例毛细胞型星形细胞瘤患者肿瘤组织 表达KIAA1549-BRAF、BRAF-V600E或空载体的小鼠神经干细胞(mNSC) 151例儿童低级别胶质瘤bulk表达谱
BRAF融合检测:采用SMART-seq2联合BRAF 3'寡核苷酸spike-in及针对KIAA1549:BRAF融合接头的qPCR,检测率由0–0.7%提高至29–54% 细胞分选:按A2B5免疫标记状态分选单细胞,A2B5+细胞中79%检出BRAF融合 质量控制:931个细胞通过质控(表达基因>1000且线粒体基因<4%),基因需在≥10个细胞中表达 亚群划分:共享最近邻聚类(k=150,前7个主成分)及NMF鉴定5个细胞簇 程序评分与相关性:用MSigDB C2细胞周期和衰老基因集计算评分,Spearman相关并以Bonferroni校正
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在低级别肿瘤缺乏大范围CNV和表达突变的情况下,将PA癌细胞与肿瘤相关细胞区分开。
采用快速解离、A2B5免疫标记与流式分选富集A2B5+胶质祖细胞,结合SMART-seq2、BRAF 3'寡核苷酸spike-in、KIAA1549:BRAF融合接头qPCR及表达胶质肿瘤标志物聚类鉴定癌细胞。
确定癌细胞与非癌细胞的转录组分组,并量化各细胞类型对bulk表达谱的贡献。
对scRNA-seq数据进行t-SNE、PCA、共享最近邻聚类和NMF,比较A2B5与BRAF融合状态;用差异基因富集评分估计151例儿童低级别胶质瘤bulk表达谱中各细胞类型贡献。
确定PA癌细胞最接近的正常脑细胞类型。
将PA癌细胞与发育中脑、成人皮层、发育皮层等单细胞图谱的细胞类型特征进行富集评分比较,并与H3K27M高级别胶质瘤、IDH突变星形细胞瘤和少突胶质细胞瘤比较。
在癌细胞内部鉴定不同基因程序及其细胞状态分布。
对癌细胞进行PCA,按PC1和PC2排序基因,定义MAPK信号、星形细胞样(AC-like)和少突胶质细胞样(OC-like)程序,计算程序评分,并用荧光免疫组化和RNA原位杂交验证标志基因。
检验PA癌细胞是否存在发育过程,并确定增殖细胞与衰老细胞的分布。
用Monocle v2.6.4的反向图嵌入构建细胞轨迹并计算拟时间,分析MAPK、AC样程序评分随拟时间变化;计算细胞周期和衰老程序评分与MAPK程序、BRAF表达的相关性。
检验致癌性BRAF表达是否影响PA癌细胞基因程序。
对表达KIAA1549-BRAF、BRAF-V600E或空载体的小鼠神经干细胞进行scRNA-seq,比较差异表达基因与PA来源基因程序的重叠及AC样程序评分。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 肿瘤组织解离 | GentleMACS C管 | Miltenyi Biotec | -- |
| 脑肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 流式分选 | 抗A2B5-APC抗体(克隆105HB29) | Miltenyi Biotec | -- |
| 钙黄绿素蓝AM | Invitrogen | C1429 | |
| LIVE/DEAD可固定近红外死细胞染色试剂盒 | -- | L-34974 | |
| SH800S荧光激活细胞分选仪 | Sony Biotechnology | -- | |
| MoFlo Astrios EQ细胞分选仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 单细胞cDNA建库 | SmartSeq2 v4试剂盒 | Takara | -- |
| Nextera XT反应试剂盒 | -- | -- | |
| cDNA文库质控 | Agilent TapeStation 2200 | Agilent | -- |
| D5k筛选胶带 | Agilent | -- | |
| 测序 | Illumina NextSeq500测序仪 | Illumina | -- |
| Illumina HiSeq2500测序仪 | Illumina | -- | |
| bulk组织测序 | Agilent SureSelect杂交捕获试剂盒 | Agilent | -- |
| RNA原位杂交 | RNAscope人APOD探针 | ACD Biotech | 445171 |
| RNAscope人JUN探针 | ACD Biotech | 470541 | |
| 荧光免疫组化 | Olig2抗体 | R&D System | AF2418 |
| GFAP抗体(克隆GA5) | Cell Signaling Technology | 3670 | |
| Ki-67抗体(克隆MIB-1) | Dako | M7240 | |
| 荧光免疫组化图像采集 | Perkin Elmer Vectra 3成像系统 | PerkinElmer, Inc. | -- |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | -- | -- |
| 无维生素A的B27添加剂 | -- | -- | |
| 表皮生长因子 | -- | -- | |
| neurobasal-A培养基 | Life Technologies | -- | |
| 层粘连蛋白 | -- | -- | |
| 流式分选 | 红细胞裂解液 | ThermoFisher | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 肿瘤组织获取与解离 | 样本来源与伦理方案:波士顿儿童医院Dana Farber/Harvard Cancer Center IRB方案10–417;解离酶为胰蛋白酶或木瓜蛋白酶;6例肿瘤类型(5例经典KIAA1549-BRAF 16:9易位,1例非经典BRAF重复) 阅读提示:Methods第1段Tumor acquisition and preparation;Supplementary Data 1和2 |
| A2B5免疫标记与单细胞分选 | 抗A2B5-APC用量10 µL/100 µL、Calcein Blue AM 1.5 µL/100 µL、LIVE/DEAD试剂0.5 µL;按A2B5状态大致等比例分选至96孔板;阳性对照为小鼠神经干细胞 阅读提示:Methods中Fluorescence-activated cell sorting小节 |
| BRAF融合检测 | BRAF 3'寡核苷酸终浓度13 µM;Taqman qPCR针对15–9、16–9或16–11断点;BT827和BT618 cDNA耗尽未做qPCR,BT646因复杂重排不适用该qPCR 阅读提示:Methods中Library preparation and sequencing with BRAF spike-in及Detection of BRAF fusion from single cell cDNA libraries小节 |
| 数据质控与聚类 | 剔除表达基因<1000或线粒体基因>4%的细胞;剔除在<10个细胞中表达的基因;剔除14个与免疫细胞聚在一起的A2B5+细胞及表达>1.5 log-normalized GZMB的细胞;聚类k=150、前7个主成分 阅读提示:Methods中Data quality control, dimension reduction, and clustering小节 |
| 小鼠神经干细胞实验 | 细胞来源为胚胎第14天小鼠内侧神经节隆起;培养条件为DMEM/F12(50:50)+1×B27(无维生素A)+20 ng/mL EGF;BRAF突变细胞培养不含生长因子;质控后487个细胞 阅读提示:Methods中KIAA1549-BRAF expressing neural stem cells及Mouse neural stem cell scRNA-seq小节 |
| 荧光免疫组化与RNA原位杂交 | 每种肿瘤分析20个高倍视野(20×);Olig2、GFAP、Ki-67抗体克隆与货号;RNAscope探针货号;IHC阳性阈值由20张图像交叉复核确定 阅读提示:Methods中Fluorescence immunohistochemistry及RNA in situ staining小节;Fig. 6 |