PAK4抑制改善PD-1阻断免疫治疗

PAK4 inhibition improves PD-1 blockade immunotherapy

作者信息Gabriel Abril-Rodriguez, Davis Y Torrejon, Wei Liu, Jesse M Zaretsky, Theodore S Nowicki, Jennifer Tsoi, Cristina Puig-Saus, Ignacio Baselga-Carretero, Egmidio Medina, Michael J Quist, Alejandro J Garcia, William Senapedis, Erkan Baloglu, Anusha Kalbasi, Gardenia Cheung-Lau, Beata Berent-Maoz, Begoña Comin-Anduix, Siwen Hu-Lieskovan, Cun-Yu Wang, Catherine S Grasso, Antoni Ribas
PMID34368780
发布时间2020
DOI10.1038/s43018-019-0003-0

实验完整度

高

包含患者样本RNA-Seq分析、体外CRISPR敲除和药理抑制实验、两个小鼠皮下肿瘤模型体内验证及CyTOF多组学证据。

主要模型

B16小鼠黑色素瘤模型 MC38小鼠结肠腺癌模型 转移性黑色素瘤患者活检样本

重点核对

PAK4在非响应肿瘤活检中表达富集 PAK4缺失以CD8 T细胞依赖方式增强抗PD-1疗效 KPT-9274联合抗PD-1改善抗肿瘤反应 PAK4缺失增加肿瘤浸润T细胞和NK细胞 PAK4调控WNT/β-catenin信号通路

摘要

免疫细胞缺乏肿瘤浸润是程序性细胞死亡蛋白1(PD-1)阻断疗法治疗癌症原发性耐药的主要机制。有假设认为,癌细胞内在机制可能主动将T细胞排除在肿瘤外,提示寻找可通过抑制来增加T细胞浸润的可操控分子,可能与检查点抑制剂免疫治疗协同作用。在此,我们显示p21激活激酶4(PAK4)在T细胞和树突状细胞浸润低的非响应肿瘤活检中富集。在小鼠模型中,PAK4基因缺失以CD8 T细胞依赖性方式增加T细胞浸润并逆转对PD-1阻断的耐药性。此外,抗PD-1与PAK4抑制剂KPT-9274联合使用相比单独抗PD-1改善了抗肿瘤反应。因此,高PAK4表达与低T细胞和树突状细胞浸润以及对PD-1阻断缺乏反应相关,这可通过PAK4抑制逆转。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
评估PAK4表达是否与肿瘤免疫细胞浸润缺乏及PD-1阻断耐药相关,以及抑制PAK4能否改善PD-1阻断治疗效果。
核心机制
肿瘤细胞内在的PAK4表达通过激活WNT/β-catenin信号通路介导免疫细胞排除,抑制PAK4可逆转这一过程并增强抗肿瘤免疫。
主要证据
患者活检RNA-Seq和IHC显示PAK4与免疫浸润负相关;B16模型中PAK4敲除以CD8 T细胞依赖方式增加T细胞浸润并改善抗PD-1疗效;KPT-9274与抗PD-1联用增强抗肿瘤效果。
研究意义
提出PAK4作为联合抑制靶点,以克服PD-1阻断原发性耐药,并扩展至多种癌症类型。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

