缺氧下谷氨酰胺碳利用及氮处置的代谢表型分析
验证缺氧是否增加谷氨酰胺碳利用并减少氨生成。
在常氧和缺氧条件下培养MCF-7、HeLa、4T1细胞,检测谷氨酰胺摄取、谷氨酸分泌、氨生成、尿素水平及13C5-谷氨酰胺向乙酰辅酶A等代谢物的示踪。
Coordinative metabolism of glutamine carbon and nitrogen in proliferating cancer cells under hypoxia.
体外多种细胞系同位素示踪、基因敲低功能验证,患者血清及荷瘤小鼠体内验证。
MCF-7、HeLa、A549、4T1等细胞系 HeLa和4T1细胞皮下移植瘤裸鼠模型 癌症患者及健康对照血清样本
缺氧条件:1%氧气;常氧为对照 同位素示踪:1 mM 13C5-谷氨酰胺、胺-15N-谷氨酰胺或酰胺-15N-谷氨酰胺处理8小时 基因敲低:shDHODH、shCAD、shGOT1及shScramble对照 荷瘤小鼠:每细胞系5只,皮下注射5×10^6细胞,每3天测量肿瘤体积 体内示踪:腹腔注射酰胺-15N-谷氨酰胺5.0 mmol/kg,注射后1或2小时采样
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证缺氧是否增加谷氨酰胺碳利用并减少氨生成。
在常氧和缺氧条件下培养MCF-7、HeLa、4T1细胞,检测谷氨酰胺摄取、谷氨酸分泌、氨生成、尿素水平及13C5-谷氨酰胺向乙酰辅酶A等代谢物的示踪。
确定缺氧条件下谷氨酰胺氮富集的代谢物。
用靶向代谢组学筛查HeLa和4T1细胞中226种含氮代谢物,并用LC-MS验证MCF-7、HeLa、4T1细胞中IMP、氨甲酰天冬氨酸、二氢乳清酸、乳清酸、UMP及核苷酸水平。
追踪谷氨酰胺氮和碳在核苷酸生物合成中的代谢去向,区分氧化与还原途径。
用胺-15N-或酰胺-15N-谷氨酰胺及13C5-谷氨酰胺培养MCF-7和HeLa细胞,检测二氢乳清酸、乳清酸、UMP、IMP及氨基酸的15N标记分数,以及乙酰辅酶A、天冬氨酸、柠檬酸、二氢乳清酸、乳清酸的质量同位素体。
验证缺氧是否促进天冬氨酸进入二氢乳清酸和乳清酸。
用13C4,15N-天冬氨酸培养HeLa和MCF-7细胞,检测天冬氨酸、谷氨酸、二氢乳清酸、乳清酸和UMP的质量同位素体。
验证谷氨酰胺向二氢乳清酸的通量是否为缺氧下细胞存活所必需,并检测代谢物分泌。
在MCF-7和HeLa细胞中敲低DHODH、CAD或GOT1,检测常氧和缺氧下细胞增殖、二氢乳清酸和乳清酸分泌、氨生成、细胞内代谢物水平及13C5-谷氨酰胺向乙酰辅酶A的通量;并用DMαKG或尿苷进行回补实验。
验证缺氧诱导的NADH积累是否驱动二氢乳清酸合成和分泌。
检测缺氧下NADH/NAD+比值及代谢酶蛋白水平;用抗霉素A模拟电子传递链抑制;用α-酮丁酸消耗NADH,检测二氢乳清酸分泌、谷氨酰胺碳流、氨生成及PRPP和UMP水平。
验证该代谢途径在体内存在且为肿瘤生长所必需。
检测癌症患者和健康对照血清二氢乳清酸/乳清酸;用HeLa或4T1荷瘤裸鼠进行酰胺-15N-谷氨酰胺体内示踪;比较shScramble、shDHODH、shCAD、shGOT1细胞的皮下成瘤能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM | -- | -- |
| 胎牛血清 | BioInd | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Invitrogen | -- | |
| 细胞成像 | EVOS® FL数字倒置荧光显微镜 | -- | -- |
| NADH/NAD+比值检测 | NAD/NADH-Glo™检测试剂盒 | Promega | G9072 |
| 96孔白色发光检测板 | CoStar | 3925 | |
| Synergy H1混合多模式读数仪 | BioTek | -- | |
| 代谢物 profiling 和同位素示踪 | TSQ Quantiva三重四极杆质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Dionex UltiMate 3000超高效液相色谱系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Synergi Hydro-RP 100A色谱柱 | Phenomenex | -- | |
