建立激光诱导CNV模型并评估NMN对CNV形成的作用
验证NMN能否抑制激光诱导的脉络膜新生血管形成。
对C57BL/6J小鼠进行激光光凝诱导CNV,NMN或PBS从激光前1天至第7天每日腹腔注射,第7天取眼球制备RPE/choroid铺片,IB4染色并量化CNV面积和体积。
Nicotinamide Mononucleotide Attenuates Inflammatory Activation, Choroidal Neovascularization, and Lesion-Associated Remodeling
包含体内激光诱导CNV模型及体外LPS和TGF-β刺激细胞模型,结合功能验证(病变大小、免疫细胞积累)和机制验证(NF-κB、STAT3信号)。
激光诱导CNV小鼠模型(C57BL/6J) 原代小鼠RPE细胞 bEnd.3小鼠脑内皮细胞 THP-1来源巨噬细胞
NMN给药剂量500 mg/kg BW,每日腹腔注射 激光诱导CNV参数:532 nm,200 mW,100 ms,75 µm,每眼4-5个烧灼点 CNV病变面积和体积定量在RPE/choroid铺片上通过IB4染色 炎症和血管生成基因表达(RT-qPCR)及NF-κB和STAT3磷酸化(Western blot) 胶原I、F4/80、α-SMA阳性面积定量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证NMN能否抑制激光诱导的脉络膜新生血管形成。
对C57BL/6J小鼠进行激光光凝诱导CNV,NMN或PBS从激光前1天至第7天每日腹腔注射,第7天取眼球制备RPE/choroid铺片,IB4染色并量化CNV面积和体积。
检测NMN是否能减少CNV微环境中的免疫细胞浸润。
对RPE/choroid铺片进行Iba1(小胶质细胞/巨噬细胞)和CD68(巨噬细胞)免疫染色,量化阳性面积。
验证NMN能否抑制CNV相关的炎症和血管生成基因表达及信号通路激活。
分离神经视网膜和RPE/choroid,提取RNA和蛋白。RT-qPCR检测炎症因子(Tnfa, Il6, Il1b, Ccl2等)和血管生成因子(Vegfa, Vegfr2, Mmp2等)的mRNA水平;Western blot检测NF-κB、STAT3磷酸化水平及SIRT1、HSP27蛋白表达。同时测量视网膜NAD+/NADH比值。
验证NMN直接抑制内皮细胞和RPE细胞的炎症和血管生成激活。
原代小鼠RPE细胞和bEnd.3细胞用LPS刺激,同时加入或不加NMN,收集细胞分析炎症基因表达(Ccl2, Icam1, Il6, Il1b)和血管生成基因(Hbegf, Vegfr2),并通过免疫荧光和Western blot检测NF-κB核转位和磷酸化。
验证NMN能否抑制后期纤维化和组织重塑。
采用延长疗程(激光前1天至第14天)和延迟疗程(第6天至第14天)的NMN给药方案,第14天制备RPE/choroid铺片,进行胶原I免疫染色;另有视网膜切片进行F4/80和α-SMA免疫染色,量化胶原I、F4/80和α-SMA阳性面积及F4/80与α-SMA共定位。
验证NMN能否抑制巨噬细胞的促纤维化激活。
THP-1单核细胞经PMA诱导分化为巨噬细胞,然后用TGF-β1刺激,同时加入或不加NMN,通过免疫细胞化学检测α-SMA和胶原I表达,并通过RT-qPCR检测纤维化相关基因(α-SMA, COL1A1, FN1, MMP2, TAGLN, ITGA5)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 烟酰胺单核苷酸 | Oriental Yeast | -- |
| 激光诱导CNV模型 | 托吡卡胺 | Santen Pharmaceutical | -- |
| 532纳米激光系统 | Lumenis | -- | |
| 细胞培养 | 分散酶II | -- | -- |
| DMEM培养基 | Nacalai Tesque | -- | |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Life Technologies | -- | |
| 青霉素 | Fujifilm Wako Pure Chemical | -- | |
| 链霉素 | Fujifilm Wako Pure Chemical | -- | |
| 细胞刺激 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 转化生长因子β1 | -- | -- | |
| 佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯 | MedChemExpress | HY-18739 | |
| RNA提取 | TRI试剂 | Molecular Research Center | -- |
| 逆转录 | ReverTra Ace qPCR RT试剂盒 | Toyobo | -- |
| qPCR | THUNDERBIRD Next SYBR qPCR预混液 | TOYOBO | -- |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Fujifilm Wako Pure Chemical | -- |
| NAD+/NADH测定 | NAD+/NADH检测试剂盒 | Abcam | ab65348 |
| 10-kDa离心过滤柱 | Abcam | ab93349 | |
| 显微成像 | FV4000共聚焦激光扫描显微镜 | Olympus | -- |
| 图像分析 | Imaris | Oxford Instruments | -- |
| ImageJ | -- | -- | |
| 统计软件 | GraphPad Prism | GraphPad Software | -- |
| qPCR仪器 | StepOnePlus PCR系统 | Applied Biosystems | -- |
| 光谱分析 | Cytation 5酶标仪 | Agilent Technologies | -- |
| 抗体 | 异凝集素B4 | Vector Laboratories | FL-1201 |
| 离子钙接头蛋白1 | Wako | 019-19471 | |
| CD68 | Bio-Rad | MCA1957 | |
| 胶质纤维酸性蛋白 | Abcam | ab7260 | |
| I型胶原抗体 | Abcam | ab316222 | |
| F4/80抗体 | Abcam | ab6640 | |
| 磷酸化NF-κB抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| NF-κB抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| 磷酸化STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9131S | |
| STAT3抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8019 | |
| 热休克蛋白27抗体 | Cell Signaling Technology | 2422 | |
| SIRT1抗体 | Sigma-Aldrich | 07-131 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 4967 | |
| α-平滑肌肌动蛋白抗体 | Abcam | ab5694 | |
| Alexa Fluor 488标记α-SMA抗体 | Abcam | ab184675 | |
| 抗兔Alexa Fluor 488二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-11008 | |
| 抗兔Alexa Fluor 555二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-21434 | |
| 抗鼠IgG HRP标记二抗 | Cell Signaling Technology | 7076S | |
| 抗兔IgG HRP标记二抗 | Cell Signaling Technology | 7074S |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 激光诱导CNV模型 | C57BL/6J小鼠周龄和性别、激光参数、CNV病变纳入标准、每组样本量 阅读提示:Methods: Animals及Laser-Induced CNV section and Figure legends |
| NMN给药 | 给药剂量、频率、给药途径、给药时间 阅读提示:Methods: Treatment With NMN section |
| RPE/choroid铺片及免疫荧光 | 固定条件、抗体稀释度、铺片制备和量化参数 阅读提示:Methods: RPE/Choroid Flat-Mount Preparation and Immunofluorescence |
| 体外细胞实验(LPS刺激) | 细胞类型、LPS浓度、NMN浓度、处理时间、溶剂对照 阅读提示:Methods: Cell Culture and Treatments of Cell Lines and Primary Mouse RPE Cell Isolation and Treatment |
| 体外细胞实验(TGF-β刺激) | THP-1分化条件、TGF-β1浓度、NMN浓度、处理时间、对照组 阅读提示:Methods: Cell Culture and Treatments of Cell Lines |
| 蛋白和基因表达分析 | 样本处理、抗体和引物、内参基因、统计方法 阅读提示:Methods: RNA Isolation and Quantitative RT-PCR, Western Blotting, and Statistical Analysis |