分析患者活检转录组

识别与PD-1阻断耐药相关的肿瘤内在机制

对41例晚期黑色素瘤患者的活检样本进行RNA-Seq分析,比较响应与非响应样本的免疫浸润和基因表达。

2

验证PAK4与免疫浸润的关联

验证PAK4表达与T细胞和树突状细胞浸润缺乏的关系

使用IHC和外部队列RNA-Seq数据验证PAK4表达与免疫标志物的负相关性。

3

体外研究PAK4对WNT信号的影响

探究PAK4调控WNT/β-catenin信号通路的机制

使用CRISPR-Cas9生成B16 PAK4敲除细胞,通过Topflash报告基因、免疫印迹评估WNT信号活性。

4

体内评估PAK4缺失对抗PD-1疗效的影响

测试PAK4缺失是否能使肿瘤对PD-1阻断敏感

在C57BL/6小鼠中皮下接种B16 PAK4 KO或WT肿瘤,并抗PD-1或同型抗体治疗,监测肿瘤生长。

5

评估PAK4药理抑制联合抗PD-1效果

测试KPT-9274联合抗PD-1能否增强抗肿瘤反应

在B16和MC38肿瘤模型中口服KPT-9274联合抗PD-1治疗,比较肿瘤生长。

6

CyTOF分析肿瘤浸润免疫细胞

分析PAK4缺失对抗PD-1治疗下肿瘤免疫细胞组成的影响

使用质谱流式细胞术对肿瘤浸润免疫细胞进行分群和定量,比较不同处理组。

7

伴随诊断分析

直接验证PAK4表达与免疫细胞浸润的负相关性

对患者活检样本进行IHC染色,定量PAK4与S100、CD8和β-catenin的共定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
AllPrep DNA/RNA微型试剂盒Qiagen--
mirVana miRNA分离试剂盒Ambion--
Illumina HiSeq 2500测序平台Illumina--
DMEM培养基----
RPMI培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
pSpCas9(BB)-2A-GFP载体Addgene--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
NucleoSpin组织XS提取试剂盒Macherey Nagel--
PAK4抗体Proteintech--
ECL-Plus化学发光试剂盒Amersham Biosciences--
ChemiDoc MP成像系统Bio-Rad Laboratories--
β-catenin抗体Cell Signaling Technology9587
磷酸化β-catenin (S675)抗体Cell Signaling Technology9567
磷酸化β-catenin (S33/37/T41)抗体Cell Signaling Technology9561
NE-PER核和细胞质提取试剂Thermo Fisher Scientific--
pSV-β-半乳糖苷酶对照载体PromegaPR-E1081
pTopflash质粒Addgene12456
pFopflash质粒Addgene12457
Wnt-3a重组蛋白R&D Systems--
报告基因裂解缓冲液PromegaPR-E4030
Bright-Glo荧光素酶检测系统PromegaPR-E2610
Beta-Glo检测系统PromegaPR-E4720
Power SYBR Green RNA-to-CT一步法试剂盒Applied Biosystems--
肿瘤坏死因子Peprotech--
抗PD-1抗体BioXCellBE0146
抗CD8抗体BioXCellBE0117
KPT-9274----
小鼠肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec--
ACK裂解缓冲液Lonza--
Helios质谱流式细胞仪Fluidigm--
Leica Bond-III自动染色机Leica Biosystems--
HALO图像分析软件Indica Labs--
GraphPad Prism 7GraphPad Software--
R软件----
FlowJo软件FlowJo LLC--
HISAT2----
HTSeq----
DESeq2----
Cytofkit----
IncuCyte S3活细胞分析系统Sartorius4647

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
患者活检样本收集与处理
样本数量及处理方式:41例患者,66个肿瘤样本;RNAlater或液氮速冻保存
阅读提示:Methods: Patients, tumor biopsies and response assessment
RNA-Seq分析
测序平台和比对参数:Illumina HiSeq 2500, HISAT2默认参数
阅读提示:Methods: RNA isolation and RNA-Seq analysis
PAK4敲除细胞系构建
sgRNA序列和载体:pSpCas9(BB)-2A-GFP
阅读提示:Methods: Cell lines and PAK4 CRISPR–Cas9 KO and rescue
WNT活性检测
Topflash报告基因和Wnt-3a处理浓度:200 ng/ml
阅读提示:Methods: WNT activity assays
体内抗PD-1治疗
细胞注射数量:0.3 × 10^6 B16细胞;抗PD-1剂量:200 μg,每周3次
阅读提示:Methods: Mouse model studies
KPT-9274联合治疗
给药剂量和方式:B16: 300 mg/kg口服每日一次;MC38: 150 mg/kg口服每日两次
阅读提示:Methods: Mouse model studies
质谱流式细胞术
抗体组合和处理流程:参照文献53
阅读提示:Methods: Mass cytometry
免疫组化分析
抗体和染色方法:S100, CD8, PAK4, CTNNB1
阅读提示:Methods: IHC
统计方法
统计检验选择:Welch's t-test, paired t-test, Pearson检验
阅读提示:Methods: Statistics and reproducibility