| 透析胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 代谢物摄取与分泌 | VITROS 5600全自动生化分析仪 | Ortho-Clinical Diagnostics | -- |
| 氨检测玻片 | -- | -- | |
| VITROS化学产品校准品试剂盒5 | Ortho-Clinical Diagnostics | -- | |
| AU5800自动分析仪 | Beckman Coulter | -- | |
| Western blot | 山羊抗兔IgG | Li-Cor | C30502-01 |
| 山羊抗小鼠IgG | Li-Cor | C30509-01 | |
| β-Actin抗体 | Proteintech | 60008-1 | |
| GOT1抗体 | Proteintech | 14886-1-AP | |
| DHODH抗体 | Proteintech | 14877-1-AP | |
| HIF1α抗体 | Proteintech | 20960-1-AP | |
| UMPS抗体 | Proteintech | 14830-1-AP | |
| CAD抗体 | Santa Cruz | sc-376072 | |
| 磷酸化CAD (Ser1859)抗体 | Cell Signaling Technology | 70307 | |
| Li-Cor Odyssey成像仪 | Li-Cor | -- | |
| 慢病毒生产 | 病毒浓缩试剂盒 | Biophay | -- |
| 慢病毒感染 | 聚凝胺 | -- | -- |
| 代谢物提取 | 15N2-乳清酸 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 缺氧处理与细胞培养 | 缺氧条件为1% O2,常氧为对照;培养基为高糖DMEM含10%胎牛血清和50 IU青霉素/链霉素;代谢实验使用含10%透析FBS的培养基。 阅读提示:Methods中Cell culture和Metabolite profiling and isotope tracing小节。 |
| 同位素示踪 | 标记谷氨酰胺浓度为1 mM(13C5、胺-15N或酰胺-15N),标记天冬氨酸浓度为10 mM(13C4,15N),处理时间为8小时;培养基中葡萄糖10 mM。 阅读提示:Methods中Metabolite profiling and isotope tracing小节及对应Figure legends(Fig. 1c, 3b, 4a)。 |
| 基因敲低与功能实验 | shRNA靶点序列(shDHODH-#1/#2、shCAD-#1/#2、shGOT1-#1/#2、shScramble)及对照;敲低验证用Western blot;增殖实验接种5×10^4细胞/孔,处理3天。 阅读提示:Methods中Gene construction and lentivirus production、Proliferation assay和Western blot小节;Fig. 5b。 |
| 代谢物摄取与分泌检测 | 条件培养基取样时间8小时;使用15N2-乳清酸(10 ng/ml)作为内标;二氢乳清酸用标准曲线定量;氨检测使用VITROS 5600,尿素使用AU5800。 阅读提示:Methods中Metabolite uptake and excretion小节。 |
| 动物实验 | 雌性裸鼠4-5周龄19-20 g;皮下注射5×10^6细胞;每组5只;肿瘤体积每3天测量;体内示踪腹腔注射酰胺-15N-谷氨酰胺5.0 mmol/kg,注射后1、2或4小时采样。 阅读提示:Methods中Animal experiments小节;Fig. 7e, f和Supplementary Fig. 15。 |
| 血清代谢物检测 | 癌症患者血清来源及伦理审批;血清与甲醇比例1:4(v/v);15N2-乳清酸内标浓度10 ng/ml;二氢乳清酸标准曲线浓度范围0-200 ng/ml。 阅读提示:Methods中Serum metabolite assay小节。 |